Fermentación en estado sólido de caña de azúcar con adición de Pediococcus acidilactici, Lindner by Alejandro Ley de Coss

Alimentación sostenible y retos del sistema agroalimentario Imelda Rosana Cih Dzul Arturo Moreno Hernández Francisco Javier Cárdenas Flores Víctor Manuel Sánchez Bernal Cándido Enrique Guerra Medina

ISBN: 978-607-9442-76-7 Editorial Página Seis, S.A. de C.V. Teotihuacan 345, Ciudad del Sol C.P. 45050, Zapopan, Jalisco. Tel. 52 (33) 3657 3786 y 3657 5045 www.pagina6.com.mx D.R. © Ninguna parte de esta publicación puede ser reproducida, traducida, almacenada o transmitida de forma alguna, ni por ningún medio, ya sea electrónico, químico, mecánico, óptico, de grabación o de fotocopia, sin permiso previo de los editores. Hecho en México / Made in Mexico

El CUCsur, en la construcción de la Escuela Campesina; una experiencia de educación popular

323

Multifuncionalidad, manejo de los recursos naturales y agricultura familiar en San Miguel Cuyutlán, estado de Jalisco, Occidente de México

353

Agricultura protegida, frutas y hortalizas. Situación actual y perspectivas de la producción hortícola en la Región Caribe de Colombia

373

Diseño de un modelo de diversificación productiva para la agricultura protegida en el municipio de Tepetlaoxtoc de Hidalgo, Estado de México Aislamiento, caracterización y control biológico de Colletotrichum sp. en mangos

397 421

Explantes para la obtención de callos embriogénicos somáticos en Stevia rebaudiana (Bert.) Regeneración in vitro de dos variedades de Saccharum officinarum L

451 471

Desarrollo de un protocolo para la micropropagación clonal de moringa (Moringa oleífera) Aplicación de brasinoesteroide a seis orquídeas para crecimiento in vitro

491 513

Producción de pepino (Cucumis sativus L.) con diferentes concentraciones de una solución nutritiva, bajo Agricultura Protegida Producción de forraje de maíz en diferentes etapas de madurez

535 553

Desarrollo y rendimiento de haba con fertilización órgano-mineral en suelo y sustrato tezontle Índices de salinidad y sodicidad en suelos y agua para uso agrícola de Tuxcacuesco

565 589

Evaluación de la efectividad del quitosano en el control postcosecha de la antracnosis en frutos de mango

613

LA GANADERÍA Y SUS RETOS PARA LA SOSTENIBILIDAD Criterio de calidad aplicado a leche fresca de los hatos lecheros tropicales de Chiapas 639 Costos de la producción caprina extensiva en el sur del Estado de México

659

Toxicidad in vitro de aceites esenciales y compuestos naturales sobre el ácaro Varroa destructor

671

Mercado de la carne de cerdo en México, un modelo de optimización

681

Factores que determinan la oferta regional de carne bovina en México, 1994-2013

695

Fermentación en estado sólido de la caña de azúcar con adición de Pediococcus acidilactici, lindner

713

Presentación

El campo mexicano atraviesa una larga crisis que ya tiene una duración de más de medio siglo. Si bien esta crisis ha tenido sus altibajos, en términos generales ha sido caracterizada por la interrelación de problemas ecológicos, económicos, políticos y sociales, involucrando un gran número de diferentes actores sociales, quienes además actúan a nivel regional, estatal nacional e internacional. En otras palabras, la crisis rural se tiene que considerar como multi-dimensional, multi-actor y multi-escala. Por ende, lo anterior indica que la crisis rural tiene una alta complejidad, afectando no solamente a las familias campesinas e indígenas que directamente manejan la enorme riqueza biológica que posee México, sino también afectando a la creciente población urbana que depende sus alimentos de la producción agropecuaria y forestal del campo. Además, se observa una creciente globalización del sistema agroalimentario mexicano que ha llevado a una pérdida de la seguridad alimentaria, no solamente en términos cuantitativos, sino también en términos cualitativos. Además de la pérdida de la soberanía alimentaria, permite empoderar a las empresas agroalimentarios internacionales incrementando su control sobre los diferentes eslabones de la cadena productiva. La problemática aquí descrita desafía a políticos y científicos, quienes desde su propio quehacer cotidiano, impulsan el desarrollo sustentable, con el fin de recuperar la seguridad y soberanía alimentaria de nuestro país, incluyendo la recuperación del control sobre los sistemas agroalimentarios mexicanos. Los trabajos que se publican en esta obra, pretenden contribuir a la solución de los problemas económicos, ecológicos, políticos y sociales del campo mexicano. Por su parte, los miembros de la Red de Investigación Socioeconómica en Hortalizas, Frutas y Flores (RISHORT), desde 1997 participan cada uno desde su campo disciplinar con investigación de alta calidad con el fin de entender la complejidad de la crisis rural, quienes aportan de esa manera, elementos sustantivos que permiten diseñar e implementar nuevos e innovadores esquemas de desarrollo sustentable.

Desde su fundación, la RISHORT ha publicado varios libros relacionados, siendo las hortalizas, frutas y flores el tema central de la red y contextualizando el sector agropecuario en los diferentes momentos o etapas políticos que han afectado al campo mexicano. El presente libro titulado “Alimentación sostenible y retos del sistema agroalimentario”, retoma varios de los trabajos presentados en el XI Reunión de RISHORT, con el objetivo de: “Contribuir y analizar los avances de investigaciones relacionadas al sistema agroalimentario en México, discutir la problemática de la producción e inserción a los mercados globales y aportar soluciones a los desafíos que enfrenta la agricultura mexicana”, y de esa manera, aportar con nuevos conocimientos al entendimiento del campo mexicano y los nuevos procesos sociales y económicos que lo afectan. Los capítulos que conforman este libro se agrupan según cuatro temas, siendo:

1. Políticas publicas, economía, consumo y comercio agroalimentario, 2. Agricultura en pequeña escala, agricultura sostenible y/o orgánica, 3. Agricultura protegida, frutas y hortalizas y 4. La ganadería y sus retos para la sostenibilidad.

Dentro de estos grandes temas, el lector/la lectora encontrará una gran variedad de temas en diferentes territorios de la República mexicana y del extranjero. En su conjunto, el libro que tiene en su mano representa una valiosa aportación a los estudios rurales mexicanos, no solamente por ofrecer un mayor entendimiento de la complejidad rural, sino también por los esfuerzos para contribuir a la transformación sustentable del campo en México.

Peter R.W. Gerritsen

LA GANADERÍA Y SUS RETOS PARA LA SOSTENIBILIDAD

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Fermentación en estado sólido de la caña de azúcar con adición de Pediococcus acidilactici, lindner Alejandro Ley de Coss162*, Jaime J. Martínez Tinajero163, Saúl Posada Cruz164, René Pinto Ruíz165, Francisco Guevara Hernández166, Cándido Enrique Guerra Medina167, Federico Villarreal Guerrero168 162

Universidad Autónoma de Chiapas (UNACH), Campus IV, Facultad de Ciencias Agrícolas, Ganadería Tropical Sustentable, entronque carretera costera S/N, Huehuetán, Chiapas, México. CP. 36670. Tel: 01 (964) 62 70128.

Autor de correspondencia: aleycoss@gmail.com

163

164

165

UNACH, Campus V, Facultad de Ciencias Agronómicas, Agroforesteria Pecuaria, carretera Villaflores-Ocozocoautla Km 7.5 AP. 63 Villaflores, Chiapas, México. C.P. 30470. pinto_ruiz@yahoo.com.

166

UNACH, Campus V, Facultad de Ciencias Agronómicas, Agroforesteria Pecuaria, carretera Villaflores-Ocozocoautla Km 7.5 AP. 63 Villaflores, Chiapas, México. C.P. 30470. fragueher@prodigy.net.mx.

167

Centro Universitario de la Costa Sur, Universidad de Guadalajara. Independencia Nacional 151, Autlán de Navarro, Jalisco México. C. P. 48900; enrique.guerra@cucsur. udg.mx.

168

Facultad de Zootecnia y Ecología, Universidad Autónoma de Chihuahua, periférico Fco. R. Almada km 1. Chihuahua, Chih. C. P. 31453. fvillarreal@uach.mx.

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Resumen En las regiones tropicales, la escasez de forrajes en la época de sequía y de inundaciones, hacen necesario la conservación de alimento para los animales. En México la caña de azúcar es un cultivo importante que se ha utilizado para la alimentación de rumiantes. El objetivo de esta investigación fue evaluar la fermentación de la caña de azúcar en estado sólido (FES) sobre la calidad nutritiva. El estudio se realizó en la Facultad de Ciencias Agrícolas en Huehuetán Chiapas, México. Se evaluaron cuatro tratamientos: T1 = caña integral molida + 2% urea (CIM-U) + Pediococcus acidilactici + O2; T2 = CIM-U + P. acidilactici + CO2; T3 = CIM-U + O2; T4 = CIM-U + CO2. Se utilizó un diseño factorial 2 x 2x 3, donde las variables microbiológicas se analizaron mediante suma de rangos de Wilcoxon; para las variables de proteína cruda (PC), proteína verdadera (PV) y pH se utilizó el modelo lineal general (GLM) y la comparación de medias con el procedimiento de Tukey. El contenido de PC y PV en el producto final aumentó cuando se adicionó CO2 (T2 y T4); además el pH menor se tuvo en T4 (4.17). La concentración de bacterias totales fue menor en T2 a 72 horas de incubación (P<0.05); bacterias acido lácticas fue mayor en T1 (P<0.05) y bacterias celulolíticas fue mayor en T1 y T3 (P<0.05). La adición de P. acidilactici no aumento el contenido de PC y PV. Palabras clave: conservación de alimentos, ensilado de caña, aditivos microbianos, nutrición de rumiantes.

Introducción En México, el sector pecuario demanda aproximadamente 20 millones de toneladas de granos forrajeros; de estos, 50% corresponden a maíz amarillo y 40% a sorgo; mismos que son importados en más de 60%. El incremento en el precio de los granos repercute en la industria ganadera debido a la

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utilización de éstos en la alimentación de los animales, siendo los sistemas de producción intensivo y semi-intensivo los más afectados. En el 2006, el precio internacional del maíz era de 87.6 USD por tonelada; para enero del 2008 pasó a 194.32 USD, siendo el incremento cercano al 122%, el Banco Mundial, estima que los precios se mantendrán a la alza hasta el 2015 (FAO, 2007). La industria azucarera en México atraviesa una crisis de comercialización debido a la disminución del precio del producto en el mercado internacional (Peláez et al., 2008), sin embargo, el valor nutritivo de la caña de azúcar caracterizada por el contenido de carbohidratos solubles (sacarosa) y estructurales (celulosa, hemicelulosa y lignina), componentes principales de la fibra detergente neutro (FDN), además de su rendimiento por hectárea, hace que su elevado contenido de humedad no sea una limitante para ser incluido en la alimentación de rumiantes (Rangel et al., 2015). El ensilado de caña o “Saccharina” posee deficiencias nutricionales, corregibles mediante la adición de fuentes de nitrógeno no proteico (urea, biuret), subproductos agroindustriales, aditivos microbianos o mezclas minerales (Monroy et al., 2006; Aranda et al., 2012a), por lo que, se ha investigado el efecto de los procesos fermentativos en mejoramiento del contenido proteico, debido a que se ha reportado que la fermentación bajo condiciones aerobias mejora el valor nutritivo de los productos agrícolas representando nuevas opciones para la alimentación animal (Aranda et al., 2012b). Estudios recientes han demostrado que los procesos de fermentación en estado sólido (FES) mejoran el perfil proteico, además de la relación entre proteína cruda (PC) y proteína verdadera (PV). Peláez et al. (2008; 2011) reportaron valores de PC superiores al testigo tras someter a la caña a dos procesos fermentativos consecutivos en presencia de un hongo lignolítico, por ello la FES con bajo contenido de humedad (menor del 12%) y bajo un estado no aséptico y natural ha sido útil para producir diferentes productos como: enzimas, combustibles y alimentos para animales (GumbinaSaid, 1996; Robinson et al., 2002). En las regiones subtropical y tropical húmeda, la escasez de forrajes en las épocas de sequía y de inundaciones, hacen

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necesario la conservación de alimento que garantice el aporte energético y proteico para los rumiantes (Monroy et al., 2006; Aranda et al., 2012a). El objetivo de este estudio fue evaluar la FES más urea y un cultivo microbiano en la calidad y en la cantidad de la proteína cruda y verdadera, cambios en la microbiología y el pH en el producto final de la caña de azúcar.

Materiales y métodos Ubicación El material vegetal se obtuvo en el ejido Plan de Ayala, Huehuetán, Chiapas, México, ubicado a 15° 01’ 18,09” N y 92°22´10,22” O a una altura de 127 msnm. Las pruebas in vitro de FES y microbiológicas se llevaron a cabo en el Laboratorio de Ciencia Animal de la Facultad de Ciencias Agrícolas, Campus IV; mientras que la determinación de PC y PV fue procesado en el Laboratorio de Bromatología en la Facultad de Ciencias Químicas ambas del Campus IV de la Universidad Autónoma de Chiapas, Chiapas, México, durante el periodo comprendió entre el 25 de mayo al 31 de julio de 2015.

Procesado de material vegetal y tratamientos La caña de azúcar integral (tallos, hojas y cogollos) de 300 d (días) de desarrollo (por el mayor contenido de azúcares) se procesó en fresco en un molino (Eléctrico ED-5), con criba de 2.54 cm, se obtuvo una partícula de 0.5 cm de largo por 0.1 cm de ancho, en promedio. Para el ensilaje se utilizó el modelo de micro silos de plástico negro a los que se incorporó 5 kg de caña de azúcar integral molida (CAIM) más 2% de urea como fuente de nitrógeno no proteico (NNP), con o sin inocular el microorganismo (Pediococcus acidilactici, Lindner) con flujo de oxigeno (O2; 95% de pureza,) o bióxido de carbono (CO2, 95% de pureza), el material tuvo un espesor de 20 cm sin estar compactados. Los tratamientos (T) evaluados fueron: T1 = caña integral molida + 2% urea (CIM-U) + Pediococcus acidilactici + O2; T2 = CIM-U + P. acidilactici + CO2; T3 = CIM-U + O2; T4 = CIM-U + CO2.

716

Conteo de carga bacteriana La concentración bacteriana fue estimada usando el método del número más probable (NMP) según la técnica descrita por Ley de Coss et al. (2013), con tres repeticiones por tubo de cultivo (13 x 100 mm) con 4.5 mL de medio de cultivo para bacterias totales (BT) con: 0.06 g de D-(+)-glucosa + 0.06 g D-celobiosa + 0.06 g de almidón; 30 mL de FR clarificado; 5.0 mL de solución mineral I (6 g K2HPO4 en 1000 mL de H2O); 5.0 mL de solución mineral II [6 g KH2PO4 + 6 g (NH4)2SO4 + 12 g NaCl + 2.45 g MgSO4 + 1.6 g CaCl2·H2O en 1000 mL de H2O]; 2.0 mL de solución al 8% de Na2CO3; 2 mL de solución sulfido-cisteína (2.5 g L–cisteína en 15 mL de 2N NaOH + 2.5 g Na2S-9H2O aforado en 100 mL de H2O); 0.2 g de tripticasa peptona y 0.1 mL de solución al 0.1 % de resazurina. Mientras que para las bacterias celulíticas (BC) se utilizó el mismo medio, donde se sustituyó la fuente de carbohidratos por 0.5 g de celulosa cristalina como única fuente de energía. La concentración de bacterias ácido lácticas (BAL) se determinó en medio de cultivo MRS de acuerdo con De Man et al. (1960). El pH se ajustó a 6.4 ± 0.02 con HCl 0.1 N y se midió con un potenciómetro portátil Orion A250. Los medios fueron esterilizados durante 15 min a 121 °C y 15 psi, y se depositaron 4.5 mL de medio en tubos de cultivo; los medios estériles se inocularon con 0.5 mL de un extracto obtenido de la mezcla de 5 g de ensilado de los tratamientos (en cada periodo de fermentación) + 5 mL de agua estéril. Después de agregar el inóculo, los tubos de cultivo se mantuvieron en una incubadora (Felisa FE-373) durante 24 h a 38 ± 0.02 ºC para BT y BAL y diez días para BC, los medios positivos fueron aquellos que presentaron turbidez (Harrigan y Mc Cance, 1979).

Análisis de proteína cruda y proteína verdadera Se tomaron 10 g de muestras que fueron secadas a 60°C en una estufa de aire forzado por 24 h, para determinar el contenido de PC, NNP y PV. Posteriormente las muestras fueron procesadas por digestión según el método micro-Kjeldahl, para conocer la proteína cruda se multiplicó el contenido de nitrógeno total x 6.25 (Lynch y Barbano, 1999), el nitrógeno

717

no proteico (NNP) de acuerdo con McCullough (1967), y se calculó la proteína verdadera por diferencia (NT-NNP) x 6.25 según AOAC (2007).

Análisis estadístico Se utilizó un diseño completamente al azar con arreglo factorial 2 x 2 x 3; dos niveles para indicar fermentación en presencia de O2 o de CO2, respectivamente, dos niveles para adición o no de P. acidilactici, con tres niveles por los tiempos de FES, con tres repeticiones por tratamiento. Los datos del conteo bacteriano fueron analizados mediante la prueba de Kruskal-Wallis con datos de rangos independientes (Wilcoxon), la PC, la PV y el pH fueron analizadas mediante un procedimiento multifactorial con el modelo lineal general (GLM) utilizando el paquete estadístico SAS, bajo el método de comparación múltiple de Tukey (P ≤ 0.05; SAS, 2009).

Resultados y discusión Con respecto al pH hubo reducción en los tratamientos con anaerobiosis, este efecto fue independientemente de adición de P. acidilactici al medio; mientras que adición de O2 mantuvo hasta el final de la incubación pH arriba de 6.75. En la cantidad de PC y PV del producto final (ensilado de caña de azúcar), la FES y la adición de urea presento un efecto lineal y cuadrático; sin embargo, únicamente en la PV las condiciones de anaerobiosis permitieron un mayor (P≤0.05) contenido de este nutriente, resultados similares, pero en condiciones aerobias, fueron reportados por Monroy et al. (2006) donde evaluaron la adición de melaza y pulido de arroz sobre la cantidad de PC y PV en el ensilado de caña de azúcar. Aunque en todos los tratamientos mejoro la cantidad de PC y PV, con respeto a valor reportado para la caña de azúcar (2.47% de PC) hubo mejoras de estos nutrientes a las 72 h de incubación en los T2 (CIM-U con P. acidilactici y CO2) y T4 (CIM-U + CO2). Sin embargo en todos los

718

tratamientos posterior a las 48 h se redujo el contenido de PC; pero no así de la PV, la cual aumento casi en todos los tratamientos, con excepción de T1 (CIM-U con P. acidilactici y O2) sin tener diferencia con T3 (CIM-U y O2) que indica que el flujo de oxígeno en la FES afecto la síntesis de PV en estos tratamientos. Lo que indica la posible presencia de bacterias anaerobias estrictas que sintetizan mayor proporción PV a partir de la PC o NNP presente en el sustrato fermentable. Los resultados encontrados en este trabajo indican la existencia de microorganismos en la caña de azúcar que sintetizan proteína microbiana a partir del NNP adicionado (urea), con lo que mejora el contenido de PC de la caña sin procesar (Rangel et al., 2015). La adición de P. acidilactici aumentó (P<0,05) el contenido de PV en los tratamientos bajo condiciones anaerobias (T2 y T4), se han reportado diferentes perfiles metabólicos para P. acidilactici (Cobos et al., 2011), pero Barros et al., (2001) reportaron que esta bacteria tienen una fuerte actividad productora de bacteriocinas de naturaleza proteica, por lo que se esperaba cantidad similar de PV en los tratamientos inoculados con esta bacteria, incluso por ser una bacteria anaerobia facultativa (Hardie, 1986;), incluyendo que es una bacteria resistente a condiciones ácidas (Abbasiliasi et al., 2012). Cuadro 1. Valores de pH, contenido de proteína cruda y proteína verdadera en la caña de azúcar fermentada en estado sólido adicionada con urea y un probiótico, bajo condiciones contraladas de O2 y CO2, Huehuetán, Chiapas, México. 2015

Tratamientos

Tiempo de fermentación (h) 24

pH T1

7.32ab

8.60a

8.46a

6.70b

6.10b

5.48c

8.51a

8.58a

6.75b

4.91c

4.20c

4.17d

E.E.M

0.56

0.58

0.25

Proteína cruda (%) T1

13.15b

24.16a

13.10b

14.43b

19.11b

15.75b

719

Tratamientos

Tiempo de fermentación (h)

22.82a

14.45b

14.23b

21.51a

26.31a

22.75a

E.E.M

1.69

2.25

1.58

Proteína verdadera (%) T1

11.89a

15.47a

12.52b

12.75a

16.61a

17.24a

15.42a

11.05b

12.78b

14.54a

18.12a

E.E.M

1.84

2.2

2.4

Valores dentro de una columna que no comparten el mismo superíndice son diferentes (p 0.05); E.E.M: error estándar de la media; T1 = caña integral molida + 2% urea (CIM-U) + Pediococcus acidilactici + O2; T2 = CIM-U + P. acidilactici + CO2; T3 = CIM-U + O2; T4 = CIM-U + CO2. a, b, c, d:

Diversos estudios de investigación concluyen que es indispensable una síntesis microbiana de PV por arriba del 49.5% (mejorar la relación PV: PC), se ha reportado que la adición de cultivo microbiano mixto (levaduras y bacterias) ayuda a alcanzar el nivel de PC en el ensilado de caña (Valdivie et al., 1997; Cárdenas et al., 2008). Se han reportado valores de entre 13.72 a 15.18% de PC y de 8.89 a 11.61% de PV cuando a la caña de azúcar se le adicionó melaza y pulido de arroz; y valores de 14.57% de PC y 9.56% de PV a 70 d de conservación; el mayor contenido de proteína se obtuvieron a los 20 d con 15.34 y 10.94% de PC y PV, respectivamente (Monroy et al., 2006), valores similares a los encontrados en este trabajo de investigación. El contenido de PV fue mayor (P≤0.05) a la hora 72 en los tratamientos con flujo de CO2 (T2 y T4), independiente del probiótico. Estos resultados podrían indicar que aumentar los días (> 3 d) de FES de la caña de azúcar permite mayor síntesis microbiana de PV, con la pérdida de PC, pero con el aumento de ácido láctico, como ocurrió en esta investigación, por lo que pH bajos permiten aumentar la retención de PC y una mayor fermentación de los azucares permite la formación de una mayor cantidad de PV (Ramos, 2006).

720

En T1 el valor de pH fue mayor de 7.0 en todas las horas y en T3 en la hora 24 y 48. Esto se atribuye al menor desarrollo de bacterias acido lácticas y a un proceso de volatilización del nitrógeno no proteico (NNP) durante el proceso de fermentación, lo que se correlaciona directamente con la menor cantidad de PV detectada en estos tratamientos hasta las 72 h de incubación (Aranda et al., 2012a). Estos mismos autores evaluaron distintos parámetros bromatológicos de FES de caña de azúcar adicionado con urea, sulfato de amonio, aditivos a base de levaduras, lactobacilos con sus metabolitos, y zeolita mexicana, donde se reporta mayor cantidad de proteína desde las 24 h comparado con aquellos tratamientos que no fueron fermentados, con una reducción en el contenido de PC en las horas siguientes (Aranda et al., 2012a), efecto similar a lo que ocurrió en esta investigación.

Variables microbiológicas En el Cuadro 2 se muestra que al inicio hubo diferencia (P≤0.05) en la concentración de BAL; por la inclusión del probiótico en los tratamientos T1 (CIM-U con P. acidilactici y O2) y T2 (CIM-U con P. acidilactici y CO2), este grupo de bacterias creció en todos los tratamientos hasta una cantidad similar en un periodo de 48 h; lo que indica la presencia de cepas nativas en la caña de azúcar; sin embargo, al finalizar el tiempo de fermentación (72 h) únicamente el tratamiento T1 tuvo la mayor cantidad de BAL (P≤0.05) que el resto de tratamientos, que implica que la cepa de P. acidilactici es una bacteria anaerobia facultativa, similar a lo reportado por Cobos et al. (2011) y Ley de Coss et al. (2013). Las cepas de BAL nativas y la adicionada mediante inóculo a la hora 48 tuvieron una población similar (T1 y T2), con una concentración de 106 células g-1 de MS, por lo anterior, la FES es un medio de cultivo adecuado para mejorar la calidad nutritiva de la caña de azúcar mediante el desarrollo de bacterias productoras de ácido láctico que permite conservar el ensilado de caña de azúcar para la época de estiaje. Cuadro 2. Concentración de bacterias ácido lácticas, bacterias celulolíticas y bacterias totales en el producto de la caña de azúcar fermentada en estado sólido adicionada con urea con y sin probiótico, Huehuetán, Chiapas, México. 2015 Valores dentro de una columna que no comparten el mismo superíndice son diferentes (P≤0.05); E.E.M: error estándar de la media; T1 = caña integral molida + 2% urea (CIM-U) + Pediococcus acidilactici + O2; T2 = CIM-U + P. acidilactici + CO2; T3 = CIM-U + O2; T4 = CIM-U + CO2. a b:

721

Por otra parte, se ha recomendado que el oxígeno en la FES permite un mejor desarrollo de los microorganismos, y con ello mayor producción de metabolitos, además la reducción de la humedad permite el buen manejo de los productos, menor gasto energético y hace eficiente la producción de alimentos para rumiantes (Robinson et al., 2002). Con relación a la concentración de BC no hubo diferencia (P>0.05) a las 24 y 48 h entre los tratamientos, sin embargo, la concentración fue menor (P≤0.05) en los tratamientos con flujo de CO2 contra los tratamientos con flujo de O2 (Cuadro 2). Por dichas concentraciones, indica que independientemente de P. acidilactici, las BC tuvieron un crecimiento en la FES de la caña de azúcar más los aditivos y condiciones establecidas. Respecto a la concentración de BT a las 24 h en todos los tratamientos, fue similar (P>0.05), únicamente en el tratamiento T2 (CIM-U con P. acidilactici y CO2) hubo reducción al final de la prueba, sin embargo, la menor concentración estuvo en el orden de las 7.33 x1011 células g-1 de MS, mientras que la mayor fue de 2.10 x1012 células g-1 de MS lo que indica que los microorganismos allí presentes tienen un excelente crecimiento en el proceso de FES establecidas en esta investigación, tal y como fue reportada por Robinson et al., (2001). Tratamientos

Tiempo de fermentación (h) 24

Bacterias ácido lácticas (x106) T1

110a

150a

350a

200a

110a

70b

75b

150a

95b

30b

600a

70b

E.E.M

160

Bacterias celulolíticas (x106) T1

150000a

350a

140a

350000a

700a

140000a

150a

280ª

390000a

200a

28b

E.E.M

120000

340

722

Bacterias totales (x109) T1

312a

74b

2100ª

937a

146a

733b

579a

333a

1000ª

491a

237a

2100ª

E.E.M

198

444

Agradecimiento Al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT) por el apoyo a este trabajo de investigación dentro del proyecto “Estimación e impacto ambiental de la captura de carbono en plantaciones de palma de aceite (Elaeis guineensis, Jacq) en el estado de Chiapas” dentro de los Proyectos de Desarrollo Científico para Atender Problemas Nacionales (PDCPN2013-01), fondo: I0002, solicitud autorizada: 216526.

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