Hongos ostra (Pleurotus (Pleurotus ostreatus) ostreatus) Por Andrés Guerrero
ÍNDICE Introducción Cultivo de Pleurotus ostreatus Producción
o
compra
spawn Sustrato Preparación del sustrato Alternativas para el sustrato
Inoculación Incubación Fructificación Cosecha
del
Introudcción
Pleurotus
es
un
género
perteneciente
al
phylum
Basidiomycota, presenta un característico basidiocarpo o píleo (sombrero) en forma de ostra, tallos excéntricos y
la
capacidad
de
secretar
enzimas
lignocelulolíticas.
especies
y
variedades
una
gran
variedad
Aproximadamente
de
Pleurotus
se
de 20
cultivan
comercialmente en una amplia variedad de sustratos utilizando
tecnologías
(Buchanan,
1993).
comúnmente consumido
Pleurotus
como
sobre
ligeramente
hongo
todo
en
ostreatus
ostra,
el
diferentes
es
sudeste
conocido
cultivado
asiático,
y
India,
‐
África y Europa (Mandeel, Al Laith y Mohamed, 2005). Este hongo posee características culinarias atractivas, como un alto contenido en fibra y bajo contenido en grasa. Sin embargo, el contenido de proteína es muy pequeño Además presenta
en del
comparación valor
nutricional,
propiedades
antimicrobianas,
con
la
proteína
este
hongo
antioxidantes,
antitumorales,
1
también
antivirales,
hepatoprotectoras,
entre otras (Patel, Naraian y Singh, 2012).
CULTIVO
animal.
HONGOS
Fig 1. Hongos Ostra (Pleurotus ostreatus)
Fig 2. Hongo ostra cosechado
CULTIVO
2
HONGOS
Cultivo de Pleurotus ostreatus
Las especies del género Pleurotus son las segundas más cultivadas del mundo, luego de Agaricus bisporus. A pesar de que su cultivo no se inició hasta finales del siglo XX, éste género representa aproximadamente el 27% de la producción mundial (Sánchez y Royse, 2001). El cultivo de este hongo empezó crecer en los años 70 en América del Norte y en Europa central, donde se hizo
evidente
condiciones
que
los
hongos
podían
controladas
sobre
lignocelulósicos (Muez y Pardo, 2001).
Fig 3. Norte América y Europa central
Fig 4. Sustratos lignocelulósicos
CULTIVO
3
cultivarse
HONGOS
bajo
sustratos
Pleurotus
ostreatus
suele
considerarse
uno
de
los
hongos más fáciles y rentables de cultivar a diferentes escalas comerciales y experimentales. El cultivo de esta especie
comienza
con
la
producción
o
compra
de
semillas, continúa con la preparación del sustrato, la inoculación, la incubación, la formación de primordios, el
desarrollo
de
los
hongos
y
se
completa
recolección de los cuerpos fructíferos maduros.
Notas sobre el cultivo en interiores Preparación
del
medio:
Pasteurizar
el
sustrato
lignocelulósico elegido en agua caliente durante una a
cuatro
horas.
Escurrir
el
agua,
dejar
enfriar
e
cereales
o
inocular. Tipo
preferido
aserrín
de
de
granos;
spawn: el
uso
Granos de
de
granos
como
spawn
permite una fructificación más rápida y con mayores rendimientos. Tiempo de inoculación a fructificación: Entre tres y cinco semanas, dependiendo de la temperatura y el tipo de semilla utilizada. Rendimientos
esperados:
Alto.
Entre
tres
y
cuatro
brotes rápidos con varias semanas de diferencia.
(Cotter, 2014).
CULTIVO
4
HONGOS
con
la
Producción o compra del spawn
En
todo
el
ostreatus.
mundo
Existen
se
cultivan
diferentes
varias
formas
cepas
de
de
P.
ponerlas
a
disposición de los cultivadores:
Aislamiento de tejidos Aislamiento de esporas Compra de cultivos a proveedores especializados Compra de semillas inoculadas
El término spawn es utilizado para describir al micelio que ha crecido en granos u otros sustratos que serán utilizados como inóculo en la producción de hongos.
Existen
diversos
spawns. Sin
protocolos
embargo,
para
comparten
la
preparación
dos
pasos
de
críticos:
Hidratación del grano y esterilización. El grano debe ser sumergido en agua durante 24 horas para asgurar una buena hidratación. En el caso de manejarse un volumen pequeño, el grano puede hervirse en agua durante 15 minutos
para
asegurar
la
hidratación.
El
objetivo
es
asegurar que el contenido de humedad del grano sea aproximadamente el 55% (Guzmán et al., 1983). Para no tener
contaminaciones
microbianas
evitar aplastar el grano.
CULTIVO
5
HONGOS
es
importante
Fig 5. Hidratación del grano
Fig
6.
Esterilización
del
grano
autoclave
Fig 7. Inoculación del grano
Fig 8. Incubación del grano en oscuridad
CULTIVO
6
HONGOS
en
Después
de
la
etapa
de
hidratación
el
grano
debe
esterilizarse en un autoclave a 121°C, 1.5 ATM durante 45
minutos.
temperatura agar
Luego
el
ambiente
colonizado
con
grano e
el
debe
inocularse micelio
ser con
de
P.
enfriado
a
pedazos
de
ostreatus.
La
incubación del grano debe realizarse en la oscuridad entre
20-30°C
después
de
la
(Guzmán
et
inoculación
al.,
es
1983).
Una
importante
semana
sacudir
el
frasco con el grano inoculado con el fin de redistribuir el
grano
colonizado
a
otros
puntos
para
que
se
colonicen los granos restantes. La inoculación total del grano
tardará
aproximadamente
dos
semanas
más.
Luego de este tiempo el grano está listo para inocular el sustrato para la producción de Pleurotus ostreatus o para la producción en masa de spawn.
Fig 9. Spawn
CULTIVO
7
HONGOS
Sustrato
Para
seleccionar
el
sustrato
es
importante
tener
en
cuenta la disponibilidad y la abundancia del mismo. Asimismo, es importante tener en cuenta el precio de la materia prima escogida. Existe
una
gran
variedad
de
sustratos
que
pueden
utilizarse para el cultivo de hongos, algunos de estos son las pajas de cebada, trigo, centeno, avena, entre otros.
Preparación del sustrato En el caso de utilizar pajas, estas deben ser cortadas en
trozos
de
5
cm,
esto
permite
la
retención
de
humedad y que las bolsas no se rompan en la etapa de inoculación. Para utilizar el sustrato en el cultivo de hongos
ostra
es
necesario
aplicar
un
proceso
de
Pasteurización para disminuir la microbiota presente en el
medio
y
evitar
que
exista
una
competencia
por
nutrientes y espacio. De esta manera se logra preparar al sustrato para un eficaz desarrollo de Pleurotus. Se pueden aplicar dos distintos métodos: 1. Pasteurización a vapor 2. Pasteurización por inmersión de agua El segundo método es el más accesible. Consiste en sumergir
el
sustrato
previamente
introducido
en
malla en agua caliente (80-90°C) durante 4 horas.
CULTIVO
8
HONGOS
una
Una
vez
acabado
el
proceso
de
Pasteurización
es
importante dejar enfriar el sustrato para que se puede realizar
la
siembra
con
la
semilla
(spawn).
Para
asegurar un buen cultivo se puede adicionar yeso y cal al sustrato y mezclarlo, esto regulará el pH del medio.
Alternativas para el sustrato En las regiones tropicales o subtropicales
se puede
hacer uso de sustratos fermentados para la producción de P. ostreatus en operaciones a pequeña escala y de bajo
costo
(Zied
y
Pardo,
2017).
La
fermentación
aeróbica de las materia primas es necesaria cuando se utilizan
sustratos
frescos
ricos
en
azúcares,
como
la
pulpa de café, bagazo de caña de azúcar o tallos de plátano,
entre
desventajas
de
probabilidad motivo,
se
otros.
de
utilizar
embargo,
estos
contaminación
deben
fisicoquímicas
Sin
tomar
que
en
podrían
sustratos
cuenta evitar
las
la
Fig 10. Pulpa de café
9
es
bacteriana.
(Zied y Pardo, 2017).
CULTIVO
una
HONGOS
de
las
la
alta
Por
este
propiedades
contaminación
Fig 11. Pajas
Fig 12. Pasteurización por inmersión
Fig 13. Sustrato mezclado con cal y yeso
CULTIVO
10
HONGOS
Inoculación
Realizar el aseo del área de trabajo con alcohol al 70%. Asegurarse de que el sustrato esté hidratado (70-90% de humedad) y mezclado muy bien con el yeso y la cal. La inoculación del sustrato puede hacerse simplemente mezclando el spawn con el sustrato en una proporción del 2 al 5% (peso húmedo) a medida que se llena la bolsa (Zied y Pardo, 2017). Otro método de inoculación consiste
en
llenar
la
bolsa
con
capas
de
sustrato
y
capas alternas de semillas hasta que la bolsa esté casi llena
(Zied
y
Pardo,
2017).
Las
bolsas
se
cierra
simplemente haciendo un nudo o colocando una liga. La bolsa debe atarse o sellarse lo más cerca posible del sustrato para minimizar el espacio por encima, evitando la formación de hongos en la parte superior del sustrato y la pérdida de humedad.
Fig 14. Inoculación por capas
CULTIVO
11
HONGOS
Fig 15. Sustrato inoculado por capas
Fig 16. Sutrato parcialmente colonizado por P. ostreatus
CULTIVO
12
HONGOS
Incubación
Esta fase se realiza de 20-30°C en completa oscuridad (Zied y Pardo, 2017). La bolsa inoculada pasa un área totalmente oscura y abrigada. Se puede utilizar una caja
para
proveer
colonización. inoculación,
las
Cuatro se
o
condiciones cinco
realizan
días
varios
óptimas
después
cortes
de
de la
pequeños
uniformemente con un bisturí esterilizado, una aguja de jeringa o una navaja para permitir el intercambio de gases. El tiempo de incubación puede variar, entre 1520 días, dependiendo de la cepa de P. ostreatus. La
colonización
micelio
ha
completa
crecido
y
ha
se
consigue
cubierto
cuando
completamente
el el
sustrato y una capa compacta de micelio blanco es visible
a
través
de
la
bolsa.
Durante
la
etapa
de
incubación, la bolsa debe ser vigilada de cerca para detectar
la
contaminación
por
moho.
Los
signos
de
contaminación por moho o bacterias podrían indicar que la pasteurización fue inadecuada o que el spawn utilizado estaba contaminado(Guzmán et al., 1983).
CULTIVO
13
HONGOS
Fig 17.Sustrato completamente colonizado
Fig 18. Brote de primordio (día 1)
Fig 19. Desarrollo de basidiomatas (día 2)
CULTIVO
14
HONGOS
Fructificación
Cuando
el
micelio
completamente
el
haya
sustrato
crecido
y
se
y
observe
cubierto una
capa
compacta de micelio blanco se deben llevar las fundas a un lugar que ofrezca una ventilación moderada e iluminación
difusa.
Es
importante
realizar
cortes
de
unos 2 cm en la funda evitando cortar el micelio. Se deberá rociar agua a la funda entre 4-5 veces al día para
inducir
la
formación
de
primordios.
Las
concentraciones de CO2 superiores a 700 ppm dan lugar a estipes alargados, píleo pequeños o la ausencia total de hongos (Sánchez y Royse, 2001). Los
primordios
son
las
estructuras
que
conducen
desarrollo de los cuerpos fructíferos (basidiomatas).
al La
inducción de los primordios se realiza cambiando las condiciones ambientales. La temperatura de la sala se reduce a 12-22°C, la humedad relativa se aumenta al 85-90% y se aplica un ciclo de luz (Guzmán et al., 1983).
CULTIVO
15
HONGOS
Fig 19. Cuerpos fructíferos en desarrollo (día 3)
Fig
20.
(día 4)
Fig 21. Cuerpos fructíferos en desarrollo (día 5)
CULTIVO
16
HONGOS
Cuerpos
fructíferos
en
desarrollo
Cosecha
Los cuerpos fructíferos (basidiomatas) se desarrollarán en
aproximadamente
cinco
días
luego
del
brote
de
primordios. Los racimos de cuerpos fructíferos se retiran con
un
cuchillo
o
eliminar
cuidadosa
(Cotter,
2014).
Si
girando y se
el
racimo,
completamente dejan
trozos
es
importante
todo
de
el
estipe
estípite
aún
adheridos al sustrato, aumentan las posibilidades de que se desarrollen mohos o bacterias. Se
pueden
obtener
múltiples
brotes
por
bolsa
de
sustrato, siendo el primer brote el más productivo. A nivel comercial, se suelen cosechar tres brotes antes de desechar el sustrato (Zied y Pardo, 2017).
CULTIVO
17
HONGOS
Fig
22.
Cuerpos
fructíferos
en
desarrollo
Fig
(día 6)
Fig
24.
23.
Cuerpos
fructíferos
en
desarrollo
(día 7)
Cuerpos
fructíferos
listos
para
Fig 25. Racimo de basidiomatas cosechado
cosechar
CULTIVO
18
HONGOS
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20
HONGOS