Procedimientos para la toma de muestras en microbiología

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UGC Torrox 30 de mayo de 2014

Dr. Antonio F. Guzmán González F.E.A. Microbiología y Parasitología U.G.C. Laboratorio Clínico A.G.S. Este de Málaga - Axarquía


NORMAS GENERALES  Rigurosas normas de asepsia  Muestra representativa del proceso  Cantidad suficiente  Evitar contaminación de la muestra  Antes de instaurar tratamiento antibiótico  IDENTIFICACIÓN CORRECTA DE LAS MISMAS  TRANSPORTE LO ANTES POSIBLE

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ORINAS MICCIÓN LIMPIA  Orina primera hora de la mañana  MUJER    

Lavarse las manos Lavarse los genitales (agua y jabón), de delante hacia atrás Separar los bordes genitales Desechar el primer chorro

 HOMBRE  

Lavarse las manos Lavarse los genitales (agua y jabón), limpiar glande, retraer prepucio mientras comienzan la micción Desechar el primer chorro Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


ORINAS MICCIÓN LIMPIA  NIÑO    

Lavar genitales con agua y gasa estéril Secar con otra gasa estéril Colocar bolsita estéril, con la menor manipulación posible Vigilar la salida de orina:  Si pasan 20 – 30 minutos sin orinar, retirar bolsa y volver a lavar

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SONDA URETRAL PERMANENTE  Limpiar extremo distal con alcohol 70%  Aspiración directa con aguja y jeringa de 5 – 10 mL  Nunca recoger orina de la bolsa de la sonda

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SONDAJE VESICAL  Método Aséptico / Personal Entrenado  Evitar introducir microorganismos en la vejiga  Desechar los 15 – 30 mL iniciales

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PUNCIÓN SUPRAPÚBICA  Método Aséptico / Personal Entrenado  Asegurarse que la vejiga esté llena y se palpa antes de

la punción  Desinfección adecuada de la piel antes de realizar la punción

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SITUACIONES ESPECIALES  PROSTATITIS  Test de Meares y Stamey – 4 Muestras:    

Primer chorro de orina – Microbiota de uretra anterior Chorro medio de orina – Microorganismos en vejiga Secreción prostática tras masaje (Semen tras masturbación) Orina micción espontánea postmasaje / postmasturbación

 EPIDIDIMITIS  ORQUITIS

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PIEL Y PARTES BLANDAS  ANTES DE INICIAR TTO. EMPÍRICO  PRECEDIDA DE LIMPIEZA / DESINFECCIÓN  BIOPSIAS Y HERIDAS CERRADAS   

1º Desinfectar con Clorhexidina 2% / Etanol 70% 2º Pintar con Solución yodada Dejar secar y retirar yodo con etanol antes de tomar la muestra

 HERIDAS ABIERTAS  

Eliminar material necrótico y tejidos desvitalizados Lavar “a chorro” con Suero Salino Estéril Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


PIEL Y PARTES BLANDAS  MUESTRA DE TEJIDO VIABLE INFECTADO, NO

DE RESTOS SUPERFICIALES  MEJOR MUESTRA: OBTENIDA POR ASPIRACIÓN (SIEMPRE QUE SEA POSIBLE) CON AGUJA Y JERINGA, A PARTIR DE LA BASE DE LA LESIÓN  SI NO, ENTONCES TORUNDA DE LA PARTE MÁS REPRESENTATIVA

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PIEL Y PARTES BLANDAS  ABSCESOS CERRADOS  Previa antisepsia de la piel (Alcohol 70% + Sol. yodada)  Aspiración con aguja y jeringa, si es posible a través de piel sana  Muestra insuficiente: Instilar suero y aspirarlo  En tubo estéril. Posibilidad de tapar cono de jeringa con tapón?

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PIEL Y PARTES BLANDAS  HERIDAS Y ABSCESOS ABIERTOS  Eliminar flora y detritus antes de recoger la muestra  Recoger pus con jeringa y aguja, aspirando de zonas profundas si es posible, en tubo estéril  Muestra insuficiente: Instilar suero y aspirarlo  SI ES NECESARIA TORUNDA - CON MEDIO DE TRANSPORTE   

Muestrear aprox. 1 cm2 de los márgenes de avance de la lesión o de la base de la lesión No frotar con fuerza (evitar sangrado) Heridas muy secas: Impregnar torunda con SSE Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


PIEL Y PARTES BLANDAS  PUS  Aspiración con jeringa y aguja, de la zona más profunda si es posible, en tubo estéril  CURETAJE Y BIOPSIAS  Muestra suficiente, evitando zonas necróticas  PAAF, biopsia “punch”, cirugía

 QUEMADURAS  Primero extensa limpieza y desbridamiento  Muestra lo suficientemente profunda como para llegar hasta el tejido viable Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


PIEL Y PARTES BLANDAS

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PIEL Y PARTES BLANDAS

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MUESTRAS T. RESP. SUPERIOR  EXUDADO FARINGEO-AMIGDALAR  Hisopo de Dacron/Alginato  Con Medio de Transporte  Ayuda de depresor para inmovilizar la lengua  Área amigdalar y/o faringe posterior  O de cualquier zona inflamada / ulcerada 

Obtener pseudomembranas (C. diphtheriae)

 Evitar rozar con úvula, mucosa bucal, labios, lengua  Abscesos, Angina de Vincent: Punción/Aspiración

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MUESTRAS T. RESP. SUPERIOR  OTITIS EXTERNA  Introducir torunda estéril en canal auditivo y Rotar  Forúnculo: Aspiración / Desbridamiento quirúrgico  Otitis fúngica: Raspado del canal ótico  OTITIS MEDIA  Timpanocentesis  

Extraer fluido por aspiración Evitar contaminación con flora normal del canal auditivo

 Pus o exudado: Tomar con torunda del canal externo

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MUESTRAS T. RESP. SUPERIOR  SINUSITIS  Aspiración de secreciones nasales (Estudio Fúngico)  Muestra de elección: Aspiración bajo visión endoscópica

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MUESTRAS T. RESP. INFERIOR  FROTIS TRACTO RESP. SUPERIOR  Detección Chlamydia, Mycoplasma  Aspirados y torundas nasofaríngeas: B. pertussis  Medios de transporte específicos (consultar)  ESPUTO  Después de un golpe de tos profunda  Contener secreciones purulentas representativas TRI  Desecharse compuestos por saliva y secrec. postnasales

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MUESTRAS T. RESP. INFERIOR

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MUESTRAS T. RESP. INFERIOR

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MUESTRAS OCULARES  EXUDADO CONJUNTIVAL  Antes de instaurar tto. tópico con colirios  Hisopo con medio de transporte  Frotar sobre conjuntiva tarsal, de fuera a dentro  Mucosa seca: Mojar en BHI, TSB, SSE  Chlamydia, Virus: Medio de transporte específico  LENTE DE CONTACTO  Infección por Acanthamoeba spp.  EXUDADO PARPEBRAL  Torunda humedecida en BHI/TSB Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


MUESTRAS GASTROINTESTINALES  HECES  Bacterias, Rotavirus, C. difficile 

En recipiente estéril, sin aditivos ni conservantes

 Parásitos 

Transporte con SAF, FOR+PVA, MIF+PVA

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MUESTRAS GASTROINTESTINALES

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MUESTRAS ETS/INF. GENITALES  EXUDADO ANAL  Torunda con medio de transporte Amies-Stuart  Introducir en esfínter anal 3 cm y rotar contra las criptas rectales  Evitar contacto con materia fecal  EXUDADO BALANO-PREPUCIAL  Torunda con medio de transporte Amies-Stuart  Frotar en surco balano-prepucial

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MUESTRAS ETS/INF. GENITALES  EXUDADO DE GLÁNDULA DE BARTOLINO  Posición ginecológica  Torunda con medio de transporte Amies  Introducir en Glándula de Bartolino  Chlamydia, Mycoplasma: Medio transporte especial  EXUDADO ENDOCERVICAL  Limpiar el moco cervical con torunda seca y desechar

antes de tomar la muestra  Comprimir cérvix con espéculo para introducir torunda en el canal (torunda con medio de transporte Amies) Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


MUESTRAS ETS/INF. GENITALES  EXUDADO URETRAL  NO ORINAR en las 2 Horas previas  Torundas finas con medio de transporte Amies  

Si existe secreción abundante, “exprimir” la uretra y recoger No secreción: Introducir 2 cm y rotar suavemente

 EXUDADO VAGINAL  En días previos a la toma de muestra:   

No tomar antibióticos No usar soluciones antisépticas vaginales, óvulos, pomadas No mantener relaciones sexuales en 48 h previas Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


MUESTRAS ETS/INF. GENITALES  Uso de espéculo, no usar lubricantes  Torunda con medio de transporte  Recoger exudado de:  

Zona más abundante Fondo del saco vaginal posterior

 Sospecha de N. gonorrhoeae y C. trachomatis 

Mejor: Exudado Endocervical

 EXUDADO VAGINO-RECTAL  Torunda con medio de transporte  1º Toma Vaginal – 2º Toma Rectal (NUNCA AL REVÉS) Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


MUESTRAS ETS/INF. GENITALES  SECRECIÓN PROSTÁTICA  Después de masaje prostático por vía rectal  En frasco estéril de boca ancha y cierre de rosca  Técnica de Meares y Stamey  SEMEN  Mediante estimulación local  En frasco estéril de boca ancha y cierre de rosca

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HONGOS  PELOS  Limpiar lesión con Alcohol 70% o agua destilada estéril  Tomar con pinzas todos aquellos pelos de apariencia frágil o fragmentados  Enviar en contenedor estéril  UÑAS  Limpiar lesión con Alcohol 70%  Lesiones dorsales:  

Raspar la superficie y desecharla Recoger la parte profunda Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


HONGOS  Lesiones subungueales o distales: 

Recoger residuos de debajo de la uña con bisturí, eliminando las primeras porciones Si despegamiento de la lámina ungueal es incipiente: Macerar 5-10 minutos con Suero Fisiológico antes de tomar la muestra

 Lesiones periungueales: 

Tomar escamas o exudado

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HONGOS  ESCAMAS PIEL LAMPIÑA  Limpiar con Alcohol 70%  Raspar borde de la lesión (parte periférica)  Colocar gota de agua sobre la lesión (evitar que las escamas vuelen)  ESPACIOS INTERDIGITALES  Limpiar con Alcohol 70%  Raspar con bisturí estéril  Si hay exudado, tomar con torunda Dr. Antonio Guzmán González – C. S. Torrox– 30/05/2014


PREGUNTAS

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¡¡MUCHAS GRACIAS!!

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