UTMACH- PRÁCTICA DE TOXICOLOGÍA
“Calidad, Pertinencia y Calidez”
PRÁCTICA N° BF.5.09- 19 TEMA: TOXICOLOGIA DE LOS ALIMENTOS TITULO DE LA PRÁCTICA: DETERMINACION CUANTITATIVA DE CN EN PLANTAS
Muestra De Experimentación: YUCA Método utilizado: electrolisis TIEMPOS: Inicio de la práctica: 8:20 Hora finalización de la práctica: 1. DATOS INFORMATIVOS
10 10:15
Docente: BQF. García González Carlos Alberto MSc. Alumna: Jimenez Pulla Lidia del Carmen Carrera: Bioquímica y Farmacia Curso: Quinto Paralelo: “B” Grupo: 3 Fecha de Elaboración de la Práctica: lunes, 28 de Noviembre del 2016 Fecha de Presentación de la Práctica: lunes, 05 de Noviembre del 2016 2.- FUNDAMENTO TEÓRICO: El cianuro: El cianuro se encuentra en el reino vegetal formando parte de numerosos glucósidos capaces de liberar ácido cianhídrico (HCN) al reaccionar con las enzimas hidrolitica apropiadas. El ácido cianhídrico es un tóxico potente y de rápido efecto, ya que bloquea la respiración celular al combinarse el ion cianuro (CN-) con el hierro de una enzima indispensable para tal proceso. Las plantas que poseen glucósidos cianogénicos contienen también una ß-glucosidasa que produce la hidrólisis de éstos. Se ha descrito capacidad cianogénicos en aproximadamente dos mil especies vegetales; empero, la mayoría de ellas apenas contiene rastros de cianuro y sólo un grupo relativamente pequeño de vegetales cianofóricos es capaz de causar intoxicación 3.- OBJETIVOS DE LA PRÁCTICA Determinar la presencia de cianuro en una muestra vegetal (yuca), por medio de la electrolisis. Observar mediante el paso de energía la presencia de cianuro.
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4.- MATERIALES, EQUIPOS, REACTIVOS, SUSTANCIAS E INSUMOS: Materiales de vidrio:
Sustancias:
Cubeta hidráulica Varilla de vidrio vaso de precipitación tubos de ensayo
Agua destilada Cloruro de sodio
Equipos Aparato de cargas iónicas
Otros: Guantes de látex Mascarilla Mandil Gorro Cable eléctrico interruptor
Zapatones Cinta adhesiva Foco Boquilla bisturí
Muestra: pedazo de yuca.
5.- PROCEDIMIENTO: Trabajar con orden, limpieza y sin prisa. Mantener las mesas de trabajo limpias y sin productos, libros, cajas o accesorios innecesarios para el trabajo que se esté realizando. Llenar ropa adecuada para la realización de la práctica: bata, guantes, mascarilla, gorro, zapatones. Utilizar la campana extractora de gases siempre que sea necesario. Desinfectamos el área de trabajo y limpiamos los materiales que se emplean en la práctica. Después de armar el equipo para electrolisis, es decir armar la conexión de electricidad. Se procede a introducir un pedazo de yuca en el interior de la cubeta hidráulica para la determinación cuantitativa de CN en la planta. Procedemos a introducir los electrodos.
6.- GRÁFICOS:
1. preparar la conexion electrica
2. material de experimentacion
4. colocar la yuca en el recipiente con los electrodos
3. cortar la yuca
5. comprobar si hay o no cianuros en la muestra
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7.- RESULTADOS
8.- OBSERVACIONES: En la realización de ésta práctica al momento de introducir el electrodo se prendió un foco que demuestra que la práctica esta correcta. 9.-CONCLUSIONES Como conclusión se pudo determinar por el método de electrolisis la presencia de electrolitos debido a que se prendió el foco y se aprendió a determinar el cianuro presente en una muestra vegetal que es la yuca mediante la determinación cuantitativa por electrolisis. 10.- RECOMENDACIONES Utilizar el equipo de protección adecuado: bata de laboratorio, guantes, especialmente la mascarilla, para evitar intoxicaciones. Aplicar todas las normas de bioseguridad en el laboratorio. No tocar los dos electrodos debido a que se puede pasar corriente eléctrica.
CUESTIONARIO 1.- QUE ES LA ELECTROLISIS. Proceso que separa los elementos de un compuesto por medio de la electricidad. Ciertas sustancias, (ácidos, hidróxidos, sales y algunos óxidos metálicos disueltos o fundidos) son conductores de electricidad al mismo tiempo que se descomponen al paso de la corriente eléctrica, a estas sustancias se les llama electrolitos. A tal fenómeno se le denomina electrólisis y constituye fundamentalmente un proceso de oxidación reducción que se desarrolla "no espontáneamente" es decir, un conjunto de transformaciones que implican un aumento de energía libre del sistema, y por ende, requiere para su realización el concurso de una fuerza externa de energía.
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UTMACH- PRÁCTICA DE TOXICOLOGÍA 2.- ¿Qué ES UN ANODO?
Es un electrodo en el que se produce una reacción de oxidación, mediante la cual un material, al perder electrones, incrementa su estado de oxidación. El Ánodo es un polo hacia donde se dirigen los aniones (cargas negativas), por lo tanto es un polo positivo. El cátodo es un polo hacia donde se dirigen los cationes (cargas positivas), por lo tanto es un polo positivo 3.- QUE ES UN CÁTODO? Un cátodo es un electrodo en el que la corriente eléctrica fluye fuera de un dispositivo electrónico polarizado. Una forma útil de recordar el flujo de corriente en un cátodo es la mnemotécnica: "CSC": Corriente Sale Cátodo. De forma inversa, un ánodo electrodo por donde la corriente fluye hacia el dispositivo eléctrico. 4.- QUE ES UN ELECTROLITO? Un electrolito es cualquier sustancia que contiene iones libres, los que se comportan como un medio conductor eléctrico. Debido a que generalmente consisten en iones en solución, los electrólitos también son conocidos como soluciones iónicas, pero también son posibles electrolitos fundidos y electrolitos sólidos.
Glosario. Soluciones iónicas: Una solución iónica es aquella en la cual el soluto al disolverse en el solvente se descompone o disocia en iones (positivos o cationes y negativos o aniones) un ejemplo son las soluciones de electrolitos como por decir la sal al disolverse en agua, ya que se descompone en sus iones (iones de cloro y iones de sodio). BIBLIOGRAFÍA ECURED (2011).ELECTROLISIS. Índice de Guías Seminarios. [Citado: 16 de septiembre del 2016] Disponible en: https://www.ecured.cu/Electr%C3%B3lisis
Adolfo Pon Juan y Blanco Química Inorgánica Tomo I Editorial Pueblo y educación La Habana 1979.En Linea El 07 De Octubre del 2016. DISPONIBLE EN: http://www.ehowenespanol.com/catodo-sobre_342433/ WEBGRAFÍA https://elmundodelevman.wikispaces.com/SOLUCIONES+I%C3%93NICAS quimica.laguia2000.com/conceptos-basicos/cátodo
AUTORIA: BQF. GARCIA GONZÁLEZ CARLOS ALBERTO MSc FIRMA DE RESPONSABILIDAD JIMENEZ PULLA LIDIA DEL CARMEN C.I. 070470220-8 “TODO ES VENENO, NADA ES VENENNO. TODO DEPENDE DE LA DOSIS”.PARACELSO. pág. 4
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MI INVESTIGACIÓN COMO DETERMINAR LA TOXICIDAD DE UNA HORTALIZA ESTUDIO SOBRE RESIDUOS DE PLAGUICIDAS EN BRÓCOLI DE EXPORTACIÓN Y CONSUMO NACIONAL METODOLOGÍA: La metodología aplicada consistió en dos etapas, el muestreo y el análisis de muestras en el laboratorio. Para el muestreo se consideró el número de unidades productivas en cada una de las provincias donde se cultiva esta hortaliza, recolectando muestras en centros de acopio y en centros de expendio (mercados). En cada muestreo se tomó dos kilos de brócoli, conforme a la Guía de Muestreo recomendada para determinación de residuos de plaguicidas a efectos de cumplimiento de los LMRs del CODEX Alimentarius. [9] Los muestreos se realizaron en las provincias de Azuay, Cotopaxi, Chimborazo, Guayas, Imbabura, Pichincha, Santo Domingo de los Tsáchilas y Tungurahua, con dos meses de intervalo. En la Tabla I se presenta el número de muestras obtenidas por provincias. Los análisis se realizaron en los Laboratorios de AGROCALIDAD utilizando el procedimiento específico interno PEE/L-P/13 "Procedimiento para determinar residuos de plaguicidas por QuEChERS en frutas y vegetales”, que está basado en el método de la AOAC [10] y el método Sanco CSN EN 15662 [11, 12]. A fin de establecer los parámetros de viabilidad, el método fue implementado y estandarizado para la determinación multiresiduos de plaguicidas en brócoli y luego validado para cinco plaguicidas (Profenofos, Carbaryl, Carbofuran, Methiocarb y Methomyl) por UPLC/MS/MS, acorde a la Guía Sanco [13]. La repetibilidad y reproducibilidad del método se obtuvo utilizando curvas de calibración con cinco niveles de concentración entre 5 y 60 ng/mL, con tres repeticiones durante cinco días. La precisión y exactitud se determinó utilizando blancos fortificados de tres niveles de concentración entre 5 y 13 ng/g, con tres repeticiones durante tres días. PROCEDIMIENTO: El procedimiento empleado para la determinación de los analitos en las muestras se basa en la extracción de los compuestos de la muestra previamente homogenizada, mediante el método QuEChERS, para lo cual se utilizó el tubo 1 del kit (marca Waters) que contiene material adsorbente de sulfato de magnesio, se adicionó Acetonitrilo (marca Fisher, grado masas) acidificado (1% de ácido acético marca Fluka, 99% pureza), se aplicó agitación manual, agitación en vortex y centrifugación a 3450 rpm durante 5 minutos. Luego se realizó un proceso de limpieza o clean-up en 4 mL del sobrenadante, en el tubo 2 del kit que contiene material adsorbente de sulfato de magnesio más aminas primarias y secundarias (marca Waters), seguido de centrifugación. Finalmente el extracto de las muestras se filtró en membranas de 0.22 micras de poro (marca Millipore). 200 μl del extracto se trasvasó a un vial de 2 ml y se aforó a 1 ml con la fase móvil para análisis por UPLC, mientras que 1 ml del extracto se evaporó con una corriente suave de nitrógeno y luego redisuelto con 1 ml de Ethyl Acetato para el análisis por GC-ECD. La identificación y cuantificación de las moléculas se realizó por cromatografía de gases acoplado a un detector de captura de electrones (marca Varian modelo 3800) y una columna TR-5MS de 60m x 0.25mm ID x 0.25 um film, para los plaguicidas organoclorados y piretroides y por cromatografía líquida con detector de espectrometría de masas tipo tándem en modo Ionización Electrospray Positivo (ESI+) (marca Waters, modelo XevoTQS) y columna Acquity UPLC BEH C18 de 1.7um x 2.1 x 10mm, para los plaguicidas organofosforados y carbamatos. Los plaguicidas incluidos en el estudio pertenecientes a los grupos químicos organoclorados y piretroides fueron α- HCH, β-HCH, γ- HCH “TODO ES VENENO, NADA ES VENENNO. TODO DEPENDE DE LA DOSIS”.PARACELSO. pág. 5
UTMACH- PRÁCTICA DE TOXICOLOGÍA (Lindano, δ-HCH, BHC, Heptacloro, cis-Heptacloro epóxido, Aldrin, α-Endosulfan, β-Endosulfan, Endosulfan sulfato, Dieldrin, Endrin, Clorotalonil, Oxi-clordano, Transclordano, p.p’- DDE, p.p’-DDD, p.p’-DDT, λ-Cyhalotrina, Deltametrina, Cypermetrina, Pendimetalina, Permetrina y Ciflutrin). En la Tabla II se presenta la lista de plaguicidas incluidos en el estudio, que se analizaron por UPLC/MS/MS, indicándose las masas del ión precursor y de los fragmentos de cuantificación y de confirmación, así como la energía del cono y de colisión.
BIBLIOGRAFIA http://www.agrocalidad.gob.ec/revistaecuadorescalidad/index.php/revista/article/view/21/43
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Tema: Determinación de los compuestos cianogénicos amigdalina y prunasina en semillas de almendras (Prunus dulcis L.) mediante cromatografía líquida de alta resolución Disponible en: http: http://www.scielo.org.co/pdf/rcq/v42n3/v42n3a04.pdf
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ANEXO # 1
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