Manejo reproductivo en ganado ovino

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Manejo reproductivo en ovino

Desde un recuerdo de la fisiología de la reproducción hasta la elaboración de calendarios reproductivos, pasando por la obtención y tratamiento del semen, la inseminación artificial, el manejo del morueco, de la oveja y de la cordera de reposición, finalizando con aspectos de la mejora genética, esta obra abarca todos los aspectos relacionados con la Reproducción en el ganado ovino.

Alfonso Abecia Martínez Fernando Forcada Miranda

El objetivo de los autores de esta obra, que forman parte del grupo de investigación de excelencia “Biología y Fisiología de la Reproducción” del Gobierno de Aragón, no ha sido realizar un tratado de reproducción ovina, sino conseguir una publicación que, sin perder un ápice de rigurosidad y con todo la impronta científica que se merece, fuera accesible a todo tipo de público, desde los estudiantes a los técnicos, desde los ganaderos a los investigadores.

www.servet.es

Manejo reproductivo en ganado ovino Alfonso Abecia Martínez Fernando Forcada Miranda


La cordera

Pubertad en la oveja

MANEJO REPRODUCTIVO en ganado OVINO

CL CL

CL CL

F F

F

Figura 10. Ecografía transrectal e imagen de ovarios con cuerpos lúteos (CL) sin cavidad (arriba) y con cavidad (abajo) y folículos (F).

Figura 9. Laparoscopia e imagen de ovarios con cuerpos lúteos (CL) y folículos (F).

Métodos para determinar el inicio de la pubertad La aplicación de métodos fiables que permitan conocer el momento en el que se establece la pubertad supone una herramienta de gran valor tanto para estudios básicos como aplicados. Pueden ser utilizados los siguientes métodos:

animales, y permite una ejecución de las exploraciones de forma rutinaria, con una mayor periodicidad.

Estudio del perfil de secreción de progesterona

La técnica laparoscópica permite visualizar in situ los ovarios y detectar la presencia de cuerpos lúteos (indicativos de la aparición de ovulaciones, fig. 9). Las endoscopias se deben realizar, al menos, cada 15 días a partir de los 5 meses de edad en corderas nacidas en primavera y a partir de los 8-9 meses de edad en las nacidas en otoño. A pesar de la efectividad de esta técnica, su utilización se ve limitada por la imposibilidad de realizar exploraciones rutinarias.

La determinación de las concentraciones plasmáticas de progesterona, por radioinmunoanálisis (RIA) o enzimoinmunoanálisis (EIA), en muestras de sangre recogidas periódicamente (1-2 veces por semana), a partir de los 5 meses de edad en corderas nacidas en primavera, y de los 8-9 meses en las nacidas en otoño, permite obtener una información precisa y objetiva del comienzo de la actividad ovulatoria. La ausencia de ciclos de progesterona (concentraciones basales: < 0,5 ng/ml) durante el periodo prepuberal seguido de la aparición de ciclos regulares de progesterona, como reflejo de la actividad de los cuerpos lúteos, indican el comienzo de la pubertad (fig. 11).

Ecografía

Detección de celos

La ultrasonografía transrectal con sondas de alta resolución (7,5 MHz) es una técnica no invasiva de gran efectividad, que posibilita la observación directa de los folículos y cuerpos lúteos en el ovario (fig. 10). A diferencia de la laparoscopia, la técnica ecográfica no requiere anestesia ni el ayuno previo de los

La introducción de moruecos provistos de arneses marcadores se utiliza habitualmente en las explotaciones ovinas para determinar la aparición del celo y consecuentemente el inicio de la pubertad. La observación de las marcas en la zona lumbar de los animales permite identificar las corderas en celo.

Laparoscopia

48

PUBERTAD (Actividad cíclica ovulatoria)

Periodo prepuberal

Formación del cuerpo lúteo y secreción de progesterona CL

Regresión del cuerpo lúteo

Ovulación

Curva de progesterona

Figura 11. Monitorización del comienzo de la pubertad: ausencia de ciclos de progesterona durante el periodo prepuberal y aparición de ciclos regulares de progesterona como reflejo de la actividad del cuerpo lúteo (Santiago-Moreno et al., 2003).

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La cordera

Pubertad en la oveja

MANEJO REPRODUCTIVO en ganado OVINO

CL CL

CL CL

F F

F

Figura 10. Ecografía transrectal e imagen de ovarios con cuerpos lúteos (CL) sin cavidad (arriba) y con cavidad (abajo) y folículos (F).

Figura 9. Laparoscopia e imagen de ovarios con cuerpos lúteos (CL) y folículos (F).

Métodos para determinar el inicio de la pubertad La aplicación de métodos fiables que permitan conocer el momento en el que se establece la pubertad supone una herramienta de gran valor tanto para estudios básicos como aplicados. Pueden ser utilizados los siguientes métodos:

animales, y permite una ejecución de las exploraciones de forma rutinaria, con una mayor periodicidad.

Estudio del perfil de secreción de progesterona

La técnica laparoscópica permite visualizar in situ los ovarios y detectar la presencia de cuerpos lúteos (indicativos de la aparición de ovulaciones, fig. 9). Las endoscopias se deben realizar, al menos, cada 15 días a partir de los 5 meses de edad en corderas nacidas en primavera y a partir de los 8-9 meses de edad en las nacidas en otoño. A pesar de la efectividad de esta técnica, su utilización se ve limitada por la imposibilidad de realizar exploraciones rutinarias.

La determinación de las concentraciones plasmáticas de progesterona, por radioinmunoanálisis (RIA) o enzimoinmunoanálisis (EIA), en muestras de sangre recogidas periódicamente (1-2 veces por semana), a partir de los 5 meses de edad en corderas nacidas en primavera, y de los 8-9 meses en las nacidas en otoño, permite obtener una información precisa y objetiva del comienzo de la actividad ovulatoria. La ausencia de ciclos de progesterona (concentraciones basales: < 0,5 ng/ml) durante el periodo prepuberal seguido de la aparición de ciclos regulares de progesterona, como reflejo de la actividad de los cuerpos lúteos, indican el comienzo de la pubertad (fig. 11).

Ecografía

Detección de celos

La ultrasonografía transrectal con sondas de alta resolución (7,5 MHz) es una técnica no invasiva de gran efectividad, que posibilita la observación directa de los folículos y cuerpos lúteos en el ovario (fig. 10). A diferencia de la laparoscopia, la técnica ecográfica no requiere anestesia ni el ayuno previo de los

La introducción de moruecos provistos de arneses marcadores se utiliza habitualmente en las explotaciones ovinas para determinar la aparición del celo y consecuentemente el inicio de la pubertad. La observación de las marcas en la zona lumbar de los animales permite identificar las corderas en celo.

Laparoscopia

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PUBERTAD (Actividad cíclica ovulatoria)

Periodo prepuberal

Formación del cuerpo lúteo y secreción de progesterona CL

Regresión del cuerpo lúteo

Ovulación

Curva de progesterona

Figura 11. Monitorización del comienzo de la pubertad: ausencia de ciclos de progesterona durante el periodo prepuberal y aparición de ciclos regulares de progesterona como reflejo de la actividad del cuerpo lúteo (Santiago-Moreno et al., 2003).

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La oveja

Control de la actividad reproductiva mediante el tratamiento con melatonina

MANEJO REPRODUCTIVO en ganado OVINO

Tabla 3. Mejora de los parámetros reproductivos tras el tratamiento con implantes subcutáneos de melatonina en ovejas Rasa Aragonesa en función del momento de la colocación del implante, el 29 de diciembre o el 22 de marzo (adaptado de Forcada et al., 2002).

Tabla 2. Resultados reproductivos de ovejas Rasa Aragonesa tras la aplicación de implantes subcutáneos de melatonina en primavera, en función del intervalo entre el inicio del tratamiento e introducción de los moruecos: 50 (M1), 33 (M2) o 16 (M3) días (adaptado de Argote et al., 2005). Lote

Intervalo implante-machos

Nº animales

Fertilidad (%)

Prolificidad

M1

50 días

86

72,1ª

1,2

89,5ª

M2

33 días

55

67,3ª

1,16

M3

16 días

52

40,4b

1,14

29 Diciembre

Fecundidad (%)

22 Marzo

M

C

Nº de ovejas

156

78,2ª

Fertilidad (%)

46,2b

Letras diferentes en la misma columna indican diferencias significativas (P<0,05).

M

C

159

150

128

88

76

83ª

67b

Prolificidad

1,86 ± 0,05ª

1,77 ± 0,04ª

1,69 ± 0,05ª

1,50 ± 0,06b

Fecundidad

1,63 ± 0,07ª

1,34 ± 0,07b

1,39 ± 0,07ª

1,02 ± 0,07b

a

b

0,30 corderos “extra”/oveja

0,36 corderos “extra”/oveja

Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05). M: melatonina; C: control.

Al inicio de la década de los 90, diferentes autores recomendaban que la colocación de los implantes tuviera lugar al menos 2 meses antes del inicio de la estación natural de reproducción de la raza considerada, como momento óptimo del año para el inicio del tratamiento con melatonina. Ello suponía que en países ubicados en latitudes superiores a la nuestra, tal es el caso del Reino Unido, el momento más adecuado para el inicio del tratamiento estuviera en torno al solsticio de verano (junio-julio); sin embargo, en nuestro país, donde las razas ovinas inician su periodo de actividad reproductiva con antelación a las ubicadas

70

en latitudes superiores, el tratamiento con melatonina debería iniciarse antes, en torno al equinoccio de primavera (marzo-abril). De hecho, la efectividad de los implantes parece reducirse notablemente cuando el inicio del tratamiento tiene lugar a partir de mayo, salvo quizás en la raza Lacha y otras que se encuentran ubicadas en la cornisa norte y oeste del país, que presentan una superior estacionalidad sexual que el resto y en las que estaría justificado un cierto retraso en el momento de la colocación del implante.

muy similar al conseguido con el tratamiento en marzo, el momento más habitual (tabla 3). Finalmente, se recomienda que los moruecos permanezcan con las ovejas un periodo de tiempo equiparable a la duración de dos ciclos sexuales (en torno a 35 días). De este modo, el subsiguiente periodo de cubriciones presenta un desarrollo similar al de un

efecto macho clásico, aunque con una mayor agrupación de los partos que en el caso de las ovejas no tratadas. También parece haber un aumento del número de ovejas paridas en los primeros 17 días tras la introducción de los moruecos, probablemente debido a un aumento de la ciclicidad previa a dicha introducción inducida por la propia melatonina (fig. 11).

Análisis general de resultados Llaman la atención los resultados obtenidos tras la colocación de los implantes en diciembre-enero, en torno al solsticio de invierno. La lógica dice que no deberían ser efectivos, pues en dicho momento es cuando la oveja está experimentando los días más cortos del año. No obstante, los resultados obtenidos en el seno de nuestro grupo de investigación, tanto a nivel experimental, con ovejas ovariectomizadas y tratadas con estradiol, como a nivel comercial con ovejas enteras, muestran claramente el efecto positivo del tratamiento con melatonina en ese momento, lo que indica que la oveja es capaz de responder a un tratamiento que le proporciona una información de días incluso más cortos que los del solsticio de invierno y que, por tanto, en ese momento todavía no se ha iniciado la insensibilidad a los días cortos que dará lugar al inicio del anestro estacionario. A nivel de explotación, el tratamiento con melatonina en enero mejora ligeramente la fertilidad y la prolificidad, de manera que el aumento global de la fecundidad es

100

PORCENTAJE OVEJAS PARIDAS

pulsátil de LH entre los días 40-60 desde el inicio del tratamiento (Bittman et al., 1985); otros autores han considerado que se requieren al menos 35 días desde el inicio del tratamiento hasta la introducción de los moruecos, de manera que el protocolo recomendado del producto comercial (implantes subcutáneos con 18 mg de melatonina) indica que los moruecos deberían ser introducidos a los 40 días del inicio del tratamiento y, en todo caso, no antes del día 30 y no después del día 50. Resultados recientes de nuestro grupo de investigación han mostrado que si la cubrición se inicia a los 33 días tras la colocación del implante puede haber una cierta penalización tanto de la fertilidad como de la fecundidad en relación a una introducción posterior de los moruecos (tabla 2); por tanto, la recomendación final sería no iniciar la cubrición antes de los 40 días tras el inicio del tratamiento con melatonina.

80 60 40 20 0 1

2

3

4

ÉPOCA INICIO TRATAMIENTO M

C

Figura 11. Porcentaje de ovejas Rasa Aragonesa paridas los primeros 17 días tras la introducción de los moruecos en función del momento de la colocación del implante: 1 de enero (1), 15 de febrero (2), 1 de abril (3) o 15 de mayo (4) (adaptado de Valares et al., 2003). M: melatonina; C: control.

En función de lo señalado con anterioridad, el ganado ovino de nuestro país recibe los tratamientos con melatonina en diferentes momentos, pero siempre a lo largo del primer semestre del año. Los resultados muestran una cierta variabilidad en función de la raza, el momento del tratamiento y otros factores que serán analizados con posterioridad. No obstante, y en conjunto, casi siempre se observa un beneficio claro de los implantes sobre la fertilidad y sobre la prolificidad, en particular debido a un efecto de la melatonina tanto sobre la tasa de ovulación como sobre la supervivencia embrionaria. Es muy importante tener en cuenta que el propio mecanismo de acción del tratamiento con la hormona pineal no permite asegurar siempre un determinado grado o nivel de mejora de los parámetros reproductivos, aunque en ningún caso se ha descrito un efecto negativo del mismo. Todo ello ha determinado que el número de ovejas implantadas en nuestro país vaya aumentando año tras año.

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La oveja

Control de la actividad reproductiva mediante el tratamiento con melatonina

MANEJO REPRODUCTIVO en ganado OVINO

Tabla 3. Mejora de los parámetros reproductivos tras el tratamiento con implantes subcutáneos de melatonina en ovejas Rasa Aragonesa en función del momento de la colocación del implante, el 29 de diciembre o el 22 de marzo (adaptado de Forcada et al., 2002).

Tabla 2. Resultados reproductivos de ovejas Rasa Aragonesa tras la aplicación de implantes subcutáneos de melatonina en primavera, en función del intervalo entre el inicio del tratamiento e introducción de los moruecos: 50 (M1), 33 (M2) o 16 (M3) días (adaptado de Argote et al., 2005). Lote

Intervalo implante-machos

Nº animales

Fertilidad (%)

Prolificidad

M1

50 días

86

72,1ª

1,2

89,5ª

M2

33 días

55

67,3ª

1,16

M3

16 días

52

40,4b

1,14

29 Diciembre

Fecundidad (%)

22 Marzo

M

C

Nº de ovejas

156

78,2ª

Fertilidad (%)

46,2b

Letras diferentes en la misma columna indican diferencias significativas (P<0,05).

M

C

159

150

128

88

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83ª

67b

Prolificidad

1,86 ± 0,05ª

1,77 ± 0,04ª

1,69 ± 0,05ª

1,50 ± 0,06b

Fecundidad

1,63 ± 0,07ª

1,34 ± 0,07b

1,39 ± 0,07ª

1,02 ± 0,07b

a

b

0,30 corderos “extra”/oveja

0,36 corderos “extra”/oveja

Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05). M: melatonina; C: control.

Al inicio de la década de los 90, diferentes autores recomendaban que la colocación de los implantes tuviera lugar al menos 2 meses antes del inicio de la estación natural de reproducción de la raza considerada, como momento óptimo del año para el inicio del tratamiento con melatonina. Ello suponía que en países ubicados en latitudes superiores a la nuestra, tal es el caso del Reino Unido, el momento más adecuado para el inicio del tratamiento estuviera en torno al solsticio de verano (junio-julio); sin embargo, en nuestro país, donde las razas ovinas inician su periodo de actividad reproductiva con antelación a las ubicadas

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en latitudes superiores, el tratamiento con melatonina debería iniciarse antes, en torno al equinoccio de primavera (marzo-abril). De hecho, la efectividad de los implantes parece reducirse notablemente cuando el inicio del tratamiento tiene lugar a partir de mayo, salvo quizás en la raza Lacha y otras que se encuentran ubicadas en la cornisa norte y oeste del país, que presentan una superior estacionalidad sexual que el resto y en las que estaría justificado un cierto retraso en el momento de la colocación del implante.

muy similar al conseguido con el tratamiento en marzo, el momento más habitual (tabla 3). Finalmente, se recomienda que los moruecos permanezcan con las ovejas un periodo de tiempo equiparable a la duración de dos ciclos sexuales (en torno a 35 días). De este modo, el subsiguiente periodo de cubriciones presenta un desarrollo similar al de un

efecto macho clásico, aunque con una mayor agrupación de los partos que en el caso de las ovejas no tratadas. También parece haber un aumento del número de ovejas paridas en los primeros 17 días tras la introducción de los moruecos, probablemente debido a un aumento de la ciclicidad previa a dicha introducción inducida por la propia melatonina (fig. 11).

Análisis general de resultados Llaman la atención los resultados obtenidos tras la colocación de los implantes en diciembre-enero, en torno al solsticio de invierno. La lógica dice que no deberían ser efectivos, pues en dicho momento es cuando la oveja está experimentando los días más cortos del año. No obstante, los resultados obtenidos en el seno de nuestro grupo de investigación, tanto a nivel experimental, con ovejas ovariectomizadas y tratadas con estradiol, como a nivel comercial con ovejas enteras, muestran claramente el efecto positivo del tratamiento con melatonina en ese momento, lo que indica que la oveja es capaz de responder a un tratamiento que le proporciona una información de días incluso más cortos que los del solsticio de invierno y que, por tanto, en ese momento todavía no se ha iniciado la insensibilidad a los días cortos que dará lugar al inicio del anestro estacionario. A nivel de explotación, el tratamiento con melatonina en enero mejora ligeramente la fertilidad y la prolificidad, de manera que el aumento global de la fecundidad es

100

PORCENTAJE OVEJAS PARIDAS

pulsátil de LH entre los días 40-60 desde el inicio del tratamiento (Bittman et al., 1985); otros autores han considerado que se requieren al menos 35 días desde el inicio del tratamiento hasta la introducción de los moruecos, de manera que el protocolo recomendado del producto comercial (implantes subcutáneos con 18 mg de melatonina) indica que los moruecos deberían ser introducidos a los 40 días del inicio del tratamiento y, en todo caso, no antes del día 30 y no después del día 50. Resultados recientes de nuestro grupo de investigación han mostrado que si la cubrición se inicia a los 33 días tras la colocación del implante puede haber una cierta penalización tanto de la fertilidad como de la fecundidad en relación a una introducción posterior de los moruecos (tabla 2); por tanto, la recomendación final sería no iniciar la cubrición antes de los 40 días tras el inicio del tratamiento con melatonina.

80 60 40 20 0 1

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ÉPOCA INICIO TRATAMIENTO M

C

Figura 11. Porcentaje de ovejas Rasa Aragonesa paridas los primeros 17 días tras la introducción de los moruecos en función del momento de la colocación del implante: 1 de enero (1), 15 de febrero (2), 1 de abril (3) o 15 de mayo (4) (adaptado de Valares et al., 2003). M: melatonina; C: control.

En función de lo señalado con anterioridad, el ganado ovino de nuestro país recibe los tratamientos con melatonina en diferentes momentos, pero siempre a lo largo del primer semestre del año. Los resultados muestran una cierta variabilidad en función de la raza, el momento del tratamiento y otros factores que serán analizados con posterioridad. No obstante, y en conjunto, casi siempre se observa un beneficio claro de los implantes sobre la fertilidad y sobre la prolificidad, en particular debido a un efecto de la melatonina tanto sobre la tasa de ovulación como sobre la supervivencia embrionaria. Es muy importante tener en cuenta que el propio mecanismo de acción del tratamiento con la hormona pineal no permite asegurar siempre un determinado grado o nivel de mejora de los parámetros reproductivos, aunque en ningún caso se ha descrito un efecto negativo del mismo. Todo ello ha determinado que el número de ovejas implantadas en nuestro país vaya aumentando año tras año.

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Diagnóstico de gestación en ovinos

MANEJO REPRODUCTIVO en ganado OVINO

Figura 1. Esquema del desarrollo y tránsito del embrión en el tracto genital de una oveja (adaptado L. Barañao. Biotecnología en reproducción animal, 2007).

de manera más temprana (tabla 1), de modo que su aplicación dentro de un programa de intensificación reproductiva es fundamental.

Día 3

Día 2

Día 4

2 Cél.

En la actualidad, los métodos de elección para un diagnóstico precoz son la determinación de los niveles de P4 en plasma y la ultrasonografía (ecografía), ya que presentan un balance adecuado entre rapidez, funcionalidad y fiabilidad. Sin embargo, el hecho de que la ecografía se realice en tiempo real y sin necesidad de análisis de laboratorio es una ventaja determinante.

4 Cél.

Día 1

Cuerno Uterino

FECUNDACIÓN Día 5

Ovario

Mórula

OOCITO

Día 6-7

Ovulación

Técnicas de diagnóstico

Diagnóstico de gestación mediante la determinación de los niveles de progesterona

Blastocisto

El fundamento de este método de diagnóstico se basa en que, en hembras gestantes, el CL se mantiene en el ovario y continúa secretando P4 a lo largo de casi la totalidad de la gestación. La concentración de los niveles de P4 se puede determinar utilizando suero, plasma y/o leche. Aunque existen diversas técnicas de laboratorio, en la actualidad se utilizan técnicas inmunológicas como radioinmunoanálisis (RIA) y/o enzimoinmunoanálisis (ELISA), ya que ambas combinan alta especificidad con alta sensibilidad.

Día 0 = Celo

Tabla 1. Técnicas para realizar el diagnóstico de gestación en la oveja DIAGNÓSTICO DE GESTACIÓN EN OVINOS Momento idóneo de aplicación

Confianza (%)

18-24 días

90%

Desde 20-22 días

95-98%

Desde la segunda mitad de gestación

100%

18-20 días (transrectal) 24-25 días (transrectal)

90% 95-100%

24-25 (transabdominal) 28-30 días (transabdominal)

90% 90-98%

Ecografía tipo Doppler

50-60 días

80-95%

Palpación abdominal

60 días

---

Último tercio de la gestación (100 días)

98%

120 días

---

Métodos No retorno al celo Determinación de los niveles de P4 Ecografía

Radiografía Observación de ubres

Biopsia vaginal Laparoscopia

102

Alta especificidad para detectar animales no preñados.

La ecografía de modo B o ultrasonografía es una técnica que permite obtener una imagen dinámica de los órganos reproductivos mediante un método no invasivo. Utiliza ondas de sonido de alta frecuencia, medidas en megahercios (1MHz= 1.000.000 de ondas por segundo), para producir imágenes de los tejidos blandos y de los órganos internos.

Ventajas Alta especificidad para detectar hembras preñadas y vacías. Realización del diagnóstico a partir de los 18-20 días de gestación. Determinación de la viabilidad embrionaria por latido cardiaco y tamaños. Determinación del número de embriones. Diferenciación de patologías con CL persistente.

Inconvenientes El coste del equipo es relativamente alto. Se requiere personal capacitado en la identificación de las imágenes para obtener resultados fiables.

Los equipos de ultrasonografía constan de un transductor (o sonda) y de un cuerpo que integra un monitor de TV y un osciloscopio electrónico (fig. 2).

Realización del diagnóstico a partir de los 20-22 días de gestación. Toma de muestras rápida y limpia.

Inconvenientes Requiere un laboratorio, equipos adecuados y que la técnica sea puesta a punto.

Figura 2. Equipo de ultrasonografía para diagnóstico por imagen.

Necesidad de personal idóneo para obtener resultados fiables.

Otros (poco prácticos) Determinación de niveles de proteínas específicas de la preñez (INFt)

Ventajas

Diagnóstico de gestación a través de la ecografía

14-21 días

---

Más de 40 días

95%

23-25 días

95%

Posibilidad de diagnósticos “falsos positivos”, es decir, que se consideren como hembras preñadas a hembras vacías con persistencia patológica del CL (ciclo estral prolongado, piometra, mortalidad embrionaria temprana) o con presentación de ciclo corto y siguiente ciclo vacía.

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Diagnóstico de gestación en ovinos

MANEJO REPRODUCTIVO en ganado OVINO

Figura 1. Esquema del desarrollo y tránsito del embrión en el tracto genital de una oveja (adaptado L. Barañao. Biotecnología en reproducción animal, 2007).

de manera más temprana (tabla 1), de modo que su aplicación dentro de un programa de intensificación reproductiva es fundamental.

Día 3

Día 2

Día 4

2 Cél.

En la actualidad, los métodos de elección para un diagnóstico precoz son la determinación de los niveles de P4 en plasma y la ultrasonografía (ecografía), ya que presentan un balance adecuado entre rapidez, funcionalidad y fiabilidad. Sin embargo, el hecho de que la ecografía se realice en tiempo real y sin necesidad de análisis de laboratorio es una ventaja determinante.

4 Cél.

Día 1

Cuerno Uterino

FECUNDACIÓN Día 5

Ovario

Mórula

OOCITO

Día 6-7

Ovulación

Técnicas de diagnóstico

Diagnóstico de gestación mediante la determinación de los niveles de progesterona

Blastocisto

El fundamento de este método de diagnóstico se basa en que, en hembras gestantes, el CL se mantiene en el ovario y continúa secretando P4 a lo largo de casi la totalidad de la gestación. La concentración de los niveles de P4 se puede determinar utilizando suero, plasma y/o leche. Aunque existen diversas técnicas de laboratorio, en la actualidad se utilizan técnicas inmunológicas como radioinmunoanálisis (RIA) y/o enzimoinmunoanálisis (ELISA), ya que ambas combinan alta especificidad con alta sensibilidad.

Día 0 = Celo

Tabla 1. Técnicas para realizar el diagnóstico de gestación en la oveja DIAGNÓSTICO DE GESTACIÓN EN OVINOS Momento idóneo de aplicación

Confianza (%)

18-24 días

90%

Desde 20-22 días

95-98%

Desde la segunda mitad de gestación

100%

18-20 días (transrectal) 24-25 días (transrectal)

90% 95-100%

24-25 (transabdominal) 28-30 días (transabdominal)

90% 90-98%

Ecografía tipo Doppler

50-60 días

80-95%

Palpación abdominal

60 días

---

Último tercio de la gestación (100 días)

98%

120 días

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Métodos No retorno al celo Determinación de los niveles de P4 Ecografía

Radiografía Observación de ubres

Biopsia vaginal Laparoscopia

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Alta especificidad para detectar animales no preñados.

La ecografía de modo B o ultrasonografía es una técnica que permite obtener una imagen dinámica de los órganos reproductivos mediante un método no invasivo. Utiliza ondas de sonido de alta frecuencia, medidas en megahercios (1MHz= 1.000.000 de ondas por segundo), para producir imágenes de los tejidos blandos y de los órganos internos.

Ventajas Alta especificidad para detectar hembras preñadas y vacías. Realización del diagnóstico a partir de los 18-20 días de gestación. Determinación de la viabilidad embrionaria por latido cardiaco y tamaños. Determinación del número de embriones. Diferenciación de patologías con CL persistente.

Inconvenientes El coste del equipo es relativamente alto. Se requiere personal capacitado en la identificación de las imágenes para obtener resultados fiables.

Los equipos de ultrasonografía constan de un transductor (o sonda) y de un cuerpo que integra un monitor de TV y un osciloscopio electrónico (fig. 2).

Realización del diagnóstico a partir de los 20-22 días de gestación. Toma de muestras rápida y limpia.

Inconvenientes Requiere un laboratorio, equipos adecuados y que la técnica sea puesta a punto.

Figura 2. Equipo de ultrasonografía para diagnóstico por imagen.

Necesidad de personal idóneo para obtener resultados fiables.

Otros (poco prácticos) Determinación de niveles de proteínas específicas de la preñez (INFt)

Ventajas

Diagnóstico de gestación a través de la ecografía

14-21 días

---

Más de 40 días

95%

23-25 días

95%

Posibilidad de diagnósticos “falsos positivos”, es decir, que se consideren como hembras preñadas a hembras vacías con persistencia patológica del CL (ciclo estral prolongado, piometra, mortalidad embrionaria temprana) o con presentación de ciclo corto y siguiente ciclo vacía.

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Manejo del semen e inseminación artificial

Inseminación artificial ovina

MANEJO REPRODUCTIVO en ganado OVINO

Equipo

técnica

sujeción de los animales

APLICACIÓN DEL SEMEN

SUJECIÓN DE LOS ANIMALES

OPERACIONES PREVIAS CON EL SEMEN

Carrusel de inseminación: • Tres camillas giratorias, colocación de la oveja. • Inseminación. • Liberación de la oveja. Sujeción de las patas traseras.

Trocar de 7 mm: • Doble vía. Válvula para gas CO2. • Utilizado para la introducción • del endoscopio.

Bombona y manómetro de CO2: • Para insuflar CO2, produce neumoabdomen y aisla el útero del resto de las vísceras.

Extracción del semen congelado: • Selección del macho. • Proceso rápido.

PREPARACIÓN DEL SEMEN

Sujeción de las patas delanteras.

Tanque de semen congelado (-196 ºC).

Baño maría.

Trocar de 5 mm: • Utilizado para la introducción del aplicador del semen.

Descongelación en el baño maría: • 60 ºC durante 5 segundos.

Endoscopio de 7 mm. De óptica 0 º: • Unido a cable de fibra óptica.

Montaje del aplicador: • Colocación de la pajuela descongelada. Lector de bolos.

142

Aplicador del semen.

Fuente de luz: • Origen de la luz, transmitida al endoscopio por el cable de fibra óptica.

Colocación final.

• Montaje del áspic (vaina con aguja para la colocación del semen en el útero).

143


Manejo del semen e inseminación artificial

Inseminación artificial ovina

MANEJO REPRODUCTIVO en ganado OVINO

Equipo

técnica

sujeción de los animales

APLICACIÓN DEL SEMEN

SUJECIÓN DE LOS ANIMALES

OPERACIONES PREVIAS CON EL SEMEN

Carrusel de inseminación: • Tres camillas giratorias, colocación de la oveja. • Inseminación. • Liberación de la oveja. Sujeción de las patas traseras.

Trocar de 7 mm: • Doble vía. Válvula para gas CO2. • Utilizado para la introducción • del endoscopio.

Bombona y manómetro de CO2: • Para insuflar CO2, produce neumoabdomen y aisla el útero del resto de las vísceras.

Extracción del semen congelado: • Selección del macho. • Proceso rápido.

PREPARACIÓN DEL SEMEN

Sujeción de las patas delanteras.

Tanque de semen congelado (-196 ºC).

Baño maría.

Trocar de 5 mm: • Utilizado para la introducción del aplicador del semen.

Descongelación en el baño maría: • 60 ºC durante 5 segundos.

Endoscopio de 7 mm. De óptica 0 º: • Unido a cable de fibra óptica.

Montaje del aplicador: • Colocación de la pajuela descongelada. Lector de bolos.

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Aplicador del semen.

Fuente de luz: • Origen de la luz, transmitida al endoscopio por el cable de fibra óptica.

Colocación final.

• Montaje del áspic (vaina con aguja para la colocación del semen en el útero).

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