Practica de cobre

UNIVERSIDAD TECNICA DE MACHALA “Calidad Pertinencia y Calidez” D.L. N° 69-04, DE 14 DE ABRIL DE 1969 PROV. DE EL ORO-REP. DEL ECUADOR UNIDAD ACADEMICA DE CIENCIAS QUIMICAS Y DE LA SALUD LABORATORIO DE TOXICOLOGIA PRÁCTICA Nº BF.8.01-03 TEMA DE LA PRÁCTICA: INTOXICACIÓN POR COBRE 1. DATOS INFORMATIVOS: CARRERA: Bioquímica y Farmacia CICLO/NIVEL: OCTAVO SEMESTRE “A” FECHA DE REALIZACIÓN DE LA PRÁCTICA: 12/12/2016 NOMBRE: DIANA CAROLINA TORRES CALVA DOCENTE RESPONSABLE: Bioq. CARLOS GARCÍA MSc.

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Animal de Experimentación: vísceras de pollo Vía de Administración: Vía Intraperitoneal Volumen administrado: 20mL TIEMPOS:



Inicio de la práctica: 14:00 pm



Deceso del animal: 14:07 pm



Disección: 14:20 pm



Hora de baño maría: 14:40 pm



Finalización de baño maría: 15:05 pm



Final de la práctica: 15:20pm

FUNDAMENTO El Cobre puede ser encontrado en muchas clases de comidas, en el agua potable y en el aire. Debido a que absorbemos una cantidad eminente de cobre cada día por la comida, bebiendo y respirando. Las absorción del Cobre es necesaria, porque el Cobre es un elemento traza que es esencial para la salud de los humanos. Aunque los humanos pueden manjear concentraciones de Cobre proporcionalmente altas, mucho Cobre puede también causar problemas de salud.

TODO ES VENENO, NADA ES VENENO, TODO DEPENDE DE LA DOSIS.

PARACELSO

OBJETIVOS DE LA PRÁCTICA 1. Observar la reacción que presenta el cobayo ante la Intoxicación por Cobre 2. Observar atentamente las manifestaciones que presenta el pollo ante la Intoxicación por Cobre 3. Controlar el tiempo en que actúa el Cobre en el pollo.

4. Conocer mediante pruebas de identificación la presencia de Cobre MATERIALES  Balanza  Bisturí  Bureta  Campana  Cinta plástica  Cocineta  Cronómetro  Equipo de destilación.  Equipo de disección  Erlenmeyer  Espátula  Fosforo  Gorro  Guantes de látex  Jeringuilla de 10cc  Lámpara de alcohol  Mandil  Mascarilla  Panema  Perlas de vidrio

SUSTANCIAS         

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Hidróxido de Sodio Clorato de potasio Acido clorhídrico Ferrocianuro de Potasi Amoniaco Cuprón Solución de cobre Yoduro de potasio Cianuros Alcalinos

EQUIPOS Balanza analítica Campana de Gases Cocineta Eléctrica

PROCEDIMIENTO 1. Desinfectar el área de trabajo y tener todos los materiales listos en la mesa de trabajo 2. Aplicar todas las normas de bioseguridad antes de iniciar la práctica 3. Administrar el tóxico 4. Colocar el cobayo en la panema 5. Observar las manifestaciones que se presentan y en qué tiempo se dan hasta su muerte.

6. Con la ayuda del bisturí procedemos a realizar la disección al cobayo 7. Colocar la muestra ( vísceras ) en vaso de precipitación TODO ES VENENO, NADA ES VENENO, TODO DEPENDE DE LA DOSIS.

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8. Agregar las 50 perlas de vidrio , 2 g KClO 3 y 25ml HCl concentrado 9. Llevar a baño maría por 30 minutos con agitación regular 10. 5 minutos antes que se cumpla el tiempo establecido añadir 2g mas de KClO 3 11. Una vez finalizado el baño maría dejar enfriar, filtrar y con el filtrado realizar las reacciones de reconocimiento.

REACCIONES DE RECONOCIMIENTO 1. Con el Ferrocianuro de Potasio: En un medio acidificado con acido acético, el cobre reacciona dando un precipitado rojo oscuro de ferrocianuro cúprico, insoluble en ácidos diluidos, soluble en amoniaco dando color azul.

K4 Fe(CN)6 + 2Cu(NO3 )

Cu2 Fe(CN)6 + KNO3

2. Con el Amoniaco: La solución muestra tratada con amoniaco, forma primero un precipitado verde claro pulverulento que al agregarle un exceso de reactivo se disuelve fácilmente dando un hermoso colr azul por formación de un compuesto cupro-amónico.

Cu(NO3 )2 + 4NH3

Cu(NH3 )4 . (NO3 )2

3. Con el Cuprón: En solución alcoholica al 1 % al que se le adiciona gotas de amoniaco, las sales de cobre reaccionan produciendo un precipitado verde insoluble en agua, amoniaco diluido, alcohol, acido acético, soluble en acidos diluidos y poco solubles en amoniaco concentrado.

C6 H5 -C=NOH C6 H5 -CHOH + Cu(NO3 )2

C6 H5 -C=N-O Cu +

2HNO3 C6 H5 -C-N-O 4. Con el Yoduro de Potasio: Adicionando a la solución muestra gota a gota, primeramente se forma un precipitado blando que luego se transforma a pardo-verdoso o amarillo.

Cu(NO3 )2 + IK + I3 5. Con los cianuros alcalinos: A una pequeña cantidad de muestra se agregan unos pocos cristales de cianuro de sodio formando un precipitado verde de cianuro de cobre, a este precipitado le agregamos exceso de cianuro de sodio y observamos que se disuelve por formación de un complejo de color verde-café.

(NO3 )Cu + 2CNNa

(CN)2 Cu + NO3 - + Na+

(NO3 )Cu + 3CNNa

[Cu(CN)3 ]= + 3Na+

6. Con el Hidróxido de Amonio: A la solución muestra, agregarle algunas gotas de NH4 OH, con lo cual en caso positivo se forma un precipitado color azul claro de solución NO 3 (OH)Cu. Este

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precipitado es soluble en exceso de reactivo, produciendo solución color azul intenso que corresponde al complejo [Cu(NH3 )4]++.

(NO3 )2Cu + NH3 (NO3 )2Cu +3 NH3

Cu(OH)NO3 2[Cu(NH3 )4+++ NO3 H + H2 O

7. Con el Hidróxido de Sodio: A 1ml de solución muestra, agregamos algunas gotas de de NaOH, con lo cual en caso de ser positivo se debe formar un precipitado color azul pegajoso por formación de Cu(OH)2.Este precipitado es soluble en ácidos minerales y en álcalis concentrados.

Cu++ + 2OH

Cu(OH)2

8. Con el SH2: A la solución muestra, hacerle pasar una buena corriente de SH2, con lo cual en caso de ser positivo se forma un precipitado color negro este precipitado es insoluble en exceso de reactivo, en KOH 6M, en ácidos minerales diluidos y fríos .

(NO3)2 Cu + SH2

SCu+ 2NO3H

9. Con el IK: A una pequeña porción de solución muestra agregarle gota a gota de solución de IK, con lo cual en caso de ser positivo se forma inicialmente un precipitado color blanco que luego se transforma en pardo verdoso o por formaciones de iones tri yoduros, el mismo que se puede volar con Tio sulfato de sodio.

(NO3)Cu + Tri yoduros GRÁFICOS:

1. Recoger las vísceras del pollo.

2. Triturar las vísceras

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3. Pesar y medir sustancias 2 g KClO 3 y 25ml (500 gotas) HCl concentrado

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4. Añadir 2 g KClO 3 y 25ml (500 gotas) HCl

7. Con Ferrocianuro Potasio

10. Con Hidróxido de Sodio

de

5. Llevar a baño María durante 30 minutos

6. Filtrar y realizar reacciones.

8. Con Amoniaco

9. Con Cuprón

11. Con el SH2

12. Con el IK

las

REACCIONES DE RECONOCIMIENTO 

Con Ferrocianuro de Potasio Solución Problema (Antes)

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Positivo – No Característico (azul)

PARACELSO



Reacción con Amoniaco Solución Problema (Antes)



Reacción con Cuprón Solución Problema (Antes)



Negativo

Negativo

Reacción con Yoduro de Potasio Solución Problema (Antes)

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Positivo Característico (Pardo - Verdoso)

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

Reacción con Cianuros Alcalinos Solución Problema (Antes)



Positivo Característico (Café - Verdoso)

Reacción con Amoniaco Solución Problema (Antes)

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Positivo No Característico (Pegajoso)

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

Reacción con IK Solución Problema (Antes)

Positivo No Característico (Rojo Ladrillo)

OBSERVACIONES: En la realización de ésta práctica al haber administrado nitrato mercúrico (toxico) por vía peritoneal al animal en experimentación, hemos observado presencia de mercurio en las vísceras de este animal de experimentación.

CONCLUSIONES Al término de esta práctica podemos concluir que el veneno utilizado (Cobre) es muy tóxico debido a la presencia de dicho toxico en las vísceras del pescado.

RECOMENDACIONES  Conocer y aplicar todas las normas de bioseguridad en el laboratorio para evitar posteriormente accidente alguno  Preparar correctamente los reactivos a la concentración requerida en la práctica y así mismo utilizar pipetas o bulbos para cada reactivo.  Culminada la práctica se debe dejar el área desinfectada, para evitar contaminación con las sustancias químicas utilizadas.

BIBLIOGRAFÍA 

Toxicología Médica Dr. Phil, Dr. Med. H. Funher. Editorial Científico-Médico.

Madrid. España. 2010.

WEBGRAFÍA 

Loría j .bermeo a. Ramírez a. Fernández d. Archivos de medicina de urgencia de méxico.

Intoxicación por mercurio, Mexico 2009 vol. (consultado el 19 dejunio del 2014).

Revisado por: BQF. Carlos García. Mg. Sc.

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Catedrático

FIRMA Diana Carolina Torres Calva

ANEXOS Adicionar los siguientes elementos:   

Hoja de trabajo de la práctica de laboratorio firmada por el profesor Caso clínico, recorte de revista o periódico, artículo científico con respecto al toxico en cuestión.

Fotografía con el toxico en mención.

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