LABORATORIO MOHOS Y LEVADURAS
PRESENTADO POR: DIANA MARIBEL SUAREZ PEREZ MARIA TERESA MORENO RINCÓN OLGA LUCIA PEREZ MORENO
TABLA DE CONTENIDO
1. MARCO TEORICO 2. OBJETIVOS 3. MEDIOS DE CULTIVOS Y DILUYENTES 4. RESULTADOS 5. DISCUSIÓN DE RESULTADOS 6. RECOMENDACIONES
1. MARCO TEORICO Los mohos y levaduras están ampliamente distribuidos en la naturaleza y se pueden encontrar formando parte de la flora normal de un alimento, o como agentes contaminantes y en los equipos sanitizados inadecuadamente, provocando el deterioro fisicoquímico de éstos, debido a la utilización en su metabolismo de los carbohidratos, ácidos orgánicos, proteínas y lípidos originando mal olor, alterando el sabor y el color en la superficie de los productos contaminados. Además los mohos y levaduras pueden sintetizar metabolitos tóxicos termoresistentes, capaces de soportar algunas sustancias químicas, así como la irradiación y presentan capacidad para alterar sustratos desfavorables, permitiendo el crecimiento de bacterias patógenas. Es de gran importancia cuantificar los mohos y levaduras en los alimentos, puesto que al establecer la cuenta de estos microorganismos, permite su utilización como un indicador de prácticas sanitarias inadecuadas durante la producción y el almacenamiento de los productos, así como el uso de materia prima inadecuada. Muchos hongos son beneficiosos, algunos son comestibles, como es el caso de las setas y de la proteína unicelular de las levaduras. Otros son muy utilizados tanto en fermentaciones industriales como en fermentaciones industriales como en fermentaciones de alimentos; la especie Aspergillus oryzae, por ejemplo, se utiliza en la elaboración de salsa de soya, y en la maduración de algunos quesos intervienen mohos.
2. OBJETIVOS
Identificar hongos presentes en alimentos procesados.
Identificar que método usar para el análisis de hongos y mohos en los alimentos.
Comprobar si en nuestra muestra de alimento crecerá o será inocuo.
Analizar qué tipos de hongos y mohos crecen en nuestra muestra.
Realizar la lectura y resultados.
3. MEDIOS DE CULTIVOS Y DILUYENTES • 1 matraz Erlenmeyer de 250 mL de capacidad, conteniendo 90.0 mL de solución amortiguadora de fosfatos de pH 7.2 ó agua peptonada al 0.1%, estéril a. • 3 tubos de 16 x 150 mm, conteniendo 9.0 mL de solución amortiguadora de fosfatos de pH 7.2 ó agua peptonada al 0.1%, estériles con tapón de algodón a. • 4 tubos 22 x 175 mm con 20.0 mL de agar papa dextrosa. • 4 tubos 22 x 175 mm con 20.0 mL de agar extracto de malta.
4.
MATERIAL Y EQUIPO • • • • • • • • • • • • • •
Vaso de licuadora estéril o bolsa para Stomachera. Motor para licuadora o Stomachera. Pipetas graduadas estériles de 1 mL con tapón de algodón a. Pipetas graduadas estériles de 10 mL con tapón de algodón a. Pipetas Pasteur estériles a, b Propipetaa, b Cajas de Petri estériles (una se utiliza para pesar la muestra) a. Utensilios estériles para la manipulación de muestras: cuchillos, cucharas, tenedores, etc. a Incubadora con termostato que pueda ser mantenido a 25±1°C a. Baño de agua con control de temperatura y circulación mecánica mantenida a 45±1°C a. Portaobjetos, cubreobjetos, diurex b. Microscopio óptico b. Asa bacteriológica y asa micológicab. Contador de colonias de campo oscuro, con luz adecuada, placa de cristal cuadriculada y lente amplificador b.
5.
PROCEDIMIENTO Pesar 10.0 g de muestra en una caja Petri estéril y pasarla a un matraz Erlenmeyer que contenga 90.0 mL de una solución amortiguadora de fosfatos de pH 7.2 ó agua peptonada al 0.1%.
2. Homogeneizar la muestra con la solución anterior en un vaso de licuadora estéril o pasarla a una bolsa de Stomacher y homogeneizar durante 10.0 seg. en el caso de la licuadora a velocidad mínima, ó 30.0 seg en el Stomacher a una velocidad normal. Esta es la dilución primaria. De la suspensión o solución anterior, tomar 1.0 mL y transferirlo a un tubo de ensayo que contenga 9.0 mL de solución amortiguadora de fosfatos de pH 7.2, agitar y repetir esta operación tantas veces como diluciones sean necesarias. Se debe utilizar una pipeta estéril para cada dilución.
6. RESULTADOS
MEDIO ANALIS DE IS CULTIVO
Mohos y levaduras
OGY
CARACTE. MACROS
CARACTE. MICROSC.
Se pueden visualizar a simple vista que aparte de hongos, hubo una gran propagación de bacterias en nuestra muestra, los hongos presentes muestran rasgos de setas porosas, tiene una cutícula seca y sedosa.
Presentan micelios, hifas, esporangios y sus esporas
NUMERO DILUCIÓN DE IMAGEN COLONIAS 10-1
3 colonias de hongos
Mohos y levaduras
OGY
Los hongos presentes muestran rasgos de setas porosas, borde sedoso, dentro del borde un color verde pálido.
Presentan micelios, hifas, esporangios y sus esporas
10-3
2 colonias de hongos
7. DISCUSIÓN DE LOS RESULTADOS Los resultados arrojados en la incubación de nuestras pruebas de hongos y levaduras pudimos determinar que si hay una presencia de estos en nuestra muestra, aunque la muestra estaba empacada, tal vez las esporas llegaron a la muestra y comenzaron a crecer esta puede ser una idea de cómo hay hongos en nuestra muestra, también puede ser por una mala manipulación o un mal almacenamiento y debido a esto fue que pudimos encontrar hongos en el análisis de la muestra.
8. RECOMENDACIONES Se les recomienda un mejor aseo y desinfección en las instalaciones para poder evitar la propagación de microorganismos, una buenas BPM en la planta y en el personal de la producción y también poder mejorar el almacenamiento de estos productos, que son muy propensos a contaminarse.
9. BIBLIOGRAFIA
http://es.scribd.com/doc/93986720/CARACTERISTICAS-MACROSCOPICAS-Y-MICROSCOPICAS-EN-UNHONGO http://es.slideshare.net/lupe14/mohoslevaduras-y-bacterias