PROYECTO “DESARROLLO DE CAPACIDADES Y VALOR AGREGADO AL PRODUCTO TRUCHA EN PUNO”
COMPONENTE TECNOLOGIA PRODUCTIVA
MANUAL DE MANEJO DE OVAS EMBRIONADAS Y OBTENCION DE ALEVINOS DE TRUCHA
(Oncorhynchus mykiss)
CON ENFOQUE DE BUENAS PRÁCTICAS ACUÍCOLAS
PUNO – PERU 2014 1
EQUIPO TECNICO DEL PROYECTO Ing Econ. Nancy Montesinos Condo Jefe del Proyecto Blgo. Deli Américo Hanco Ccopa Ing. José Diego Llacsa Mamani Blgo. Wilson Reynaldo Quispe Gallegos Blgo. Germán Mamani Uturunco Ing. Zenon Beltran Anchapuri Quispe Blgo. Wilson A. Sanga Morales Ing. Rosalia Quispe Fuentes
COORDINACION REGIONAL Lic. Reynaldo Chambi Quispe Coordinador Ejecutivo Regional Puno
COORDINADORA DE ORGANIZACIONES CAMPESINAS E INSTITUCIONES AGRARIAS DEL PERU - COORDINADORA RURAL Jr. Tizón y Bueno N° 847 Jesús María Telf.(511) 4715238, Fax: 4719093 Lima – Perú Jr. Cajamarca N° 527 Piso 4 Telf. 051-363824 Puno – Perú
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INDICE PRESENTACIÓN I. INFRAESTRUCTURA (laboratorio de Incubación) II. PROCEDIMIENTO DE REINCUBACIÓN DE OVAS 2.1.
Desinfección de materiales y equipos
2.2.
Recepción de ovas
2.3.
Transporte de ovas
2.4.
Recepción y desembalaje
2.5.
Registro de temperatura
2.6.
Atemperamiento del agua
2.7.
Rehidratación de ovas
2.8.
Desinfección de ovas
2.9.
Aclimatación térmica
2.10.
Método Von Bayer
2.11.
Reincubación de ovas
2.12.
Mantenimiento y medidas de limpieza
III.
DESARROLLO EMBRIONARIO, LARVAS Y ALEVINOS
3.1.
Desarrollo Embrionario
3.2.
Larvaje
3.3.
Alevinaje
IV. BIBLIOGRAFIA
V. ANEXOS 3
PRESENTACIÓN
La Coordinadora Rural como institución promotora del Desarrollo Rural, a través del Proyecto “Desarrollo de Capacidades y Valor Agregado al Producto Trucha en Puno” tiene el propósito de elevar la rentabilidad de la cadena productiva de trucha en los distritos de Juli, Pomata y Desaguadero de la Provincia de Chucuito.
El compromiso de la Coordinadora Rural es el desarrollo rural, teniendo en cuenta los objetivos institucionales enmarcados en su Plan General de Acción, promueve la ejecución de proyectos productivos y sociales en sus ámbitos de intervención, teniendo en consideración que a nivel nacional, en los últimos años el sector truchícola ha venido registrando incrementos considerables en los niveles de producción, ya que en el país y a nivel Regional existen condiciones comparativas y competitivas aptas para desarrollar la actividad de acuicultura de truchas.
El despegue de la truchicultura en nuestro país se viene desarrollando en un escenario de dependencia tecnológica y económica, en razón de que la principal fuente del material inicial o materia prima que son las ovas, son adquiridas desde el extranjero como Estados Unidos y Dinamarca. Según la información de la Dirección General de Acuicultura del Ministerio de la Producción sobre la importación de ovas embrionadas de trucha y la base de datos de Aduanas con la partida arancelaria N° 511911000 “Huevas y Lechas de Pescado”, se ha observado que la importación de ovas de trucha en 2010 se ha incrementado en un 28,85 % con relación al 2009, puesto que de 66 185 millares, se han registrado en 2010 unos 85 280 millares de ovas embrionadas. Con relación al origen de las ovas embrionadas de trucha en el 2010, confirmando la tendencia de los años anteriores evaluados, en un 96,49 % provienen del centro de producción de la empresa Troutlodge Inc. de los EEUU de Norteamérica (USA) y en un 3,51 % provienen del centro de producción de la empresa Aquasearch Ova de Dinamarca (DK).
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COORDINADORA RURAL 1.
INFRAESTRUCTURA (Laboratorio de Incubación de Ovas) Para la reincubación de ovas importadas se tiene que considerar lo siguiente: la infraestructura básica es la eclosería o laboratorio de incubación y también llamada sala de incubación. El agua que ingresa a la eclosería, debe tener calidad piscícola y cantidad. contar con filtros de agua. medios de purificación (radiación ultravioleta) sistemas de manipulación térmica del agua (chillers), técnicas de oxigenación y reciclaje del agua.
1.1. Sala de Incubación o ecloseria Es el ambiente diseñado para la producción de alevinos. Las dimensiones depende directamente de la producción que se desea obtener, los muros y el techo deben ser de un (01) espesor y características adecuadas que la protejan de las posibles y fuertes variaciones de temperatura ambiental, las ventanas deben estar preferentemente en la fachada norte para que el sol no incida directamente en el interior, suelo revestido de cemento y pendiente de 1% que facilite la evacuación del agua. Las pilas o artesas varían de dimensiones ejemplo. Longitud : 3-5 m Ancho máximo : 0.6 m (en parejas), 0.8 m (individual) Profundidad : 0.25-0.35 m. Los materiales para construir la pila o artesas pueden ser: Madera fibra de vidrio cemento aluminio plastificados
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Fig. N° 1 sala de incubación vista interior
Fig. N° 2 extracción de ovas muertas
Cuadro 1. Capacidad de las bandejas de incubación (eclosorio) Superficie de la bandeja
Número de huevos en una sola capa según diámetros 3 mm
4 mm
5 mm
6 mm
50 cm x 40 cm
22,222
12,500
8,000
5,555
50 cm x 50 cm
27,777
15,625
10,000
6,944
60 cm x 40 cm
26,666
15,000
9,600
6,666
70 cm x 40 cm
31,111
17,500
11,200
7,777
70 cm x 50 cm
38,888
21,875
14,000
9,722
80 cm x 40 cm
35,555
20,000
12,800
8,888
44,444 25,000 16,000 80 cm x 50 cm Fuente: Incagro e Inversiones Santa Inés SAC. 2010
11,111
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Fig. N° 3. Carcales
Fig. N° 5. Bastidores
Fig. N°7. Incubadora vertical
Fig. N° 4. Jarra milimetrada, termómetro regla de von Bayer
Fig. N° 6. Seleccionador
Fig. N°8. Artesa horizontal
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Cuadro 2. Consumo de Oxígeno en ml/H (A) y el caudal mínimo necesario en ml/S (B) para incubadoras
Para 100,000 Individuos Huevos con ojos Eclosión Larvas sin comer Fuente: DIREPRO-UNAP, 2009
8 ºC
11 ºC
14 ºC
A
B
A
B
A
B
35 110
4 13
47 147
5 17
70 220
8 25
165
19
220
25
330
37
Cuadro 3. Crecimiento embrionario relacionado a la temperatura °C en grados día Temperatura (ºC)
Ojos
6 180 7 175 8 168 9 162 10 158 11 156 12 156 Fuente: DIREPRO – UNAP, 2009
Eclosión
Inicio de comer
Total grados día
+180 +175 +168 +162 +158 +156 +156
+320 +315 +304 +288 +288 +293 +276
680 665 640 612 604 605 588
1.2. Edad Embrionario La edad del embrión, se expresa en la suma de temperaturas que alcanzan los embriones dentro de un determinado tiempo, hasta que eclosionen. La suma de temperaturas (unidades térmicas) depende de la temperatura del agua de la eclosería Ejemplo N° 01 ¿en cuánto tiempo en días empezara la eclosión (aparición de primeros órganos visuales) si se sabe que la “Troutlodge Inc.” de los Estados Unidos de Norte América, trabaja con 10 °C de temperatura de agua y sus envíos lo hacen a una edad de 240 °C/día. Si consideramos que los embriones de trucha eclosionan a una edad de 300 °C/día? Solución Temperatura del agua 10 °C Edad de eclosión 300°C
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300 °C/día / 10 °C = 30dias Respuesta: eclosionara a los 30 días
Fig. N° 9. Evaluación de ovas embrionadas
Cuadro 4. Tabla referencial para determinar el número de días para alcanzar es estadio de “ovas con ojo” de trucha arco iris Temperatura del agua (°C) del laboratorio de incubación Edad del Nº de (Eclosorio) embrión días para 7 8 9 10 11 12 13 14 Grados eclosión Día Número de días para alcanzar el estadio de "ovas ojo" 10 180 26 9 190 27 8 200 29 8 210 30 7 220 31 6 230 33 5 240 34 4 250 36 Fuente: DIREPRO – UNAP, 2009
23 24 25 26 28 29 30 31
20 21 22 23 24 26 27 28
18 19 20 21 22 23 24 25
16 17 18 19 20 21 22 23
15 16 17 18 18 19 20 21
14 15 15 16 17 18 18 19
13 14 14 15 16 16 17 18
Desde el centro de producción del extranjero, las ovas son enviadas cuando su desarrollo embrionario, alcanzan a sumar 210 hasta 220 ºC/día. Por las demoras en el envío y el
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transporte, las ovas suelen llegar al lugar de destino acumulando una temperatura de 230 hasta 250 º C/día.
Ejemplo N° 02. En cuanto tiempo en días eclosionara las ovas y cuantos días le falta si la temperatura promedio del agua de la eclosería es de 12 °C, las ovas eclosionan cuando la suma de las temperaturas llegan a los 300 ºC/día si las ovas llegaron con un retraso de 240 ºC/día ? Solución: Tiempo en eclosionar con una temperatura de ecloseria 12°C =? 300 °C/12° C = 25 días.
El número de días en empezar a eclosionar es 25 días
Días que faltan después del envió si llego con 240 ºC/día =? 300 – 240 = 60 60/12 = 5 días para las condiciones de temperatura promedio 12 ºC, solo faltaría de 5 días para eclosionar.
Cuadro 5. Determinación del número de días para alcanzar la eclosión de los embriones de trucha arco iris Edad del Embrión Grados-Día
Temperatura del agua (°C) de laboratorio de incubación (Eclosorio) 7
260 37 270 39 280 40 290 42 300 43 310 44 320 46 330 47 Fuente: DIREPRO – UNAP, 2009 2.
8 33 34 35 36 38 39 40 41
9 29 30 31 32 33 34 36 37
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11
Número de Días 26 24 27 25 28 25 29 26 30 27 31 28 32 29 33 30
12
13
14
22 23 23 24 25 26 27 28
20 21 22 22 23 24 25 25
19 19 20 21 21 22 23 24
PROCEDIMIENTO DE REINCUBACION DE OVAS IMPORTADAS
2.1. Desinfección de materiales y equipos piscícolas
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Los materiales y equipos deben ser desinfectadas antes y después de usar insumos químicos autorizados y garantizados por la entidad competente. Evitar posibles riesgos de introducción de enfermedades de origen bacteriana o viral. La limpieza y desinfección de utensilios deben ser desinfectados en un recipiente de plástico. Los desinfectantes químicos deben ser amigables con el medio ambiente como Amonios Cuaternarios de 800 mg/L y Yodo Orgánico a 100 mg/L. El periodo de exposición de la solución de desinfectantes deben ser lo más prolongado posible (2 a 3 horas). Antes de utilizar los utensilios deben lavarse bien con agua limpia.
Fig. N° 10. Desinfección de material
2.2. Recepción de ovas importadas en el aeropuerto regional(local) La recepción de las ovas importadas en el aeropuerto, debe realizar el representante de la empresa y un representante de la Dirección Regional de la Producción. Registrar la fecha y hora de recepción y las debidamente etiquetadas. Verificar que las cajas transportadas, se encuentren en posición vertical según la indicación del proveedor. No debe existir signos de deterioro como hundimientos, roturas, humedad, etc. El envio de la caja de tecnoport (pluma-vit) con ovas desde el aeropuerto central (Lima) hasta el aeropuerto regional, a veces tienen retraso en el horario de salida o a veces postergaciones por situaciones imprevistas, deben ser comunicadas al comprador y/o representante de la empresa.
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La responsabilidad que asumen el comprador (importador) es desde la recepción en el aeropuerto regional y trasporte a laboratorios de incubación de destino.
Fig. N° 11. Recepción de ovas en aeropuerto
2.3. Transporte de caja con ovas al laboratorio de incubación El acceso vial destino al laboratorio de incubación (eclosería) deben ser adecuadas. El transporte de ovas al laboratorio (eclosería) se debe transportar con cuidado, evitando que se revuelvan, aglomeren y se golpeen. El transporte de cajas con ovas se debe mantener en posición vertical sin inclinación. No transportar las ovas en caja a la altura de las llantas de la movilidad, ni en la parte posterior del vehículo. 2.4. Recepción y desembalaje de ovas importadas Antes del proceso homogenización de la temperatura del agua de la eclosería y la realización de aclimatación térmica, se debe medir la temperatura del ambiente y del agua. La recepción y el desembalaje de las cajas debe estar bajo la responsabilidad del profesional o técnico pesquero debidamente con indumentaria adecuada. Durante la recepción, se debe manipular con cuidado y evitar golpes innecesarios, manteniendo en posición vertical.
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La caja de tecnoport en el interior dispone de bandeja con ovas cubiertas con “tul” húmedo. La bandeja superior viene sin ovas; pero, con hielo, esta debe ser preparado con la misma agua de ecloseria. El número de bandejas dependerá de la cantidad adquirida, la bandeja inferior viene vacía (sin ovas) con el fin de que el agua generada durante el viaje se acumule en el espacio del fondo y no mueva en exceso a los embriones.
Fig. N° 12 y 13. Recepción y desembalaje de ovas importadas
2.5. Registro de temperatura de las ovas Registrar la temperatura de ovas de bandeja superior, bandeja medio, bandeja inferior por un tiempo de 3 minutos, repetir 3 veces y registrar los tres valores de promedio de temperatura. Luego de medir la temperatura de las ovas, se retira el “tul fina” que cubre las ovas de primera bandeja, enrollando cuidadosamente de ambos extremos en forma de barra horizontal.
Fig. N° 14, 15 y 16. Registro de temperatura
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2.6. Atemperamiento del agua de laboratorio (Eclosorio) En un recipiente de 40 litros el agua de eclosorio se disminuye la temperatura hasta llegar a la temperatura de las ovas importadas (“De 11 °C a 6°C”). Para atemperar el agua de eclosorio, se utiliza hielo en bloque o hielo en escamas (2 kg/40 Litros) por tiempo de 15-30 minutos, dependiendo del técnico que esté a cargo de las maniobras.
Fig. N° 17 Atemperamiento de ovas importadas
Cuadro 6. Uso de hielo en escamas y en bloque para el atemperamiento de 40 litros de agua del eclosorio. Tiempo en minutos
Hielo en Escamas
Hielo en Bloque
1 Kg de hielo ºC
2 Kg de Hielo °C
2 kilos de hielo ºC
0
12.0
12.0
12.5
5
8.0
7.0
11.0
10
8.0
6.0
10.5
15
8.0
6.0
10.0
20
8.0
6.0
9.5
14
25
8.0
6.0
9.0
30
8.0
6.0
8.5
35
8.0
6.0
8.5
40 8.0 Fuente: DIREPRO – UNAP, 2009
6.0
8.0
2.7. Rehidratación de ovas Durante el traslado, las ovas se deshidratan, razón por la cual se debe recuperar el balance hídrico de los embriones una vez abierta las cajas. Es evitar el shock térmico por la diferencia de temperaturas. Restablecer la pérdida del agua en las ovas, ocurrido durante el tiempo de su transporte. Para su rehidratación propiamente, se emplea el agua atemperada (enfriada), utilizando un aspersor o regadera adecuada. El tiempo de rehidratación a través de flujos intermitentes con el aspersor o regadera durante de 10 a 15 minutos. 2.8. Desinfección de ovas Se debe utilizar desinfectantes autorizadas por la autoridad sanitaria como Iodine, Aquayodo o Yodo patrón, a una solución de 100 ppm para desinfectar 2000 ovas por 10 minutos. Los desinfectantes se diluye en el agua atemperada (“enfriada” a la temperatura de las ovas). Una vez preparada la solución desinfectante, se coloca las ovas en bastidores se sumerge por inmersión durante 10 minutos. Durante el proceso de desinfección se debe controlar el nivel de oxígeno y el pH del medio desinfectante.
Fig. N° 18. Preparación de solución desinfectante
Fig. N°19. Desinfección de ovas
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a)
Desinfección con solución IODINE Cuadro 7. Cálculos referenciales de desinfección con solución Iodine Solución Agua de Desinfección
N° Ovas
Solución PVP Iodine
Concentración PVP Iodine
1 Litro
2,000
1.6 ml/Litro (agua)
100 ppm ó (mg/L)
Fuente: Miranda, 2009 Cuadro 8. Desinfección de ovas con IODINE por la cantidad de litros en agua Volumen de las Tinas (Litros)
N° de Ovas Desinfectadas
Adición de PVP Iodine (ml = mililitro)
10
10 x 2,000 = 20,000
(1.6 ml) (10) = 16 ml
20
20 x 2,000 = 40,000
(1.6 ml) (20) = 32 ml
40
40 x 2,000 = 80,000
(1.6 ml) (40) = 64 ml
50
50 x 2,000 = 100,000
(1.6 ml) (50) = 80 ml
100 100 x 2,000 = 200,000 Fuente: Miranda, 2009 b)
(1.6 ml) (100) = 160 ml
Desinfección con solución AQUA YODO Cuadro 9. Cálculos referenciales de desinfección con solución Aqua yodo Solución Agua de Desinfección 1 Litro
N° Ovas
Solución PVP AQUAYODO
Concentración PVP Aqua yodo
2,000
6.6 ml/Litro (agua)
100 ppm ó (mg/L)
Fuente: Miranda, 2009 Cuadro 10. Desinfección de ovas con Aqua yodo por la cantidad de litros en agua
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Volumen de las Tinas (Litros)
N° de Ovas Desinfectadas
Adición de Aqua Yodo (ml = mili litro)
10
10 x 2,000 = 20,000
(6.6 ml) (10) = 66 ml
20
20 x 2,000 = 40,000
(6.6 ml) (20) = 132 ml
40
40 x 2,000 = 80,000
(6.6 ml) (40) = 264 ml
50
50 x 2,000 = 100,000
(6.6 ml) (50) = 330 ml
100 100 x 2,000 = 200,000 Fuente: Miranda, 2009
(6.6 ml) (100) = 660 ml
Cuadro 11. Cálculos referenciales de desinfección con solución Yodo Patrón Solución Agua de Desinfección
N° Ovas
Solución Patrón
Concentración Yodo Patrón
1 Litro
2,000
10 ml/L (Agua)
100 ppm ó (mg/L)
Fuente: Miranda, N. 2009 Cuadro 12. Desinfección de ovas con Yodo Patrón por la cantidad de litros en agua
2.9
Volumen de las Tinas (Litros)
N° de Ovas Desinfectadas
Adición de Yodo Patrón (ml)
10
10 x 2,000 = 20,000
(10 ml) (10) = 100 ml
20
20 x 2,000 = 40,000
(10 ml) (20) = 200 ml
40
40 x 2,000 = 80,000
(10 ml) (40) = 400 ml
50
50 x 2,000 = 100,000
(10 ml) (50) = 500 ml
100 100 x 2,000 = 200,000 Fuente: Miranda, N. 2009 Aclimatación térmica de ovas desinfectadas
(10 ml) (100) = 1000 ml
La aclimatación debe ser gradual (1°C/hora), es decir si la temperatura del agua es 6°C y la temperatura del agua del eclosorio es 11 °C la diferencia es de 5, entonces el tiempo de aclimatación será de 5 horas. Se debe contar con artesas, materiales y 5 recipientes (tinas) adecuadas con capacidad de 50 litros. El flujo de agua debe ser continuo y control del nivel de oxígeno disuelto. Control permanente de la temperatura del agua, según la diferencia térmica. Mientras se puede realizar la cuantificación del total de ovas recibidas, ya sea por método Von Bayer u otro método. 2.10. Método de Von Bayer para la medición y conteo de ovas
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El método de Von Bayer consiste en utiliza una regla de medición de ovas que mide 6 pulgadas (153 mm) y 12 pulgadas (305 mm) de largo (dimensión interior), doblada a 45° con una profundidad de 1.5 pulgadas (~ 3.8 cm). Procedimiento para el Conteo de Ovas con regla de 305 mm: Colocar en la regla Von Bayer de 12 pulgadas 305 mm) una hilera de ovas, hasta completar la regla. Contar el número de ovas contenidas en la regla. Repetir la operación indicada por 3 veces consecutivas de distintas bandejas que contienen las ovas, luego hallar el promedio de los 3 conteos. Si el número promedio de ovas es de 60, buscando en la misma fila de la tabla (Anexo) se corresponde 8,939 ovas por litro.
Fig. N° 20. Métodos de von Bayer
2.11. Reincubación de ovas Las ovas deben mantenerse en oscuridad hasta el final de la reabsorción del saco vitelino, la necesidad de usar agua de la mejor calidad térmica y física (ausencia de sólidos en suspensión). Durante la reincubación, no deben ser sometidos a estrés mecánico (movimientos bruscos) hasta alcanzar el estado de embrión “ovas con ojo” Se debe utilizar flujo de agua al menos 1 litro por minuto por cada 10,000 ovas y día por medio. Aplicar tratamientos antimicóticos autorizados por la entidad competente del sector. Se debe incubar las ovas en una sola capa en los bastidores, para garantizar el mejor desarrollo embrionario.
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Las incubadoras que comúnmente se utilizan en nuestro medio, son las verticales de tipo californiano, para esto se debe contar con una buena oxigenación del agua. El periodo que dura el proceso de reincubación hasta la obtención de larvas y/o alevinos post larva de 25 a 30 días aproximadamente, dependiendo de la temperatura del agua.
Fig. N° 21 y 22 Reincubación de ovas
2.12. Mantenimiento y medidas de limpieza Luego de concluir con los trabajos de hidratación, desinfección y aclimatación térmica; se debe cumplir con la evacuación de las soluciones desinfectantes, vertiendo a un relleno sanitario especialmente diseñado, preparado y ubicado; de tal manera que no haya peligro de escurrimiento o filtración que afecte al centro piscícola ni al medio ambiente. Los utensilios, materiales y equipos utilizados durante todo el proceso de trabajo, deben ser desinfectados de inmediato después de terminada la faena. Las cajas de transporte de las ovas importadas y otros materiales (guantes, mascarillas) deberán dispuestos correctamente en lugares apropiados. Retirar las ovas muertas, cuyo aspecto opaco y blanquecino contrasta con la transparencia y color anaranjado de los vivos.
Fig. N° 23. Iodine
Fig. N° 24. Sal granulado
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3. 3.1.
DESARROLLO EMBRIONARIO, LARVAS Y ALEVINOS Desarrollo Embrionario El tiempo transcurrido para completar el desarrollo embrionario hasta la eclosión está en un rango de 4 a 5 días (50 grados/día), dependiendo de la temperatura del agua. La eclosión tiene un rango de 4 – 10 días de duración. Durante la reincubación, las ovas importadas, solo completan su desarrollo embrionario, desde el estadio de “ovas ojo” hasta la eclosión o nacimiento. Las ovas deben permanecer inmóviles hasta que se complete el desarrollo embrionario, es decir hasta que llegue la eclosión, la misma que no se produce como una explosión, sino que pasa varios días desde que aparecen las primeras larvas hasta que eclosionen las últimas. Las anomalías en la mayoría de los casos, suelen ser reflejo del mal manejo previo y las características físicas y químicas inadecuadas del agua.
3.2.
Larvaje
La fase de alimentación se debe realizar en la misma unidad de estanque adecuada como pintado con colores gris perla, color celeste o verde claro. Durante esta etapa, se debe mantener oscuridad absoluta. El periodo larvario es el más delicado, por lo que el desarrollo, manejo y cuidado de los peces en esta etapa va a incidir directamente en el éxito de la producción prevista. Los cuidados que se requieren en esta etapa son: La limpieza de las artesas o pilas, retirando las larvas muertas, teniendo cuidado de no tocar el saco vitelino de las larvas vivas, por ser su membrana delicada No mover las larvas, en caso necesario no hacer directamente, sino provocando corrientes de agua. Referente a la iluminación, las larvas recién nacidas se deben proteger de la luz directa, tanto natural y artificial. Desde el momento en que las larvas nadan y se dispersan es recomendable que dispongan de la iluminación adecuada para ver y atrapar las partículas alimenticias. La primera alimentación mixta (endógena y exógena) de los pre alevinos (final del larvaje) debe iniciarse cuando aún disponen de la tercera o cuarta parte de su saco vitelino. En esta fase conviene ser generoso, ya que se trata de acostumbrar a los peces a comer. El alimento a suministrarse (pre inicio), debe ser del tamaño adecuado a las exigencias de los pre alevinos que apenas comienzan a comer, se le deben dar raciones muy pequeñas a intervalos de una hora, durante las ocho horas de la jornada normal de trabajo.
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Se debe priorizar las medidas profilácticas, controlando los parámetros físico químicos del agua, el caudal y limpieza. Se recomienda medir el oxígeno a la salida de los estanques, idealmente no debería bajar de 5 mg/litro, valores menores de 4 mg/litro pone en riesgo la sobrevivencia de las larvas. Regularmente se debe retirar larvas deformes (cola de violin, siameses, escoliosis, etc.)
Fig. N° 25. Etapa de larva
3.3.
Alevinaje
Una vez que la mayor parte de los especímenes, se encuentra nadando en la columna de agua, se comienza con la fase de alevinaje. Para facilitar la captura del alimento por los peces, se debe mantener una intensidad luminosa de 400 lux en la superficie del agua y si existe el recurso, se puede mantener 24hr de luz. El alimento se debe suministrar “a libre disposición” la mayor cantidad de veces posible (pero en pequeñas dosis, no necesariamente a saciedad) y las 24hr del día. Esto implicará que se suministrará cerca de un 6 a 8%Peso Corporal por día en alimento. La tasa de cambio se debe aumentar a no más de 1,5 veces por hora. Aunque se debe revisar en forma periódica el oxígeno de salida de los estanques. Tratando siempre de mantener 5mg/L de salida. Si el valor es mayor, se puede reducir levemente el flujo, si es menor, se debe aumentar. Parte del alimento que se suministrará no será utilizado por los peces y se acumulará en el fondo del estanque. Esto implicará que diariamente, se aplique la limpieza con el flujo de agua con la manguera igual que en la etapa anterior. Se debe registrar diariamente la mortalidad extraída y diferenciar sus malformaciones. Como ahora no existen especímenes en el fondo del estanque (salvo los muertos), se puede utilizar con mucho
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cuidado un cepillo o brocha para “barrer” el fondo del estanque y eliminar partículas contaminantes que pudieran estar adheridas a las paredes. Durante esta fase, si se alimenta durante el día solamente, los especímenes por lo menos duplicarán su peso cada 15 días aprox., por lo que no se recomienda realizar controles de crecimiento antes del mes de cultivo. Si se alimenta las 24hr del día, los especímenes presentarán crecimientos mucho mayores, fácilmente un 300% en un mes. Si esta fase se realiza en estanques exteriores y no se cuenta con energía eléctrica, se debe cubrir el estanque con malla negra que evite la luz directa sobre los peces, pero que se mantenga una adecuada iluminación indirecta en el interior de los estanques. Si se cuenta con energía eléctrica, se recomienda cubrir el estanque con malla de mayor protección (80%) y aplicar sobre los estanques tubos fluorescentes que puedan mantener cerca de 400lux en la superficie del agua. Como se señaló anteriormente, pueden ser durante las 24hr del día para mejorar la alimentación.
Fig. N° 26 y 27. Etapa de alevino
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4.
BIBLIOGRAFIA
Blanco, C. 1995. La Trucha Cría Industrial, Ediciones Mundi-Prensa. Madrid, España. Cherniaev, R.A. et al. 1987. Guía metodológica y conservación de ovas de peces Coregónidos en Estaciones Piscícolas Itinerante, su transporte e incubación. Editorial Ciencia, Moscú Rusia (Edición en Idioma Ruso). DIREPRO-UNAP, 2009. Manual de Importación e Reincubación de Ovas de Trucha Arco Iris
Oncorhynchus mykiss. Dirección Regional de la Producción Puno y la Universidad Nacional del Altiplano Puno – Perú. Incagro e Inversiones Santa Inés, 2010. Sub Proyecto de Extensión. Mejora de la Producción de Truchas en Choclococha Santa Inés. Región Huancavelica. Miranda, N. 2009. Curso Taller: El Control de la Enfermedades de los Peces. Facultad de Ingeniería Química. Universidad Nacional del Altiplano Puno – Peru. Troutlodge Inc. 2009. Curso Taller Importación de Ovas. Realizado en la ciudad de Puno. Torres, J y Fajardo C., 2011. Nota Técnica: Tratamiento profiláctico anti-saprolegniasis para mejorar la sobrevivencia embrionaria de ovas de trucha arco iris ( Oncorhynchus mykiss). Merida – Venezuela. Valdebenito, I. 2007. Curso Taller Reincubación de ovas importadas de trucha arco iris. Universidad Nacional del Altiplano Puno – Péru.
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ANEXOS
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Curso de capacitación en manejo de ovas embrionadas y producción de alevinos
Asistencia técnica en producción de alevinos de trucha
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MATERIALES Y EQUIPOS PISCÍCOLAS Incubadoras Bastidores de incubación Tinas de plástico de 50 a 100 lit. Baldes de 10 litros Jarras graduadas (medir ovas) Posillos y bandejas Cucharón aporcelanado Regadera o aspersor Mangueras y manguerillas Balanza Termómetros Oxímetro pHmetro (Papel indicador de pH) Pipetas con pera de goma Pipetas normales Probetas Regla y tabla de Von Bayer Lupa Ropa de agua Prenda de cabeza Guantes de goma (descartable) Barbijo (Mascarilla) Toallas o franelas que no tiñan Estuche de disección Tijeras Cuchillo Caja de herramientas Reloj de pared Cronómetro Hielo (bloque y escamas) Sal o sal industrial Bicarbonato de sodio Iodine o aqua yodo (yodil) Calculadora de bolsillo Cuaderno de notas Cuadro de producción Acta de inspección
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Tabla 1. Estimación del Numero de Ovas según Regla Von Bayer 12 pulgadas N° Ovas por Ictiómetro de 12 pulgadas
Diámetro de ovas (mm)
Número de ovas por litro
100 cc
40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74
7.620 7.417 7.264 7.087 6.934 6.782 6.629 6.477 6.350 6.223 6.096 5.969 5.867 5.740 5.639 5.537 5.436 5.359 5.258 5.156 5.080 5.004 4.928 4.851 4.775 4.699 4.623 4.547 4.496 4.420 4.343 4.293 4.242 4.166 4.115
2,754 2,843 3,057 3,293 3,515 3,758 4,022 4,313 4,577 4,864 5,173 5,510 5,802 6,195 6,536 6,902 7,297 7,613 8,063 8,548 8,939 9,354 9,794 10,264 10,762 11,242 11,863 12,469 12,896 13,576 14,302 14,816 15,354 16,212 16,820
275 284 305 329 351 375 402 431 457 486 517 551 580 619 653 690 729 761 806 854 893 935 979 1026 1076 1124 1186 1246 1289 1357 1430 1481 1535 1621 1682
27
75 4.064 Fuente: Troutlodge Inc. 2009
17,565
1756
Tabla 2. Estimación del Numero de Ovas según Regla Von Bayer 6 pulgadas N° Ovas por Ictiómetro de 6 pulgadas
Número de ovas por litro
20
2,648
21
2,069
22
3,526
23
3,842
24
4,579
25
5,175
26
5,819
27
6,513
28
7,260
29
8,062
30
8,939
31
9,985
32
10,848
33
11,911
34
12,998
35
14,190
36
15,448
37
16,759
38
18,130
39
19,549
40
21,187
41
22,837
42
24,537
43
26,344
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TABLA 3. Cantidad máxima de alevinos según tamaños en un metro cuadrado de pilas o estanques
Longitud de los alevinos (cm)
Cantidad máxima por m2 de Pilas o Estanques Circulares
2.0 20,000 2.5 14,500 3.0 7,500 3.5 6,000 4.0 4,600 4.5 4,000 5.0 3,400 6.0 2,000 7.0 500 Fuente: DIREPRO – UNAP, 2009
Rectangulares 10,000 7,000 3,750 3,000 2,300 2,000 1,700 1,000 250
29
30