MANGOSTÃO (Garcinia mangostana, L.): TECNOLOGIAS DE PLANTIO E UTILIZAÇÃO

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MANGOSTÃO (Garcinia mangostana, L.) TECNOLOGIAS DE PLANTIO E UTILIZAÇÃO

Edição

CENTRO INTERDISCIPLINAR DE PESQUISA EM EDUCAÇÃO E DIREITO

LARYSSA MAYARA ALVES DE ALMEIDA

Diretor Presidente da Associação do Centro Interdisciplinar de Pesquisa em Educação e Direito

VINÍCIUS LEÃO DE CASTRO

Diretor Adjunto da Associação do Centro Interdisciplinar de Pesquisa em Educação e Direito

ESTHER MARIA BARROS DE ALBUQUERQUE

Editor chefe da Associação da Revista Eletrônica a Barriguda AREPB

ASSOCIAÇÃO DA REVISTA ELETRÔNICA A BARRIGUDA AREPB CNPJ 12.955.187/0001 66 Acesse: www.abarriguda.org.br

CONSELHO EDITORIAL

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VICENTE DE PAULA QUEIROGA JOSIVANDA PALMEIRA GOMES NOUGLAS VELOSO BARBOSA MENDES ACÁCIO FIGUEIREDO NETO ALEXANDRE JOSÉ DE MELO QUEIROZ BRUNO ADELINO DE MELO ESTHER MARIA BARROS DE ALBUQUERQUE (Editores Técnicos)

MANGOSTÃO (Garcinia mangostana, L.) TECNOLOGIAS DE PLANTIO E UTILIZAÇÃO

ASSOCIAÇÃO DA REVISTA ELETRÔNICA A BARRIGUDA
1ª Edição
AREPB 2023

©Copyright 2023 by

Organização do Livro

VICENTE DE PAULA QUEIROGA, JOSIVANDA PALMEIRA GOMES, NOUGLAS VELOSO BARBOSA MENDES, ACÁCIO FIGUEIREDO NETO, ALEXANDRE JOSÉ DE MELO QUEIROZ, BRUNO ADELINO DE MELO, ESTHER MARIA BARROS DE ALBUQUERQUE

Arte da Capa

ESTHER MARIA BARROS DE ALBUQUERQUE

Editoração

ESTHER MARIA BARROS DE ALBUQUERQUE

Diagramação

ESTHER MARIA BARROS DE ALBUQUERQUE

O conteúdo dos artigos é de inteira responsabilidade dos autores.

Data de fechamento da edição: 13/06/2023

Dados internacionais de catalogação na publicação (CIP)

Q3m Queiroga, Vicente de Paula. Mangostão (Garcinia mangostana, L.): Tecnologias de plantio e utilização 1ed. / Organizadores, Vicente de Paula Queiroga, Josivanda Palmeira Gomes, Nouglas Veloso Barbosa Mendes, Acácio Figueiredo Neto, Alexandre José de MeloQueiroz, Bruno Adelino de Melo, Esther Maria Barros de Albuquerque. Campina Grande: AREPB, 2023 145 f. : il. color.

ISBN 978 65 87070 26 1

1. Mangostão 2. Garcinia mangostana 3. Sistema de produção. 4. Colheita. 5. Frutos. 6. Alimento. I. Queiroga, Vicente de Paula. II. Gomes, Josivanda Palmeira. III. Mendes, Nouglas Veloso Barbosa. IV. Figueiredo Neto, Acácio. V. Queiroz, Alexandre José de Melo. VI. Melo, Bruno Adelino de. VII Albuquerque, Esther Maria Barros de. VIII. Título.

CDU 634.2

Ficha Catalográfica Elaborada pela Direção Geral da Revista Eletrônica A Barriguda AREPB

Todos os direitos desta edição reservados à Associação da Revista Eletrônica A Barriguda AREPB. Foi feito o depósito legal.

O Centro Interdisciplinar de Pesquisa em Educação e Direito CIPED, responsável pela Revista Jurídica e Cultural “A Barriguda”, foi criado na cidade de CampinaGrande PB,comoobjetivodeserum locus depropagaçãodeumanovamaneira de se enxergar a Pesquisa, o Ensino e a Extensão na área do Direito.

A ideia de criar uma revista eletrônica surgiu a partir de intensos debates em torno da Ciência Jurídica, com o objetivo de resgatar o estudo do Direito enquanto Ciência, de maneira inter e transdisciplinar unido sempre à cultura. Resgatando, dessa maneira, posturas metodológicas que se voltem a postura ética dos futuros profissionais.

Os idealizadores deste projeto, revestidos de ousadia, espírito acadêmico e nutridos do objetivo de criar um novo paradigma de estudo do Direito se motivaram para construir um projeto que ultrapassou as fronteiras de um informativo e se estabeleceu como uma revista eletrônica, para incentivar o resgate do ensino jurídico como interdisciplinar e transversal, sem esquecer a nossa riqueza cultural.

Nosso sincero reconhecimento e agradecimento a todos que contribuíram para a consolidação da Revista A Barriguda no meio acadêmico de forma tão significativa.

Acesse a Biblioteca do site www.abarriguda.org.br

EDITORES TÉCNICOS

Vicente de Paula Queiroga (Dr)

Pesquisador da Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária

Centro Nacional de Pesquisa do Algodão CNPA Campina Grande, PB (Brasil)

Josivanda Palmeira Gomes (Dra)

Professora da Unidade Acadêmica de Engenharia Agrícola

Universidade Federal de Campina Grande Campina Grande, PB (Brasil)

Nouglas Veloso Barbosa Mendes (M. Sc.)

C&N Serviços Agroambientais Ltda Agritech Semiárido Agricultura Ltda Pereiro, CE (Brasil)

Acácio Figueiredo Neto (Dr)

Professor Adjunto do Colegiado de Engenharia Agrícola

Universidade Federal do Vale do São Francisco UNIVASF Juazeiro BA (Brasil)

Alexandre José de Melo Queiroz (Dr)

Professor da Unidade Acadêmica de Engenharia Agrícola

Universidade Federal de Campina Grande Campina Grande, PB (Brasil)

Bruno Adelino de Melo (Dr)

Pesquisador do CNPQ / UFCG

Universidade Federal de Campina Grande Campina Grande, PB (Brasil)

Esther Maria Barros de Albuquerque (Drª)

Doutora em Engenharia de Processos

Universidade Federal de Campina Grande Campina Grande, PB (Brasil)

O mangostanzeiro é agrupado botanicamente no gênero Garcinia e espécie Garcinia mangostana Mart. É uma árvore de oito a dez metros de altura, de formato piramidal, semelhante ao jambeiro, com folhas simples, de coloração verde escuro e fruto de 4 a 9 cm de diâmetro e 3,6 a 6,5 cm de altura. Geralmente é cultivado em terra firme até 900 metros acima do nível do mar. Boa textura do solo, estrutura, drenagem, umidade, alto teor de matéria orgânica e pH ótimo (5,5 a 7,0), são favoráveis ao crescimento do mangostão. Além disso, é plantado em condições de sequeiro principalmente nos estados brasileiros do Pará e da Bahia, em razão de requer em tais condições uma distribuição anual de chuvas acima de 1.270 mm/ano. Na escolha da área, para investimento em cultivo de mangostão, o produtor deve avaliar, além dos aspectos edafoclimáticos, os aspectos estratégicos de localização da propriedade em relação ao mercado consumidor e a proximidade de outros produtores, visando à formação de volume para comercialização em grandes centros. A maior parte do mangostão comercializado internacionalmente é proveniente de áreas de cultivo espalhadas por alguns países de clima tropical, em especial na América Central e ilhas do Caribe. No entanto, no início dos anos 90, o Brasil iniciou a exportação do mangostão para os Estados Unidos, Canadá e Europa, sendo candidato a ampliar, cada vez mais, sua participação nesse mercado. Portanto, aquele que decidir cultivar essa cultura em condições de sequeiro ou de forma irrigada conhecê la em maior profundidade, o livro Mangostão (Garcinia mangostana, L.) Tecnologias de Plantio e Utilização, será de grande interesse e ajuda para o produtor que necessita pôr em prática as várias tecnologias abordadas no mesmo.

APRESENTAÇÃO
Autores

SUMÁRIO

CAPÍTULO I SISTEMA PRODUTIVO DO MANGOSTÃO (Garcinia mangostana, L.) Vicente de Paula Queiroga, Josivanda Palmeira Gomes, Nouglas Veloso Barbosa Mendes, Acácio Figueiredo Neto, Alexandre José de Melo Queiroz, Bruno Adelino de Melo, Ênio Giuliano Girão, Esther Maria Barros de Albuquerque 10

MATURAÇÃO, COLHEITA, PÓS COLHEITA E COMERCIALIZAÇÃO Vicente de Paula Queiroga, Josivanda Palmeira Gomes, Nouglas Veloso Barbosa Mendes, Acácio Figueiredo Neto, Alexandre José de Melo Queiroz, Bruno Adelino de Melo, Esther Maria Barros de Albuquerque 97

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS 126

CAPÍTULO I

SISTEMA PRODUTIVO DO MANGOSTÃO (Garcinia mangostana, L.)

Vicente de Paula Queiroga Josivanda Palmeira Gomes Nouglas Veloso Barbosa Mendes Acácio Figueiredo Neto Alexandre José de Melo Queiroz Bruno Adelino de Melo Ênio Giuliano Girão Esther Maria Barros de Albuquerque (Editores Técnicos)

Capítulo I | 10

INTRODUÇÃO

O mangostão (Garcinia mangostana L.) é uma espécie de árvore perene, endêmica, cultivada em países tropicais, como Malásia, Tailândia e Indonésia (AIZAT et al., 2019; MARZAIMI; AIZAT, 2019). O mangostão pertence à família Clusiaceae (Guttiferae) (MATRA et al., 2016; NAZRE et al., 2018) e é amplamente cultivado por sua fruta, que é comumente chamada de “Rainha das Frutas” devido ao seu sabor agridoce único (AIZAT et al., 2019; MIDIN et al., 2018).

Sendo assim, o mangostão é considerado a fruta mais famosa e mais saborosa do trópico asiático. Mas devido ao fato da rainha Vitória, da Inglaterra (1819 1901), ao prová la, disse não haver saboreado antes nenhuma fruta tão deliciosa e, a partir daí, ficou conhecida como a fruta da rainha. Portanto, o mangostão ganhou, portanto, com justiça, o título popular de 'Rainha dos Frutos', apesar que seus frutos pesam entre 70 150 g. e são geralmente considerados uma das frutas mais saborosas do mundo, superando todas as outras frutas tropicais.

Entre as frutas de árvores tropicais cultivadas, o mangostão (Garcinia mangostana L.), que recebeu o nome do explorador francês Laurent Garcin (1683-1751), é provavelmente um dos mais limitados em origem geográfica e distribuição. Nativa do Sudeste Asiático, esta espécie permaneceu localizada principalmente em seu habitat nativo; isto é possível devido às suas exigências ecológicas bastante especializadas. Além disso, o seu estabelecimento é relativamente difícil, pois as plântulas têm crescimento lento, mesmo em seu ambiente natural.

As árvores de mangostão crescem naturalmente como plantas de sub bosque em comunidades florestais. No cultivo, o sombreamento é, portanto, benéfico durante os primeiros 4 a 5 anos de crescimento inicial e muitas vezes é fornecido por outras árvores que normalmente são cultivadas em propriedades arrendadas no Sudeste Asiático.

Tradicionalmente, o mangostão tem sido propagado por sementes. Estas são produzidas apomicticamente, sem fecundação, e por isso produzem plântulas que, quando totalmente crescidas, são idênticas à árvore mãe. Consequentemente, o mangostão é um dos frutos de árvores tropicais de crescimento muito lento, mas também é um dos mais duradouros. As árvores de plântulas normalmente requerem de 10 a 15 anos para frutificar, mas dependendo de um bom manejo cultural pode produzir frutos a partir dos 5 anos. O mangostãoé considerado umaárvoredioica, perene, de6 25 m de altura, com troncoreto,

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até 25 35 cm de diâmetro e ramos simetricamente dispostos que formam uma copa regular, piramidal. A casca é muitas vezes marrom escura ou quase preta, rugosa, com tendência a descamação. A copa frondosa, densa e uniforme, torna a uma valiosa árvore de sombra. Um tipo amarelo de látex ou resina está presente em todos os principais tecidos da árvore. O estabelecimento do mangostão como fruto cultivado acompanhou a expansão da população em várias áreas do Sudeste Asiático.

No Sudeste Asiático, a economia da produção de mangostão não foi estimada com precisão, embora se saiba que os produtores ganham renda extra com a venda de frutas que excedem suas próprias necessidades. A produção total atual é composta por produtos provenientes de vários pequenos agricultores do sistema tradicional de policultivos ou consorciados, combinados com os de pomares de média dimensão. Alguns produtores de mangostão em grande escala se estabeleceram na região e pesquisas intensivas foram realizadas, particularmente sobre aspectos de propagação e processamento, principalmente na Tailândia, Malásia e Indonésia. As informações publicadas sobre alguns aspectos da produção e do processamento estão se tornando disponíveis lentamente, mas a maioria dessas fontes de dados está escrita nos idiomas tailandês, indonésio ou malaio.

Mesmo assim, o mangostão (Garcinia mangostana L.) é uma das plantas mais prolíficas utilizadas em várias aplicações. Rico em compostos bioativos potentes, como xantonas e antocianinas, que são extraídos principalmente do pericarpo do fruto, o mangostão é conhecido por possuir propriedades anti inflamatórias e antitumorais farmacologicamente importantes. Ou seja, mangostão tem sido usado para tratar várias doenças, incluindo tumores, diabetes, infecções bacterianas, hipertensão e artrite (AIZAT et al., 2019; SHANDIZ et al., 2017). Estas aplicações sugerem a utilidade do extrato da fruta em contextos medicinais e farmacêuticos.

No entanto, a maioria das revisões anteriores discutiu apenas a aplicação do mangostão em áreas medicinais, mas estudos mais recentes divergiram e valorizaram seu uso em outroscamposcientíficos,taiscomo:biologiapós colheita(papeldefitohormônios,perfil de metabólitos, compostos bioativos, otimização de métodos de isolamento, identificação de contaminantes químicos e manejo de pragas e distúrbios de frutas), ciência de alimentos (produtos alimentícios, suplementação de ração animal, e determinação do prazo de validade de alimentos) e campos de engenharia (tintas para tecidos e células solares, pontos de carbono, carvão ativado e materiais biomédicos avançados). Portanto,

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os trabalhos de pesquisa publicados recentemente permitem mostrar as tendências recentes de pesquisa nessas áreas (Figura 1). Em conclusão, o mangostão tem sido utilizado para diversos fins, desde o uso em produtos industrialmente importantes até aplicações em tecnologias avançadas e inovação biomédica (AIZAT et al., 2019).

Embora a popularidade do mangostão esteja aumentando consistentemente, o comércio internacional ainda permanece insignificante, embora as frutas exportadas do Sudeste Asiático sejam cada vez mais encontradas nos mercados europeus e as frutas da América Central sejam exportadas para os EUA. É importante destacar que a produção de mangostão normalmente não é incluída nos dados estatísticos da Indonésia, Malásia e outros países da Ásia e geralmente é listada como uma fruta de árvore cultivada em uma extensão limitada.

No caso do Brasil, o mangostão é cultivado, principalmente, nos Estados do Pará e da Bahia, na maioria dos casos, em pomares de um a três hectares e em pequena escala no Espírito Santo e São Paulo. Na Bahia, a maior concentração de mangostanzeiros localiza se no município de Una, onde se estima uma área de 50 hectares (aproximadamente 5.000 plantas). Os plantios começaram por volta de 1956 e estima se que a metade se encontra em produção. Outros municípios baianos (Taperoá, Ituberá, Uruçuca, Nilo Peçanha e Tancredo Neves) totalizam cerca de 20 ha (2.000 plantas). A produção brasileira de mangostão tem variado bastante em função de novas áreas implantadas e da alternância

Figura 1. Avanços e utilização recentes do mangostão. Fonte: Aizat et al. (2019).
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deprodução apresentada poressaespécie.Nos anos de1999,2000e2001,em Una,foram comercializadas, respectivamente, 6.000, 10.000 e 60.000 caixas de 1,4 kg de frutos (SACRAMENTO, 2001)

IMPORTÂNCIA ECONÔMICA

O mangostão vem ganhando cada vez mais reconhecimento no mercado internacional e as recentes demandas por frutas exportadas levaram os produtores a considerar esta cultura com interesse renovado. Pesquisas intensivas foram realizadas recentemente, especialmente sobre propagação e processamento, na Tailândia, Malásia e Indonésia. As frutas frescas têm alto preço nos mercados internacionais, como os de Hong Kong, Japão e Europa.

Apesar da popularidade das frutas exportadas, o comércio internacional ainda é relativamente insignificante, embora às vezes as frutas sejam encontradas em mercados distantes na Europa e nos EUA. Os mercados europeus são abastecidos de países do Sudeste Asiático e os dos EUA da América Central. O mangostão não está incluído nos dados estatísticos da Indonésia, Malásia e outros países produtores da Ásia e geralmente é registrado como uma fruta secundária, cultivada em áreas limitadas

Os frutos do mangostão são consumidos frescos; os arilos brancos carnudos são deliciosos, doces, ligeiramente ácidos e de sabor suave. Segmentos carnudos às vezes são enlatados. Suco e geleia também são preparados (KETSA; PAULL, 2011). A casca é adstringente e é transformada em geleia por tratamento com 6% de cloreto de sódio. As sementes são comidas assadas ou cozidas. A porção arilo da fruta possui 18,4 g de carboidrato, 0,5 g de proteína, 0,2 g de gordura, 1,7 g de fibra, portanto, uma fonte modesta de nutrientes essenciais (Figura 2; KETSA; PAULL, 2011).

Figura 2. Fruto inteiro e cortado, destacando a polpa ou arilo de cor branca.
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A fruta mangostão é sempre melhor consumida como fruta fresca. O método de preparo é cortar cuidadosamente a parte central da camada lenhosa, retirando a pele grossa sem tocar no arilo branco. Deve se ter cuidado para evitar que as resinas ou taninos exsudados do pericarpo cortado entrem em contato com os segmentos do fruto. Quando os segmentos do arilo estão expostos, eles podem ser removidos com um garfo. As sementes também são comestíveis, depois de fervidas em água.

O fruto contém compostos bioativos, como xantonas e antocianinas, os quais são extraídos principalmente do pericarpo do fruto (Figura 3). Além disso, possui altas propriedades antioxidantes e anti inflamatórias. O mangostão tem sido usado para tratar várias doenças, incluindo tumores, diabetes, infecções bacterianas, hipertensão e artrite (AIZAT et al., 2019; SHANDIZ et al., 2017). Estas aplicações sugerem a utilidade do extrato da fruta em contextos medicinais e farmacêuticos.

Figura 3.Cápsulas dacasca(pericarpo)do fruto demangostão.Foto: ShopeePhilippines.

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Os produtos de suco de mangostão às vezes possuem polifenóis extraídos do pericarpo para adicionar valor polifenólico (KETSA; PAULL, 2011; Figura 4). Os arilos também contêm substâncias voláteis, principalmente acetato de hexilo, hexanol e α copaeno que são responsáveis pela fragrância de mangostão (MACLEOD; PIERIS, 1982). As sementes de mangostão são ricas em óleo (21,68%; AJAYI et al. 2007) e a farinha da semente é uma boa fonte de minerais especialmente potássio (7071 mg/kg), magnésio (865 mg/kg) e cálcio (454 mg/kg).

Figura 4 Bebida de fruta 100% mangostão vendida como suplemento nutricional “super fruta” numa loja de produtos naturais. Foto: Craig Elevitch.

Há alguma evidência de que o sabor da fruta fresca é melhorado pelo resfriamento na geladeira doméstica (GALANG, 1955). Tentativas bem sucedidas de congelar frutas inteiras tornaram possível o seu transporte de longa distância. O congelamento é feito rapidamente a baixas temperaturas ( 35 °C) e os frutos congelados mantidos a 20 °C; Usando este processo, a qualidade da fruta é mantida, a polpa não é descolorida e a contribuição de substâncias voláteis para o sabor permanece mais ou menos a das frutas frescas (KANCHANAPOM; KANCHANAPOM, 1998).

O enlatamento da polpa não é atraente porque a polpa tende a perder seu sabor nesse processo. No entanto, quando processado com açúcares é possível conseguir uma gama de produtos aceitáveis: mangostão enlatado em calda densa, ou como geleia ou cristalizado (SINGH, 1969; KANCHANAPOM; KANCHANAPOM 1998); polpa e semente cozidas com açúcar (WESTER, 1920; WESTER, 1921; BROWN, 1954; GALANG, 1955; PALMA GIL et al., 1972; CORONEL, 1983; KANCHANAPOM; KANCHANAPOM, 1998); polpa conservada em açúcar mascavo (ALMEYDA;

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MARTIN, 1976); puré de calda (NUSWAMARHAENI et al., 1989); coberturas para sorvete ou limonada (OCHSE et al., 1961); dando sabor para sorvete ou suco (MOHD KHALID; RUKAYAH, 1993) e vinho.

Os frutos do mangostão também podem ser conservados; os tipos mais ácidos são geralmente preferidos. Os segmentos da polpa sãoextraídos dos frutos maduros e imersos em uma calda composta de açúcar e água na proporção de 1:2 para evitar a descoloração.

A calda é então drenada e os segmentos são colocados em uma garrafa de calda fresca preparada com quantidades iguais de açúcar e água. Depois que todo o ar é liberado, a garrafa é semi vedada, esterilizada em água fervente por 25 minutos e depois é completamente vedada. Os engarrafados e outras formas preservadas de frutos de mangostãoestãodisponíveisemmercadoslocaisnoSuldaTailândiaenas Filipinas;tanto a polpa quanto as sementes são fervidas em solução de açúcar para fazer uma conserva (CRISOTOMO, 1977).

As bebidas aromatizadas, doces e compotas também são preparadas a partir do arilo do mangostão para uso doméstico. As técnicas foram desenvolvidas por Siddappa e Bhatia (1954) para a produção de sucos, geleias, xaropes e segmentos de frutas enlatadas. Muito do aroma picante do mangostão é normalmente perdido durante o processamento e é necessário desenvolver um método satisfatório de conservação do sabor do produto processado.

A casca contém 7 15% de tanino e é usada para curtir couro e tingir tecidos de preto (MAcMILLAN, 1956; CORONEL, 1983; NAKASONE; PAULL, 1998). Também é relatado para ser usado como ingrediente em sabonetes, xampus e condicionadores (YAPWATTANAPHUN et al., 2002).

A madeira vermelha escura do mangostão é pesada, grosseira e muito durável e, quando disponível, é usada para marcenaria, materiais de construção, cercas e para fazer pilões ou trituradores de arroz (IBPGR, 1986). O cerne do tronco é marrom escuro e produz madeira valiosa para a construção de móveis. Também é usado por habilidosos artesãos indonésios para fazer lembranças que retratam a forma e o tamanho da fruta. A árvore é ideal para uso como árvore ornamental que proporciona sombra e não prejudica calçadas ou fundações de edifícios pela penetração de suas raízes. A árvore tem uma forma simétrica, cilíndrica, com grande número de ramos laterais e folhas de um verde brilhante que criam um visual atraente em jardins botânicos e parques (Figura 5)

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ORIGEM DO MANGOSTÃO

Dentre as frutíferas tropicais cultivadas, o mangostão é provavelmente uma das mais localizadas em relação ao seu centro de origem, habitat e área de cultivo. Nativa do Sudeste Asiático como Malásia, Tailândia e Indonésia (AIZAT et al., 2019; MARZAIMI; AIZAT, 2019; Figura 6), a árvore permaneceu centrada principalmente em torno de seu habitat original, possivelmente em parte devido ao fato de que o fruto, embora envolto em uma casca grossa, permanece comestível por um período muito limitado. Além disso, as sementes são recalcitrantes e perdem rapidamente sua viabilidade. O mangostão é encontrado em estado natural na Península Malaia, Mianmar (antiga Birmânia), Tailândia, Camboja, Vietnam, Ilhas Molucas e da Sonda e, o seu cultivo, é normalmente cultivado no Sudeste Asiático em explorações de policultivos ou consorciados, localmente chamados “dusuns” na Malásia e na Indonésia.

Figura 5. Planta jovem de mangostão.
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Figura 6. Sudeste Asiático é a origem do mangostão.

A origem exata do mangostão não foi totalmente estabelecida, mas uma teoria recente, proposta por Zeven e De Wet (1982) é que ele é derivado de Garcinia silvesns Boerl., uma espécie encontrada crescendo tanto na Malásia quanto na Índia.

O último estudo definitivo de Richards (1990b) sobre a origem do mangostão indicou, no entanto, que a Malásia Peninsular foi provavelmente a área de origem, tendo o progenitor original possivelmente surgido como um híbrido entre as espécies Garcinia hombroniana e Garcinia malaccensis, pois ambas são nativas da Malásia, embora a distribuição de Garnicia hombroniana se estenda às Ilhas Nicobar. Entretanto, a Garcinia hombroniana é principalmente selvagem, mas também plantada porque sua madeira é valorizada e partes da planta são usadas na medicina. Enquanto a Garcinia malaccensis sempre foi silvestre, nunca plantada ou cultivada e é uma espécie mais escassa com distribuição dispersa. As plantas juvenis da espécie Garcinia malaccensis foram encontradas na parcela permanente da Reserva Pasoh, Negeri Sembilan na Malásia Peninsular (SAW et al., 1991).

Ou seja, a espécie Garcinia hombroniana é encontrada tanto em florestas montanhosas e marítimasquantoemflorestassecundárias aoredordeKampongnapenínsulada Malásia. Além de ser cultivada dentro de sua área natural, que abrange a Malásia, as Ilhas Nicobar e o sul da Tailândia, o seu cultivo se espalhou em escala rudimentar para o sul da Índia e da Indochina.Enquanto a espécie Garcinia malaccensis éselvagem em florestastropicais de planície, particularmente da Malásia Peninsular.

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Ambas as espécies selvagens foram bem descritas por Ridley (1967) que afirmou que Garcinia malaccensis se assemelha a Garcinia hombroniana até certo ponto e que a espécie Garcinia hombroniana se assemelha ao mangostão (Garcinia mangostana)

Richards (1990) afirmou que as três espécies, Garcinia malaccensis, Garcinia hombroniana e Garcinia mangostana formam um agrupamento morfológico natural sem outros parentes próximos.

Richards (1990) observou que em ambos os parentes próximos de Garcinia mangostana são espécies agamospérmicas facultativas e ambas são diplóides. Garcinia mangostana é um poliplóideeprovavelmente tetraploide, sendo um alotetraplóideetendo surgido como um híbrido entre uma Garcinia hombroniana cultivada como progenitor feminino e uma Garcinia malaccensis selvagem como progenitor masculino. O número de cromossomos tem sido 2n=56 76, 88 90 96, 120 130, citado por Verheij (1992) em Prosea.

As flores masculinas são conhecidas em todas as espécies de Garcinia, exceto para mangostão e também possivelmente uma espécie selvagem não relacionada, Garcinia scortechinii King, da Malásia e Indochina, sinonímia Garcinia gaudichaudii Planch.

Portanto, a reprodução sexual é possível na maioria das espécies, apesar disso a espécie mangostão é uma autêntica agamospérmica, produzindo apenas descendentes femininos. Indivíduos do sexo masculino neste gênero dioico têm que ser o produto da reprodução sexuada.Em várias espéciesselvagens quepodem sereproduzirsexualmente,sabe seque a agamospermia facultativa ocorre em pelo menos 10 espécies (RICHARDS, 1990), e então a produção de múltiplas plântulas a partir de sementes infere tal condição.

Por outro lado, o cultivo no Sudeste Asiático tem sido principalmente limitado à área de origem que se estende da Indonésia para o Leste até a Nova Guiné e Mindanao nas Filipinas e ao Norte, via Malásia, até as partes do Sul da Tailândia, Birmânia, Vietnã, Filipinas e Camboja. Parece provável que o mangostão tenha sido domesticado pela primeira vez na Tailândia ou na Birmânia (CORNER, 1952). Somente durante os últimos dois séculos a cultura se espalhou para outras áreas tropicais, incluindo Costa do Marfim, Madagascar, Sri Lanka, sul da Índia, China, Brasil e partes de Queensland, Austrália. Também foi plantado na Costa Rica, Porto Rico, Dominica, Jamaica e Panamá (ALMEYDA; MARTIN, 1976) e pequenas plantações foram estabelecidas no Havaí, Honduras, Guatemala, Sul da Flórida e Cuba (WINTERS, 1953; CAMPBELL, 1967).

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PRODUÇÃO E DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA MUNDIAL

Produção Mundial. O mangostanzeiro (Garcinia mangostana L.) é uma espécie perene, de clima tropical, porte médio a alto, alcançando até 25 metros de altura, sendo oriunda da Indonésia e Malásia e cultivada em todo o Sudeste asiático, onde, em 2017, a produção atingiu cerca de 700.000 toneladas (ALTENDORF, 2018; MULLER et al., 1995). Em aspecto mundial, pomares pequenos e mercantis foram introduzidos em países como Tailândia, que é detém o título de principal produtor mundial de mangostão, com produção estimada em 530.00 toneladas (2017), além da Birmânia, Filipinas, Sri Lanka e,compequenasproduções,naAustrália,Cuba,Honduras,RepúblicaDomicana,Jamaica e Panamá (ALTENDORF, 2018; MANGOSTEEN..., 2019). Em território brasileiro, os Estados da Bahia e do Pará são os principais produtores, seguidos do Espírito Santo e São Paulo (SACRAMENTO et al., 2007).

Existe atualmente um interesse crescente na produção especializada de mangostão à escala comercial. Por exemplo, nas províncias do Leste e do Sul da Tailândia, alguns produtores de médio e grande porte se estabeleceram recentemente, exportando mangostões para várias partes da Europa e do Japão. Nos últimos 15 anos, um produtor substituiu em grande parte sua plantação de durian (Durio zibethinus) por mangostão e, em 1986, quase 80 toneladas de frutas de boa qualidade foram exportadas. O valor dos frutosdemangostãodeprimeiraqualidadepodeserbastantesubstancialquandoospreços estão em um nível alto.

No Brasil, o mangostão é cultivado, principalmente, nos Estados do Pará e da Bahia e, em pequena escala, no Espírito Santo e São Paulo. No estado do Pará, que tem 300 dias de chuva por ano e temperatura constante de 32 33 °C, a cultura do mangostão está concentrada em área plantada de cerca de 250 hectares, principalmente nos municípios de Santa Isabel do Pará, Benevides, Castanhal, Marituba, Santo Antônio do Tauá e, em menor escala, em Tomé Açu. Aproximadamente 50% fazem consócio com outras espécies frutíferas, principalmenteaçaí, cupuaçu,bananaelaranja.Pequenospomares são também encontrados nos demais Estados da Amazônia, porém sem expressão econômica. Na Bahia, a maior concentração de mangostanzeiros localiza se no município de Una, em uma área de aproximadamente 80 hectares, sendo cerca de 20 ha distribuídos entre outros municípios do sul da Bahia (Taperoá, Ituberá, Uruçuca, Nilo Peçanha e Tancredo Neves).

No Espírito Santo, estima se uma área de 10 ha nos municípios de Linhares e Castelo, com poucas plantas em estádio de produção. Em São Paulo, no município de Cardoso,

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foram plantados, em 1995, mais de 10 ha de mangostanzeiros enxertados. Vários agricultores nipo brasileiros da zona Bragantina têm plantações modestas de mangostão jovens, que foram plantadas no final da década de 1980. O mangostão está encontrando um mercado pronto em shoppings da moda em São Paulo (SMITH et al., 1995).

Distribuição Geográfica Mundial

Presume se que o mangostão tenha se originado no sudeste da Ásia, possivelmente na região da Indonésia, e era conhecido no mundo ocidental já em 1631. As árvores são encontradas crescendo na natureza em uma ampla variedade de tipos de solo e locais. O estabelecimento em uma escala relativamente ampla seguiu o aumento de assentamentos humanos durante os primeiros dias da expansão populacional no Sudeste Asiático. Mais tarde, os primeiros viajantes europeus, exploradores ou colecionadores de plantas, como Mjobery (sueco), Fairchild (inglês), Laurent Garcin (francês) e Popenoe (americano) registraram descrições dessa fruta em seus diários e escritos.

A partir do cultivo de mangostão no sudeste da Ásia e em Mianmar, foi introduzido no Sri Lanka por volta de 1800 e que prospera em regiões úmidas até 600 m acima do nível do mar (MACMILLAN, 1935). Foi cultivado pela primeira vez na Índia durante o século XVIII e entre 1880 e 1890, onde as plantações foram feitas nas estações Kallar e Buliar no estado de Madras (KRISHNAMURTHI et al., 1964). Agora é visto principalmente nas encostas mais baixas das colinas Nilgiri entre 360 e 1 060 m de altura acima do nível do mar e perto de Courtallam.

O mangostão foi introduzido nas Índias Ocidentais antes de 1955 e a semente foi distribuída através do Royal Botanic Gardens em Kew, Reino Unido (POPENOE, 1928).

Esses materiais também foram introduzidos no Brasil na mesma época. Fora do Sudeste Asiático, o cultivo foi maior nas Índias Ocidentais.

A introdução na África tropical não resultou em produção significativa, por exemplo, no Gabão, Gana, Libéria e Tanzânia (Zanzibar). Em 1901, foram feitas plantações na República Malgaxe, Madagascar (MOREUIL, 1971). Outras introduções levaram à produção em pequena escala na Flórida e Havaí (USA), Honduras, Cuba, Dominica, Guatemala, Jamaica e Panamá (Figura 7).

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Figura 7. Distribuição mundial da espécie Garcinia mangostana (nativas e exóticas). Foto: Hosakatte Niranjana Murthy et al. (2022).

Embora o mangostão tenha sido introduzido no Sul de Queensland e Nova Gales do Sul, na Austrália, já em 1854, entretanto, não há registro de que essas plântulas tenham produzido frutos. Mais tarde, outras introduções foram feitas da Indonésia e provavelmente bem sucedidas (STEPHENS, 1935).

BOTÂNICA, MORFOLOGIA E FISIOLÓGICA DO MANGOSTÃO

Aspecto botânico

O mangostão (Garcinia mangostana L.) recebeu o nome do explorador francês Laurent Garcin (1683 1751)eé cultivadohábastantetempoem várias partes dos trópicosúmidos. No entanto, como muitas outras frutas tropicais secundárias, foi referido em várias publicações do século XIX como sendo uma árvore frutífera tropical de interesse principalmente botânico. Em outras palavras, o gênero foi nomeado por Linnaeus para Laurent Garcin (1683 1757), um botânico suíço da Companhia das Índias Holandesas, que publicou a primeira descrição do mangostão (BOURDEAUT; MOREUIL, 1970; CORNER, 1988), enquanto o epíteto específico ¨mangostana” é a forma latinizada, da palavra malaia ¨manggistan¨, que é a denominação comum, de uso mais generalizado, em seu centro de origem, o arquipélago malaio.

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O mangostão, Garcinia mangostana L., anteriormente conhecido como Mangostana garcinia Gaertner, pertence à família Guttiferae (Clusiaceae) que inclui cerca de 36 gêneros e mais de 800 espécies nos trópicos de ambos os hemisférios, com um gênero atingindo as regiões temperadas (JOLY, 1993). Destes, cerca de 9 gêneros incluem 86 espécies de árvores frutíferas. Indubitavelmente, dentro dessa família, a espécie mais importante do ponto de vista econômico é o mangostanzeiro. Garcinia pode ser considerado um gênero tipo dentro desta família que também inclui Mammea, um gênero de alguma importância econômica que é representado por M. americana L (abricoteiro).

Pertencente à família Clusiaceae (Guttiferae) (MATRA et al., 2016; NAZRE et al., 2018) e originário da Ásia, o mangostão era de disseminação bastante restrita, mas depois foi amplamente cultivado por sua fruta de sabor agridoce único (AIZAT et al., 2019; MIDIN et al., 2018), principalmente, nas regiões tropicais da Ásia, Índia, Austrália e em alguns paísesdaAmérica.NoBrasil,foiintroduzidodefinitivamenteporvoltade1935,naBahia, e em 1942, no Pará (SACRAMENTO, 2001).

Posteriormente, o mangostão foi descrito como Mangostana garcinia por Gaetner em 1790, mas a descrição de Linneaus do gênero Garcinia significava que o nome taxonômico válido é Garcinia mangostana L (Figura 8). A Figura 9 ilustra um ramo com folhas, flores e frutos do mangostão.

Figura8.Classificaçãosistemática(Taxonomia)domangosteiro,segundoaclassificação de Cronquist (1981) e USDA (2014).

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Figura 9. Flores, frutas (imatura, madura de cor roxo escura e fruta cortada transversalmente) e ramagem selecionadas da ilha de Java. Fonte: Pintado da natureza por Madame Berthe Hoola Van Nooten (1817 1892); Pieter De Pannemaeker (litógrafo). Livro dedicado a Sua Majestade a Rainha da Holanda. Publicado em 1863 por Emile Tarlier, Bruxelas, Bélgica.

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O mangostão é conhecido como mangostanier em francês, mangostán em espanhol, mangosteen em inglês e mangostane em alemão, sem considerar uma variedade de nomes vernaculares na Malásia e na Indonésia, tais como: manggis, masta, mesta, mestor, semontah e semetah. O nome mangkhut é geralmente aplicado na Tailândia, cay mang cut no Vietnã, mongkhut em Kampuchea e mangostan nas Filipinas. Na Índia, a fruta é chamada de mangostin.

Aspecto morfológico

Planta O mangostão é uma pequena árvore perene que cresce até 25 m, ereta, casca marrom escura com látex (Figura 10a). Mangostanzeiros remanescentes da introdução efetuada por Felisberto Camargo e que presentemente contam com 69 anos de idade, apresentam altura entre 6 e 10 m e diâmetro, na altura peito, entre 31,2 e 39,0 cm. Plantas com altura superior a 15 m são comuns quando estabelecidas em associação com espécies de porte maior, em que a competição por luz induz o crescimento excessivo em altura (CARVALHO, 2014). Quando cultivado em pleno sol, a planta apresenta comumente altura entre 8 e 10 m e diâmetro do tronco, na altura do peito, entre 25 e 35 cm. A copa é de formato piramidal, constituída por ramos opostos, que emergem do tronco em ângulo aproximado de 30 °, com folhagem densa (SACRAMENTO et al., 2009), conferindo à planta excelente efeito estético. As folhas são opostas, pecíolos curtos, formas ovais oblongas, coriáceas e grossas, verde escuras na face superior e verde amareladas na face inferior, 9 25 cm de comprimento e 5 10 cm de largura, com nervura central evidente (Figura 10b). As flores, masculinas ou hermafroditas na mesma árvore, são carnudas. Quatro sépalas de cor verde, 4 pétalas verdes com manchas vermelhas. Vários estames são férteis ou estéreis. Fruto do tipo baga, de forma subglobosa, cálice persistente na extremidade do pedúnculo e remanescentes achatados do estigma em roseta no ápice (Figura 10c), de cor roxo escuro a vermelho, liso externamente, 4 8 cm em diâmetro. A casca com 6 a 10 mm de espessura, vermelha na seção transversal, branco arroxeado por dentro (Figura 10d) com arilos carnosos brancos, suculentos e macios. Os frutos têm 0 5 sementes que são ovoides oblongas, um pouco achatadas, com 2,5 cm de comprimento e 1,5 cm de largura (LIM, 2012).

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Raiz O sistema radicular do mangostão é frágil, de crescimento lento e bastante emaranhado. O transplante de plântulas deve ser realizado com cuidado, tomando se o cuidado para não danificar a raiz principal longa que tem muito poucas raízes laterais. Os pelos radiculares parecem estar ausentes tanto nas raízes principais quanto nas laterais.

Bourdeaut e Moreuil (1970) descreveram o desenvolvimento do sistema radicular de mangostões cultivados na Costa do Marfim e observaram que, em árvores de 3 8 m de altura e com uma extensão de copa de 2 5 m, a porção principal do sistema radicular se desenvolveu em uma profundidade do solo de apenas 5 30 cm; a raiz mais longa não se estendia a mais de 1 m da base do tronco. Ou seja, o sistema radicular do mangostanzeiro é originado da raiz adventícia, com raiz pivotante, e as raízes laterais são distribuídas de forma semelhante à parte aérea, com raízes grossas e finas, mas com poucas radicelas. (Figura 11)

Figura 10. Garcinia mangostana: a) Planta de mangostão; b) Ramo com folhas; c) Fruta imatura; d) Corte transversal do fruto maduro. Foto: Murthy, H. N. et al. (2018).
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Caule O mangostão (Garcinia mangostana L.) é uma árvore perene de pequena ou média altura, variando de 6 25 metros, com um tronco reto, ramificado simetricamente para formar uma copa cônica (Figura 12). Essa árvore possui madeira dura variada e produze um látex gomoso abundante. Ou seja, o cerne do seu tronco é marrom escuro e denso, grosseiro e muito forte, podendo sua madeira ser utilizada em carpintaria (VERHEIJ, 1992). Tal espécie é principalmente de árvores de sub bosque de florestas perenes de planície.

Figura 11.Distribuição das raízes domangostanzeiro.Foto: Célio Kersul doSacramento. Figura 12. Raiz e caule da árvore de mongostão. Foto: Deamstime.com
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Ramos Árvores ou arbustos perenes com um tronco reto afilando para um dossel cônico, onde seus ramos em pares alternados no tronco em ângulo agudo, tornando se posteriormente horizontais ou caídos (Figura 13); muito ocasionalmente os ramos são modificados para espinhos.

Figura 13. Ramificação simétrica e alternativamente oposta em mangostão. Foto: Yan Diczbalis. Folhas As folhas são simples, inteiras e acuminadas no ápice, ovais, oblongas ou elípticas, ligeiramente pecioladas (1,5 2 cm de comprimento) que prendem bem a parte aérea, opostas ou quase, ou em espirais de 3; e o par apical de folíolos esconde o botão terminal. São folhas com 15 25 cm de comprimento e com 4,5 13 cm de largura, brilhantes, espessas e coriáceas, verde escuro, raramente verde amarelo, glabras na face superior, verde pálido opaco ou verde amarelo na face inferior. Estas folhas apresentam muitas vezes com células glandulares e resinosas; estipulas 0 e ocasionalmente minúsculas (RIDLEY, 1967; WHITMORE, 1973). Eles são verde oliva na face superior e verde amarelo na face inferior com uma nervura central verde pálido que é proeminente em ambos os lados; há também muitas nervuras laterais igualmente espaçados, paralelas e proeminentes, em ângulo reto com o eixo principal (VERHEIJ, 1991; Figura 14).

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Figura 14. Nervuras laterais espaçadas, folhas opostas e fruto na axila da folha do mangostão. Fonte: R. Wise.

Acredita se que as folhas maduras sobrevivam por vários anos, com novas folhas se desenvolvendo na maioria dos ramos, resultantes de novos fluxos que ocorrem uma ou duas vezes por ano. As folhas jovens têm uma coloração rosa que muda para verde claro, mas essa cor dura apenas um período muito curto e logo adquirem a cor verde escura característica das folhas maduras (YAACOB; TINDALL, 1995; Figura 15).

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Figura 15. Distintas colorações das folhas de mangostão: inicialmente rosa que muda para verde claro e, quando maduras, verde escura. Fotos: Klima Naturali e popscreen.com. Crescimento vegetativo O mangostão tem uma fase juvenil extraordinariamente longa e as plantas cultivadas a partir de sementes normalmente não começam a frutificar até 10 a 12 anos após o estabelecimento no campo. No entanto, sob manejo cultural ideal, o período juvenil pode ser reduzido para 8 a 10 anos. Na Tailândia, foi relatado que o mangostão leva apenas 5 a 6 anos para atingir sua fase produtiva, mas isso aparentemente está associado a um período prolongado no viveiro que pode se estender de 3 a 5 anos; presume se que a fase juvenil termina quando a planta produz 16 pares de rebentos laterais.

Na Indonésia, existe uma situação similar, mas, como os solos de Java e Sumatra são de origem vulcânica e extremamente férteis, pode se esperar uma taxa de crescimento relativamente rápida (SUNARYONO, 1987). O longo período juvenil é provavelmente devido a vários fatores, notadamente a lenta taxa de crescimento das plântulas em desenvolvimento. Ao contrário das mudas da maioria das outras árvores frutíferas, o mangostão tem um sistema radicular frágil e sem pelos radiculares (HUME, 1950).

Observações feitas sobre o crescimento do mangostão no norte da Austrália mostraram que o crescimento vegetativo geralmente ocorre principalmente como resultado de fluxos intermitentes, a frequência dos fluxos dependendo da idade da planta. As árvores jovens podem produzir 6 fluxos por ano, tendo árvores apenas 1 ou 2. Sob condições controladas

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de crescimento, os fluxos ocorreram em intervalos de 40 45 dias durante os primeiros 18 meses de crescimento das plantas juvenis (DOWNTON et al., 1990). Entre os fluxos, a gema terminal parece ficar dormente (HUME, 1947) e tem sido sugerido que qualquer tratamento que possa acelerar a quebra dessa dormência da gema pode aumentar a taxa de crescimento. Wiebel et al. (1992) descobriram que o tratamento da gema com ácido giberélico (GA3), particularmente em árvores jovens de 1 3 anos, foi eficaz; as citocininas foram eficazes apenas em plântulas muito jovens e as auxinas foram geralmente ineficazes.

É importante destacar que o mangostão é adaptado como uma cultura de sub bosque em condições de floresta tropical e as árvores jovens expostas à luz solar direta ficam atrofiadas, com queima das folhas e redução na eficiência da descarga. As plantas com dois anos de idade foram observadas crescendo bem sob 50% de sombra (WIEBEL et al., 1992). Downton et al. (1990) postularam que altas intensidades de luz afetavam a eficácia da fotossíntese e a produção e movimento de assimilados. Isso também foi relacionado ao baixo número de estômatos, que ocorrem apenas na superfície inferior da folha e à limitada capacidade de troca gasosa de C02 das folhas. Também o desempenho do pomar no Norte da Austrália também está sendo usado para avaliar as melhores práticas agronômicas necessárias para tornar a cultura comercialmente viável (WIEBEL et al., 1992).

Verificou se que o aumento do nível de C02 em ambientes controlados produziu um aumento no peso seco 77% superior ao das plantas cultivadas em concentrações ambientais de C02. Outros estudos pretendem fornecer uma solução para o crescimento normalmente fraco de mudas de mangostão (WIEBEL et al., 1992). Pesquisas na Malásia sobre a resposta fotossintética de mudas de mangostão a níveis crescentes de dióxido de carbono, também os efeitos do sombreamento e do alagamento no mangostão, também foram realizadas por Ramlan et al. (1992).

Floração O mangostanzeiro apresenta tendência de florescimento em anos alternados, e a frutificação varia de planta para planta. As plantas florescem após o crescimento de fluxos vegetativos e principalmente após um período de estiagem. A época de florescimento pode ser concentrada em um ou mais períodos durante o ano, dependendo das condições climáticas, manejo e do número de fluxos vegetativos. O período entre a iniciação floral e a antese é de 25 dias e da antese até o fruto maduro 100 a 120 dias (YAACOB; TINDALL, 1995).

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No Pará, em particular na microrregião Belém, onde se concentram os principais pomares de mangostanzeiros, quando a precipitação é normal, ocorre uma pequena floração, geralmente, no período de junho a agosto, e que é responsável pela pequena safra verificada entre outubro e dezembro. A safra principal ocorre entre janeiro e maio, e é resultante da floração que ocorre entre setembro a janeiro. Resultados referentes a dez safras consecutivas evidenciaram que, aproximadamente, 80% da produção de mangostão, na microrregião Belém, se verifica no período de janeiro a junho. A "safrinha", que ocorre no segundo semestre, é responsável por 20% da produção (SACRAMENTO et al., 2007; Figura 16).

Figura 16. Distribuição percentual da produção de frutos de mangostão durante o ano, na microrregião de Belém, PA. Fonte: Sacramento et al. (2007)

Flores Flores geralmente masculinas ou femininas em árvores separadas, mas ocasionalmente bissexuais (e, se assim for, geralmente apenas fisiologicamente femininas). As árvores masculinas são relatadas por carregar grupos de 8 9 flores pequenas nas pontas dos ramos, mas este tipo de árvore é raro ou inexistente e é provável que esses relatos tenham resultado de uma identificação errônea da espécie; Garcinia malaccensis é muito semelhante a Garcinia mangostana (RICHARDS, 1990). Portanto, trata se de uma planta que difere de muitas outras árvores tropicais pelo fato de os frutos se reproduzirem por partenogênese, ou seja, são produzidos sem fecundação. As flores são carregadas em tufos ou isoladas nas axilas das folhas, mas raramente terminais; a

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menos que solitárias, ou seja, as flores femininas são solitárias, pareadas ou raramente 3 nos ápices dos ramos; pedicelos com 1,75 2 cm de comprimento e espessura.

As flores femininas têm 5 a 6 cm de diâmetro e têm quatro sépalas e quatro pétalas que nascem em pedicelos curtos e grossos (Figura 17). Parece haver diferentes relatos de estrutura floral na literatura e a situação exata em relação à estrutura floral precisa ser esclarecida. As seguintes descrições são consideradas atualmente aceitáveis e são baseadas naquelas fornecidas por IBPGR (1986) e Verheij (1991).

Figura 17. Frutas e flores femininas em ramo do mangostão (Garcinia mangostana L.)

Fonte: Verheij, 1992.

As 4 sépalas são grandes, persistentes e bisseriadas (em 2 pares). No botão, as 2 sépalas internas são inteiramente envolvidas pelo par externo, que tem 2 cm de comprimento, e são menores e bordeadas de vermelho. As 2 sépalas externas, com 2 cm de comprimento, são verde amareladas, côncavas e obtusas; as 2 sépalas internas são mais curtas e de cor rosa. As 4 pétalas são amplamente ovadas, obtusas, espessas, carnudas, verde amareladas e são orladas de vermelho ou são quase inteiramente vermelhas; elas são de 2,5 cm de largura x 3,0 cm de comprimento. Os estaminódios, que são numerosos, estão mais ou menos dispostos em grupos de 1 a 3 em 1 2 séries, formando um anel ao redor da base do ovário. São livres ou conatos curtos na base, com 0,5 cm de comprimento e anteras pequenas e estéreis (Figura 18). As flores femininas com grande ovário hipogínico

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(súpero) montado em receptáculo de formas variadas e é amplamente elipsoide a globoso, séssil e com 4 8 lóculos (RIDLEY, 1967; WHITMORE, 1973). O estigma proeminente e espesso é séssil, com número de lóbulos igual ao número de lóculos do ovário. As flores são de curta duração; elas abrem no final da tarde e as pétalas caem logo depois.

Fruto O fruto normalmente partenocárpico é uma baga subglobular ou globosa deprimida, indeiscente, achatada na base onde é subtendida pelo cálice carnoso persistente (Figura 19) e pelos lóbulos do estigma; os restos dos lóbulos do estigma são evidentes no ponto terminal do fruto. Os frutos são esféricos ou levemente achatados e são relativamente pequenos, variando de 3,5 a 8,0 cm de diâmetro transversal e 3,6 a 6,5 cm de altura. Os pesos dos frutos variam de 75 150 g, dependendo da idade da árvore e sua localização geográfica (YAACOB; TINDALL, 1995).

Figura18.Flordomangostanzeiromostrandodetalhedosestamesatrofiados.Foto:Célio Kersul do Sacramento. Figura 19. Frutos de mangostão, destacando na sua parte superior o cálice carnoso persistente.
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O pericarpo, casca ou casca da fruta é lisa, de espessura entre 0,5 a 1,0 cm, dura, violeta púrpura ou marrom púrpura profunda externamente e violeta púrpura por dentro, o qual contémumlátexresinosoamarelo eamargo(RIDLEY,1967;WHITMORE, 1973;Figura 20). Quando os frutos jovens são feridos, gotas amarelas desse látex são exsudadas. A casca madura e resistente forma uma excelente proteção para a polpa macia e comestível e facilita a embalagem e o transporte.

Figura 20. Diagrama de uma fruta de mangostão. Foto: Osman e Milan (2006).

A casca envolve a polpa comestível ou arilo que consiste em 4 a 8 segmentos brancos ou marfim, alguns dos quais contêm uma semente desenvolvida ou não desenvolvida, embora os frutos raramente tenham mais de 2, raramente 3 sementes desenvolvidas. A polpa normalmente constitui 31% do fruto inteiro (Figuras 21 e 22). Os segmentos são geralmentedesiguais em tamanhoegeralmentesão1ou2segmentos maiores quecontêm as sementes. O arilo, que se separa facilmente do pericarpo, é suculento, subácido, de sabor requintado e levemente aromático. As sementes grandes, achatadas, roxas escuras ou marrons são envoltas por fibras fracas que se estendem até o arilo (YAACOB; TINDALL, 1995).

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Figura 21. Partes do fruto do mangostão (Garcinia mangostana L.). Foto: link.springer.com

Figura22.Destaquedo mangostão:Foto1:A)Frutos;B)Frutocortadotransversalmente, mostrando o pericarpo e arilo; C) Sementes cobertas pelo arilo. Foto 2: Frutos jovens de mangostão mostrando os lóbulos do estame (Beaufort, Sabah).

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Semente Cada fruto do mangostão pesa aproximadamente 55 150 g. O número de sementesporfrutovariadezeroatrês,sendo,mais frequentementesãoencontradosfrutos com 1 semente. Trata se de uma semente grande, onde o seu peso varia entre 0,31 g e 1,8 g, com média de 0,87 g. As sementes são formadas a partir de tecido nucelar dos frutos por agamospermia e são, de fato, produzidas clonalmente por serem apomíticos (SAMSON, 1986). Além disso, o seu embrião é uma massa sólida representando o hipocótilo, mas os cotilédones evidentemente estão ausentes. Quando o fruto está completamentemaduro, o teordeáguadas sementes ainda ébastante elevado,geralmente entre 57,7% e 67,4%.

Quando limpas, as sementes parecem ser um pouco em forma de rim e bifurcadas; às vezes se assemelham a duas sementes combinadas em uma (Figura 23). Uma cicatriz que indica o ponto de fixação do arilo à semente é vista na superfície da mesma; isso se espalha em uma rede de linhas distintas através da semente. As sementes de cor marrom apresentam comprimento entre 1,7 cm e 2,5 cm (ENOCH, 1980) e largura de 1,5 2,0 cm e cerca de 0,7 1,2 cm de espessura.

Figura 23. Fruto de mangostão (A), casca ou pericarpo (B), polpa ou arilo (C) e semente (D). Foto: Panupon Khumsupan e Wandee Gritsanapan (2014).

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Aspecto fisiológico

Germinação A prática mais conhecida e mais comum para a propagação do mangostão é através da semente. Estritamente definidos, elas não são sementes verdadeiras (embriões sexuais), mas são embriões adventícios (embriões assexuados), uma vez que não há fertilização sexual envolvida. Como as sementes são formadas a partir de tecido nucelar (origem assexuada), produzem mudas idênticas à planta mãe; elas são apomíticas e se reproduzem fielmente ao tipo (GALANG, 1955; CAMPBELL, 1967). Pode haver pouca variação nas mudas resultantes e, posteriormente, nos frutos produzidos.

Existe uma ampla gama de pesos de sementes, de cerca de 0,5 g a 2,0 g por semente.

Aquelas que são maduras estão geralmente na faixa de peso de 1,0 2,0 g. Sabe se que a poliembrionia ocorre no mangostão dando origem a até três plântulas por semente. O fenômeno é relatado po ocorrer em até 11% do mangostão (WESTER, 1920, 1926).

Lim (1984) examinou a embriologia de sementes de mangostão e observou o desenvolvimento do endosperma a partir do núcleo primário do endosperma, sem fertilizaçãoetambémodesenvolvimentotardiodeproembriõesadventíciosdotegumento externo. A forma do proembrião maduro é subcilíndrica e tuberoide sem qualquer polaridade clara e isso foi interpretado por Sprecher (1919) como um tubérculo hipocótilo.

A germinação de sementes de mangostão é considerada bastante singular em comparação com sementes de outras espécies de culturas (VOGEL, 1980). Durante a germinação, o inchaço ocorre em extremidades opostas da semente, e um radical (raiz) e uma plúmula (rebento) emergem dessas extremidades opostas. A radícula morre quando as raízes adventícias se desenvolvem a partir da base da plúmula (HUME; COBIN, 1946; CHANDLER, 1958). A germinação geralmente ocorre em 14 21 dias, mas isso varia de 10 a 54 dias, dependendo da idade da semente e do meio de cultivo. As sementes da mesma planta geralmente variam muito no tempo de germinação em diferentes anos e estações.

Quando semeadas logo após serem extraídas dos frutos, ocasião em que o teor de água é superior a 60,0%, a emergência das plântulas inicia se 11 dias após a semeadura e estabiliza seporvoltadotrigésimoterceirodia,comporcentagemdeemergênciapróxima a 100%. Como as sementes apresentam comportamento recalcitrante no armazenamento, é importante que sejam mantidas com elevado status de água, para que não haja

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comprometimento da capacidade de germinação (Figura 24). Convém ressaltar, também, que, para a obtenção de elevadas porcentagens de germinação, é importante realizar uma criteriosa seleção das sementes, descartando as que apresentam massa igual ou inferior a 0,6 g (HUME; COBIN, 1946). Normalmente, sementes grandes (> 1g de peso) roliças e totalmente desenvolvidas são escolhidas para o plantio. Vários estudos relataram que sementes grandes estão associadas a maior viabilidade e maiores taxas de sobrevivência (WESTER, 1916; HORN, 1940a; HUME; COBIN, 1946).

Figura 24. Porcentagem de germinação de sementes de mangostão em função do teor de água e do tempo Fonte: Carvalho (2014).

As técnicas de manejo de sementes são importantes devido à curta vida das sementes. Qualquer secagem pode reduzir drasticamente a germinação e as sementes geralmente perdem a viabilidade em 3 5 dias quando removidas do fruto. Quando mantida no fruto, a viabilidade pode ser mantida por 3 5 semanas (CHANDLER, 1958), mas a germinação resultante pode ser mais lenta (WINTERS; RODRIGUEZ COLON, 1953).

As sementes frescas são cobertas por uma membrana muito fina, que é a única proteção contra a dessecação. As sementes podem ser armazenadas temporariamente em carvão úmido, turfa ou fibra de coco (GONZALEZ; ANOOS, 1951; WINTERS; RODRIQUEZ COLON, 1953). Em latas lacradas com carvão umedecido, as sementes sobrevivem por 3 5 semanas (CHANDLER, 1958).

A estratificação das sementes em substrato umedecido com água constitui se em bom procedimento para assegurar altas porcentagens de germinação (SACRAMENTO et al.,

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2007). Convém ressaltar, porém, que o período de estratificação não deve ultrapassar a dez dias, pois as sementes germinam dentro do substrato de estratificação. Portanto, o tipo de armazenamento temporário e o tempo após a extração do fruto afetam marcadamente a germinação (Figura 25).

Figura 25.Taxas degerminação(%)de sementes demangostãoregistradas em diferentes tempos de armazenamento. Fonte: Gonzalez e Anoos (1951)

Antes da semeadura, as sementes são normalmente pré germinadas. As sementes frescas são embebidas por 12 horas para facilitar a remoção da testa. A remoção manual da testa é delicada, mas é feita para aumentar a porcentagem de germinação. A retirada da testa também ajuda a produzir plântulas mais uniformes. As sementes devem ser semeadas em meio de drenagem livre, preferencialmente sob alta umidade, e o canteiro deve ser devidamente sombreado antes da emergência das plântulas.

As sementes geralmente são semeadas diretamente em polybags ou bandejas (HAVARD DUCLOS, 1950; Figura 26). Vários meios podem ser usados, incluindo solo rico em matéria orgânica (HUME, 1947), ou uma mistura de turfa areia (1:1) ou uma mistura de

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solo areia (1:3). Outros meios com alta retenção de umidade incluem fibras de coco trituradas. Se desejado, o meio de cultura pode ser esterilizado, mas isso geralmente não é praticado.

As sementes de mangostão, que antes foram limpas da polpa, são plantadas em areia estéril, depois de 7 dias aparecem os botões vermelhos escuros. Ou seja, os padrões de germinação foram observados a partir da idade de 7 dias após o plantio, 10 dias após o plantio, 12 dias após o plantio, 15 dias após o plantio, 25 dias após o plantio, 27 dias após o plantio, 30 dias após o plantio, 35 dias após o plantio, 45 dias após o plantio e 50 dias após o plantio. As alterações no crescimento do mangostão foram caracterizadas pelo aparecimento de gemas vermelho escuras na idade de 7 dias após o plantio, logo o comprimento das brotações ocorreu na idade de 15 dias após o plantio. Após a perfeita abertura das folhas do mangostão, houve aumento do tamanho na idade de 35 dias após

Figura 26. Padrão de germinação da semente de mangostão de 7 a 50 dias após o plantio em substrato de areia esterilizada. DAP (Dia Após o Plantio). Fonte: Dede Suhendra e Novilda Elizabeth Mustamu (2018).
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o plantio e do comprimento do caule, em seguida o aumento do número de folhas e mudança na coloração das folhas de vermelho para verde na idade de 45 50 DAP (SUHENDRA; MUSTAMU, 2018).

Por outro lado, ao lidar com um grande número de sementes, a semeadura é geralmente em canteiro. Um canteiro típico pode ser feito de madeira ou cimento, e o meio de semeadura utilizado pode consistir em uma mistura de areia e solo na proporção de 3:1 em volume. O meio de semeadura deve ser profundo, até 1 m de profundidade. O meio precisa reter a umidade, mas bem drenado.

As sementes são plantadas com 5 10 mm de profundidade e espaçadas de 2 3 cm, se semeadas em canteiro e cobertas com areia. Elas são normalmente colocadas individualmente no lado plano na posição horizontal. Geralmente, foi relatado que a germinação ocorre em 2 3 semanas e está completa em cerca de 6 semanas. No entanto, as sementes podem ser semeadas em qualquer posição, pois a germinação ainda ocorre quando as sementes são colocadas de lado ou mesmo de cabeça para baixo. Sob tais condições, as sementes germinarão em cerca de 20 30 dias após a semeadura (PADOLINA, 1931; GONZALEZ; ANOOS, 1951; ALMEYDA; MARTIN, 1978). Em comparação,assementes quesãosemeadassem aremoçãodatestarequerem4 5semanas antes de germinarem, e as plântulas derivadas dessas sementes normalmente não são uniformes.Apósaemergência,asplântulasdevem serregadas regularmente.Asplântulas apresentam um crescimento muito lento

O processo germinativo das sementes de mangostão, assim como o de outras espécies do gênero Garcinia, é bem peculiar. Inicialmente, ocorre a emergência de delgada raiz primária de origem embrionária, no polo oposto onde se originará o caule da planta. A emergência dessa raiz é rápida, visualizando se seus primórdios entre cinco e sete dias após a semeadura. Posteriormente, por ocasião da emergência do caule, ocorre a formação, em sua base, de vigorosa raiz adventícia, com poucas raízes secundárias e geralmente de tamanho insignificante, que se constituirá no sistema radicular definitivo da planta (Figura 27), haja vista que a raiz de origem embrionária cresce apenas cerca de 5 a 7 cm e depois fenece (CARVALHO, 2014).

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Figura 27. Plântula de mangostanzeiro evidenciando, à esquerda, a raiz primária de origem embrionária e, à direita, a raiz adventícia. Foto: José Edmar Urano de Carvalho, 2014.

PROPAGAÇÃO

O método mais comum de propagação do mangostanzeiro é por via seminífera, embora possa também ser propagado por enxertia, especialmente pelo método de garfagem no topo, em fenda cheia, e por cultura de tecidos (MÜLLER et al., 1995; GOH et al., 1988).

No caso da propagação por enxertia, a semente constitui se em elemento essencial, pois o porta enxerto é o próprio mangostanzeiro obtido a partir de sementes. Presentemente, não há produção comercial de mudas propagadas por cultura de tecidos.

A propagação por sementes constitui se em método simples e, ao contrário do observado na maioria das espécies frutíferas tropicais, não condiciona variações entre plantas, pois as sementes são apomíticas. Não obstante o fato de o embrião ser formado sem envolvimento de processo sexual, originando se a partir de células da nucela, tem sido constatado, nos últimos anos, por meio de marcadores moleculares, a existência de variabilidade genética no mangostanzeiro, o que rejeita a hipótese de que todas as árvores dessa espécie são oriundas de um só clone (RAMAGE et al., 2004).

As principais desvantagens da propagação por sementes são: o tempo requerido para a formação das mudas, geralmente em torno de dois anos, e, principalmente, a longa fase

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jovem das plantas, o que implica primeira produção de frutos, geralmente, oito anos após o plantio no local definitivo. Há casos, embora raros, de plantas oriundas de sementes iniciarem a produção de frutos seis anos após o plantio.

FENOLOGIA

A fenologia de uma planta compreende eventos periódicos ligados aos seus estágios específicos de desenvolvimento, e essas fenofases auxiliam na compreensão da relação entre o desenvolvimento da planta e as condições ambientais e sua correlação com a morfologia da planta. De fato, o momento da mudança que inaugura cada fenofase é comercialmente importante porque as fenofases têm um impacto direto no sucesso reprodutivo (KUSHWAHA; SINGH, 2008). As informações sobre a mudança também são úteis para descobrir as causas da variação entre as fases vegetativa e reprodutiva devido a fatores meteorológicos; temperatura e precipitação, em particular, têm recebido ultimamente bastante atenção (RAJAN et al., 2011).

Uma escala de dois dígitos Biologische Bundesantalt, Bundessortenamt und Chemische Industrie (escala BBCH) é usada para descrever os estágios vegetativo e reprodutivo das plantas. A escala BBCH primária descreve os estágios principais e secundários que constituem o ciclo de desenvolvimento das plantas, enquanto a escala BBCH estendida, representada por três dígitos, fornece mais detalhes das fenofases levando em consideração também os mesoestágios, numerados de 0 a n, que são incorporados entre os estágios primário e secundário (HACK et al., 1992). Os estágios primário e secundário são subdivididos em 10 estágios de crescimento fonológico claramente reconhecíveis e distinguíveis. As escalas BBCH básicas e estendidas são amplamente aceitas para codificar uniformemente os estágios de crescimento fenológico de muitas espécies de frutas, incluindo do mangostão.

A Figura 28 mostra os estágios de crescimento identificados no estudo realizado na Índia e sua duração e ocorrência (especialmente à luz dos graus dia de crescimento acumulados) são apresentadas nas Tabelas 1 e 2. Um mesoestágio foi descrito em cada estágio de crescimento principal com base no comportamento de crescimento e no número de descargas durante o ano. Essas etapas primárias são elaboradas a seguir.

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Figura 28. Ilustração dos principais estágios de crescimento fenológico do mangostão de acordo com a escala estendida BBCH, Biologische Bundesantalt, Bundessortenamt und Chemische Industrie (escala BBCH). Fotos: Awachare; Upreti (2020).

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Tabela 1. Descrição dos estágios de crescimento fenológico de mangostão (Garcinia mangostana L.) de acordo com a escala estendida Biologische Bundesantalt, Bundessortenamt und Chemische Industrie escala (escala BBCH).

Código BBCH Descrição (mesoestágio 1)

Estágio de crescimento principal 0: DESENVOLVIMENTO DE BROTOS VEGETATIVOS

011

013

017

019

Estágio de crescimento principal 1

Iniciando o inchaço dos botões ou gemas

Final do inchaço do broto

Início do rompimento do broto

Final do rompimento do broto

DESENVOLVIMENTO DA FOLHA

110 Primeiras folhas separadas

113

As primeiras folhas se desdobraram

115 Mais folhas desdobradas

117

Todas as folhas desdobradas e totalmente expandidas

119 Folhas maduras

Estágio de crescimento principal 3:

311

DESENVOLVIMENTO DE REBENTOS

Iniciação do crescimento de rebentos

313 30% do comprimento final do rebento

315 50% do comprimento final do rebento

317 70% do comprimento final do rebento

319 90% do comprimento final do rebento

Estágio de crescimento principal 5:

513

517

519

Estágio de crescimento principal 6:

DESENVOLVIMENTO REPRODUTIVO

Iniciação reprodutivo do inchaço do botão

Separação de pétalas

Final do desenvolvimento do botão floral

FLORAÇÃO

As primeiras flores abrem 617 Plena floração 619 Fim da floração

610

Estágio de crescimento principal 7:

DESENVOLVIMENTO DO FRUTO

710 Frutificação

711

Crescimento inicial do ovário

712 20% do tamanho final da fruta

713 30% do tamanho final da fruta

715 50% do tamanho final da fruta

718 80% do tamanho final da fruta

719 Tamanho final do fruto

Estágio de crescimento principal 8

MATURIDADE DO FRUTO

Maturidade fisiológica 811

810

Início do amadurecimento 815 Amadurecimento avançado 819 Maturidade de colheita

Fonte: Awachare; Upreti (2020).

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Tabela2.Duraçãoesomatérmica/requisitosdegrausdecrescimento acumulados(GDD) para estágios fenológicos de crescimento do mangostão (Garcinia mangostana L.) cultivado nos pomares experimentais em Chettalli, no estado de Karnataka, Índia, da Estação Experimental de Horticultura Central de Conselho Indiano de Pesquisa Agrícola Instituto Indiano de Pesquisa Hortícola (ICAR IIHR). Código BBCH Estágio de crescimento principal Duração (dias)

011 - 019

110 119

Graus dias de crescimento acumulados (GDD)

Estágio de crescimento principal 0: Desenvolvimento de brotos vegetativos 113 1.060,36

Estágio de crescimento principal 1: Desenvolvimento da folha 119 1.084,8

311 319 Estágio de crescimento principal 3: Desenvolvimento de rebentos 179 1.704,64

513 519

Estágio de crescimento principal 5: Desenvolvimento reprodutivo 89 875,87

610 619 Estágio de crescimento principal 6: Floração 57 450,69

710 719

810 819

Estágio de crescimento principal 7: Desenvolvimento do fruto 94 764,59

Estágio de crescimento principal 8: Maturidade do fruto 121 1,.73,75

Graus dias totais 7.114,7 Fonte: Awachare; Upreti (2020).

O mangostão prospera bem na faixa de temperatura de 22 35 ºC e suporta temperaturas tão altas quanto 37 38 ºC. No entanto, as temperaturas acima de 34 ºC e abaixo de 10 ºC, podem ter efeito adverso na floração e frutificação (APIRATIKORN et al., 2012). No estudo realizado por Awachare e Upreti (2020), as temperaturas máxima e mínima do ar foram de 31,36 ºC e 19,05 ºC, respectivamente, durante os principais estádios de desenvolvimento reprodutivo, floração e desenvolvimento dos frutos com temperatura médiade25,21 ºC (Figura29).Asfenofases, porexemploo desenvolvimentoreprodutivo e a floração sob as encostas orientais de “Western Ghats” ocorrem durante abril junho, no entanto, a floração fora de temporada também foi relatada durante agosto setembro no sul da Tailândia e na Malásia, o que provavelmente seria devido às condições climáticas predominantes/ variabilidade (especialmente temperatura e chuva). Além disso, as outras variáveis, por exemplo a temperatura do solo, radiação solar, estresse hídrico, umidade relativa e condição nutricional também podem ter o efeito (SDOODEE, 2007). Segundo Awachare e Upreti (2020), as temperaturas máxima e mínima de 35,6 ºC e 22,5 ºC, respectivamente, com média de 29,05 ºC (Figura 29) durante o desenvolvimento e

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maturação dos frutos (julho outubro), que estão próximas aos valores apresentados por Boonklong (2005), enquanto estudava o impacto do clima na produção de mangostão.

Figura 29. Progressão sequencial dos estágios fenológicos de crescimento do mangostão (Garcinia mangostana L.) cultivado nos pomares experimentais em Chettalli, no estado de Karnataka, Índia. A barra indica o tempo decorrido em cada estágio; temperatura média (ºC) (2017 2018). Fonte: Awachare e Upreti (2020). Portanto, a fenologia é um aspecto muitas vezes esquecido da ecologia do mangostão, pois os códigos e as descrições dos estágios fonológicos do mangostão como dados na escala estendida Biologische Bundesantalt, Bundessortenamt und Chemische Industrie (a escala BBCH) foram elaborados usando um sistema de notação de três dígitos. Um total de sete estágios primários de crescimento, ou seja, desenvolvimento de gemas ou brotos (Estágio 0), desenvolvimento de folhas (Estágio 1), desenvolvimento de brotos ou rebentos (Estágio 3), desenvolvimento reprodutivo (Estágio 5), floração (Estágio 6), desenvolvimento de frutos (Estágio 7) e maturação dos frutos (Estágio 8), são descritos e ilustrados. A duração de cada estágio de crescimento principal foi medida em dias e quantificada em acúmulo térmico/graus dia crescentes. Explica se a importância dos estádios primários de crescimento para o manejo do pomar e melhoramento das culturas, no monitoramento do crescimento e desenvolvimento das plantas (especialmente à luz

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dos impactos das mudanças climáticas) e na avaliação da produtividade e qualidade dos frutos. Além disso, a escala estendida BBCH será uma ferramenta útil para caracterização de germoplasma, bem como para padronizar as fenofases observadas em diferentes condições ambientais (AWACHARE; UPRETI, 2020).

MELHORAMENTO

A maioria das espécies de Garcinia é apomítica (CORNER, 1988) e o desenvolvimento de frutos e sementes nessas espécies é através da agamospermia, ou seja, produção de sementes sem a fusão de gametas (THOMAS, 1997). O modo de desenvolvimento do embrião e da semente foi estudado apenas em Garcinia mangostana e foi relatado que o desenvolvimento embrionário em mangostão é a partir de tegumentos e não do óvulo (LAN, 1989). Portanto, as espécies de Garcinia são consideradas exclusivamente apomíticas (HORN 1940; RICHARDS 1990a) e as plantas produzidas por semente ou propagação vegetativa são homogêneas e geneticamente idênticas (HORN, 1940). Consequentemente, a variabilidade observada em mangostão, tamarindo Malabar e kokum no campo/selvagem é provavelmente devido à diferença de condições ambientais. No entanto, vários estudos revelaram que uma população de reprodução apomítica nem sempre carrega as mesmas propriedades genéticas, mesmo em apomixes legítimas (ASKER; JERLING, 1992); variabilidade em progênies e populações foi relatada em espécies apomíticas legítimas Taraxacum (FORD; RICHARDS, 1985). Portanto, o melhoramento de espécies de Garcinia mangostana é principalmente a exploração da variabilidade genética existente e o melhoramento dessas espécies é apenas por meio de seleção, em vez de reprodução convencional.

Pesquisas recentes

Melhoramento por mutação. Houve poucas tentativas de aplicar mutações induzidas em mangostão. No entanto, na Indonésia, Rostini et al. (2003) usaram irradiação de raios gama com dosagens de 1 a 3 krad para ampliar a variabilidade genética do mangostão para melhorar as características desejadas do mangostão. Os resultados constataram que mais de 80% das sementes irradiadas com 1 krad e 2 krad apresentaram variações nas taxas de crescimento, altura das plantas, tamanho das folhas, cor das folhas, teor de clorofila, número de raízes laterais e comprimento das raízes.

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Hibridação. Omangostão éauto fértil,masmachoestéril e,como possui muitas espécies relacionadas que são totalmente férteis, a hibridização pode ser possível, especialmente com espécies intimamente relacionadas, como Garcinia hombroniana.

No Vietnã, avanços recentes na cultura de tecidos de mangostão provaram ser úteis no resgate de embriões de hibridização interespecífica (SANDO, 2001). Agora é preciso fazer uma avaliação de quais espécies usar para fazer cruzamentos.

Matrizes de diversidade genética. Como resultado da pesquisa em cultura de tecidos, Te Chato e Lim (2000) analisaram algumas espécies selvagens, bem como o mangostão. As espécies foram chamadas localmente chamuang, mahput, pawa e somkhag.

Com base na citometria de fluxo, pawa mostrou ter o menor conteúdo de DNA. Mahput tem o maior conteúdo de DNA, três vezes maior que o de pawa. Também foi demonstrado, a partir do sequenciamento do DNA genômico usando um primer específico, que o mangostão teve a relação mais próxima com a pawa, seguido por somkhang e mahput.

Existe claramente a necessidade de expandir as análises genéticas utilizando uma grande variedade de técnicas atuais para auxiliar na identificação de genitores masculinos para cruzamento, uma vez que o mangostão é feminino.

VARIEDADES

O mangostão é uma planta apomítica e a propagação é por semente apomítica, onde o embrião e a semente se formam sem fertilização (SOBIR; POERWANTO, 2007). Assim, as árvores de mangostão são essencialmente clonais, o que significa que a descendência é geneticamente idêntica à planta mãe (MANSYAH et al., 2010). Com base nessa suposição, existe apenas uma variedade de mangostão cultivado (HORN, 1940; SOBIR; POERWANTO, 2007; MANSYAH et al., 2010). No entanto, variações distintas nos caracteres morfológicos podem ser observadas na Indonésia e no Sudeste Asiático, onde os mangostões são cultivados.

Estudos anteriores sugeriram que a variação das plantas de mangostão entre as regiões se devia a diferenças nas condições ambientais (HORN, 1940). No entanto, estudos recentes usando marcadores de DNA confirmaram a variabilidade genética entre a população de mangostão e Garcinia spp. (SOBIR; POERWANTO, 2007; SOBIR et al., 2011). Esses

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estudos sugerem que o mangostão não se originou de uma única hibridização de seus pais sexuais ancestrais (Garcinia malaccensis e Garcinia hombioniana) como se pensava anteriormente.OSudeste Asiático,incluindo aIndonésia,éum centrodediversidadepara Garcinia, e isso provavelmente explicaria a variação entre as populações de mangostão (SOBIR et al., 2011).

Mansyah et al. (2010) identificaram onze características morfológicas que podem ser usadas para distinguir variedades de mangostão na Indonésia, sendo elas: forma do dossel ou copa; área foliar; peso do fruto; cor da folha madura; número de flores e frutos por ramo; forma de fruta; forma de base de frutas; forma, tamanho e espessura do lóbulo do estigma; número de segmentos de frutos; comprimento do pedicelo; e espessura da casca.

Existem várias variedades de mangostão identificadas que são cultivadas em regiões específicas da Indonésia: Kaligesing, Wanayasa,Puspahiang,BogorRaya, Ratu Kamang, Ratu Tembilahan, Marel, Lingsar e Malinau (IAQA, 2010). Puspahiang, Wanayasa e Bogor Raya são as três principais variedades de mangostão cultivadas comercialmente na Indonésia. As características morfológicas dessas variedades são apresentadas na Tabela

3. A variedade Kaligesing também é preferida em toda a Indonésia, pois é resistente à broca dos frutos e à murcha de fusarium (IAQA, 2011).

Tabela 3. Características das variedades comuns de mangostão na Indonésia.

Característica

Variedades

Puspahiang Wanayasa Bogor Raya Forma da fruta Oval Redondo Redondo esférico Tamanho do fruto Altura: 41 61 mm Diâmetro: 44 64 mm

Altura: 30 451 mm Diâmetro: 45 55 mm

Altura: 30 451 mm Diâmetro: 45 50 mm

Cor da casca Violeta escuro Violeta vermelho Violeta vermelho Espessura da casca Média 3 5 mm 6 9 mm

Cor do mesocarpo

Branco Branco leite Branco neve Textura do mesocarpo Macio Macio Macio não fibroso Sabor do mesocarpo Doce fresco Doce fresco Ácido doce Teor de açúcar

15,0 °Bx 17,75 °Bx 18,65 °Bx Peso do fruto 50 131 g 90 110 g 75 94 g

Região de cultivo Comarca de Tasikmalaya Comarca de Purwakarta

Comarcas de Bogor e Sukabumi Época de colheita Setembro a abril Dezembro a abril Outubro a fevereiro Fonte: IAQA, 2010.

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Com base na Figura 30, pode se observar que as diferenças no caráter da planta de mangostão são o formato da coroa (pirâmide, redonda, oblonga e alongada), formato oval da folha, ponta da folha (aguda ou afunilada e obtusa), base da folha (obtusa e aguda ou afunilada), tamanho da flor (grande, médio e pequeno), formato do fruto (redondo mais acentuado e redondo achatado), cor do fruto (branco cremoso e branco neve) e formato da semente (elipse, oval, longa e forma irregular) (SYAHPUTRA et al., 2021).

Figura 30. As diferenças nas características morfológicas de árvores de mangostão, folhas, flores, frutos e sementes no distrito de Langkat, norte de Sumatra. Fotos: Syahputra et al. (2021).

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COMPOSIÇÃO QUÍMICA DO FRUTO

ARILO. A qualidade do fruto do mangostão é afetada por diferenças nas condições climáticas (POPENOE, 1928). A análise química do arilo maduro, considerada a porção comestível, é fornecida na Tabela 4. As análises variam muito dependendo da fonte.

Tabela 4. Análise aproximada de 100 g de arilo mangostão maduro com adaptação de Kanchanapom; Kanchanapom (1998).

Intervalo ou valor1 2 3 4 5

Fontes

Umidade (%) 79,7 83,0 79,3 80,2 84,9 79,2 84,9

Calorias 76,0 63,0 81,0 60 63 60 81

Proteínas (g,%) 0,7 0,6 0,5 0,5 0,6 0,5 0,5 0,7

Graxa (%)

0,8 0,6 0,2 0,1-0,6 - 0,1-0,8

Carboidratos (%) 18,6 15,6 19,2 14,3 15,6 19,8 14,3 19,8

Açúcar total (%) 17,5 17,5

Açúcares redutores (%) 4,3 4,3

Fibras (%) 1,3 5,1 0,5 5,0-5,1 0,3 0,3-5,1

Cinza (%) 0,2 0,2 0,2 0,23 0,23 0,2 0,23

Cálcio (%) 18,0 8,0 25,0 0,01 0,8 11,0 0,01 18,0

Fósforo (%) 11,0 12,0 17,0 0,02 12,0 17,0 0,02 17,0

Ferro (%)

0,3 0,8 0,9 0,2-0,8 0,9 0,2-0,9

Vitamina A (I.U.) 0,0 14,0 14,0 0 14,0

Tiamina (Vitamina B2) % 0,06 0,03 0,09 0,03 0,09 0,03 0,09

Riboflavina (Vitamina B2) % 0,01 0,0 0,06 0,06 0 0,06

Niacina (Vitamina B5) % 0,1 0-0,1 Ácida 0,49 0,49

Ácido ascórbico (vitamina C) % 2,0 2,0 66,0 1,0 2,0 66,0 1,0 66,0 Ácido cítrico (g/100g) 0,63 0,63

Valores de vitamina A em unidades internacionais; 1 U.I. = 0,6 mg de betacaroteno.

Fontes: 1 Intengan et al. (1968), Coronel (1983); 2 Leung et al. (1952) e Dede Juanda & Bambang Cahyono (2000); 3- Dept. of Agric. Ext. (1990); 4-Morton (1987); 5-Poomipamorn e Kumkong (1997).

A fruta tem um alto teor de umidade. O arilo macio da fruta é a porção comestível, que constitui cerca de 25 30% da fruta. Intengan et al. (1968) consideram uma média de 26% do fruto como a porção comestível. Em relação a matéria seca, Nakasone e Paull (1998) avaliam que o arilo é constituído por 20%.

Os dados da Tabela 5, mostram que o arilo contémuma alta porcentagem de carboidratos, principalmente na forma de açúcares. O valor energético do arilo é de 340 kJ/100g (VERHEIJ, 1992). Geralmente é relativamente pobre em minerais (TONGDEE;

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SUWANAGUL, 1989) e vitaminas, mas os níveis de cálcio, fósforo e ácido ascórbico são comparativamente elevados.

Enquanto a porcentagem de sólidos solúveis totais varia de aproximadamente 13 a 20%, dependendo do estágio de maturidade do fruto. Com o fruto imaturo o intervalo é de 13 15,2%, mas quando maduro é de cerca de 18,3 19,0% (TONGDEE, 1985; NAKASONE; PAULL, 1998).

O arilo do fruto domangostão possui um sabor delicado e único. MacLeod e Pieris (1982) analisaram os compostos voláteis que contribuem para o aroma e detectaram cerca de 52 compostos. Destes compostos, 28 foram identificados. Quantitativamente, os principais componentes foram (Z) hex 3 en 1 ol (27%), octano (15%), acetato de hexil (8%) e α copaeno (7%). Os principais contribuintes para o sabor do mangostão são o acetato de hexil, (Z) hex 3 enil acetato (cis hex 3 enil acetato) e (Z) hex 3 en 1 ol. Seis sesquiterpenos também foram identificados.

SEMENTES As sementes possuem sabor de nozes (CORONEL, 1983). A semente contém cerca de 30% de óleo (PRATT; DEL ROSARIO, 1913). As xantonas, isoladas das cascas dos frutos e dos arilos e sementes comestíveis do mangostão, foram testadas quanto ao seu potencial antituberculose. As α e β mangostinas e a garcinona B exibiram forte efeito inibitório contra Mycobacterium tuberculosis (SUKSAMRARN et al., 2003).

CASCA. A casca é dura e libera uma espécie de resina amarela quando cortada. A casca também é rica em pectina e, após o tratamento com cloreto de sódio (para eliminar a adstringência), pode se produzir geleia (MORTON, 1987). Quando seca e moída, é ministrada como medicamento por possuir características adstringentes, contra disenterias (MÜLLER et al., 1995) e diarreias crônicas (ALMEYDA; MARTIN, 1976).

Em seu país de origem, a casca do mangostão é utilizada como corante caseiro (ALMEYDA; MARTIN, 1976; MÜLLER et al., 1995).

A casca de frutas secas é utilizada farmaceuticamente como adstringente (PRATT; DEL ROSARIO, 1913). Também Du e Francis (1977) relataram que a casca do mangostão contém uma quantidade substancial de pigmento vermelho. O pigmento principal é identificado como cianidina 3 soforosídeo, enquanto um pigmento secundário como cianidina 3 glicosídeo (KANCHANAPOM; KANCHANAPOM, 1998). De acordo com Mahabusarakum et al. (1983), a casca contém cinco xantonas polioxigenadas, incluindo mangostina 4,β mangostina, nor mangostina e gartanina. Esses compostos são usados na

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medicina e, até certo ponto, como agentes antibacterianos. O teor de xantona na casca e vários outros compostos farmaceuticamente ativos aumentam à medida que prossegue o amadurecimento do fruto. Portanto, os princípios ativos são as mangostinas e seus derivados, que são tipos de xantonas. Além das xantonas, as frutas de mangostão contêm flavonas.

Ji et al. (2007) citam que a casca do fruto contém elevados teores de xantonas, uma classe de combinações de polifenóis; sendo o pericarpo, segundo Naczk e Shahidi (2006), uma das maiores fontes de xantonas encontradas até então, sendo verificada atividade antioxidante (LEONG; SHUI, 2002; MOONGKARNDI et al., 2004; OKONOGI et al., 2007; LEONTOWICZ et al., 2007), ação antibacteriana (CHANARAT et al., 1997), antifúngica, anti inflamatória, antitumoral (HO et al., 2002), e atividade antileucêmica (MATSUMOTO et al., 2003; CHIANG et al., 2004).

PRODUÇÃO DE MUDAS

Sexuada. Nos principais países produtores de mangostão, a formação de mudas é feita sexuadamente, considerando seque as sementes dessaespéciesãoapomíticas e,portanto, as plantas não apresentam variabilidade genética. Quanto à germinação (Figura 31), as sementes perdem rapidamente a viabilidade e não podem ser conservadas pelos métodos convencionais de armazenamento, que têm como pressupostos básicos a redução do teor de água e o armazenamento em baixas temperaturas. A1guns procedimentos têm sido indicados para manter a viabilidade das sementes por períodos que possibilitem o transporte das sementes de um local para outro. Normalmente, é recomendada a estratificação das sementes em substrato umedecido com água. O substrato para estratificação das sementes pode ser fibra de coco, pó de serragem curtida ou vermiculita. Alternativamente, as sementes podem ser conservadas dentro dos frutos ou em sacos de polietileno por períodos de até 35 dias (MÜLLER et al., 1991). Em condições favoráveis de temperatura e umidade, a quase totalidade das sementes germina entre 10 e 20 dias após a semeadura (MÜLLER et al., 1995).

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Figura 31. Germinação de semente e formação de mudas de mangostão. Fonte: www.shutterstock.com.

As sementes utilizadas para germinação (propagação) são extraídas de frutos recém colhidos, previamente à seleção da melhor árvore ou daquela com as características desejadas. Em seguida, são separados da polpa com serragem, lavadas com água e secas por uma hora. O substrato deve ser areia fina, lavada, para que haja uma boa germinação (Figura 32). As sementes devem ser grandes, bem formadas, pesando mais de 1 g para conseguir plantas vigorosas (VARGAS et al., 1999). É importante saber que as sementes perdem a viabilidade 5 dias após serem extraídas do fruto e ficam viáveis por 3 a 5 semanas dentro dele. Se for desejada uma viabilidade mais longa (por exemplo, três meses), é necessário armazenar as sementes em recipientes herméticos. Para acelerar a germinação, as sementes devem ser embebidas em água por 24 horas. As sementes geralmente levam de 20 a 22 dias para germinar e a germinação uniforme leva 43 dias (MORTON, 1987).

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Figura 32. Plântula de mangostão de uma semana, sendo as sementes semeadas diretamente em polybags. Foto: Yan Diczbalis.

As sementes de mangostão são recalcitrantes, ou seja, não podem manter a viabilidade quando secas e submetidas a baixas temperaturas (WINTERS; RODRIGUEZ COLON, 1953; CHIN, 1976). Como resultado, as plantas terão que ser conservadas em bancos de genes de campo ou em bancos de genes de cultura de tecidos. Devido aos problemas de manutenção, cada acesso deverá ser justificado e duplicado em local alternativo. O mesmo se aplicará às espécies silvestres que se mostraram úteis para porta enxertos (TIXIER, 1955).

Após o transplantio, as mudas devem ser mantidas em local sombreado, com 50% de luminosidade (Figura 33). Os tratos culturais do viveiro consistem na manutenção da umidade por meio de irrigações e na eliminação periódica de plantas daninhas que crescem no substrato.

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Müller et al. (1989) recomendam adubações foliares com produtos que tenham na formulação macro e micronutrientes e a aplicação preventiva, a cada dois meses, de fungicidas à base de cobre (3 g.L 1 de água), mais Mancozeb (2 g.L 1), para controlar eventuais doenças que possam ocorrer nos viveiros.

Quando bem manejada, após dois anos de viveiro, a muda apresenta 30 a 40 cm de altura e está pronta para o plantio definitivo ou para ser utilizada como porta enxerto.

Assexuada. O mangostanzeiro pode ser propagado por enxertia de garfagem no topo em fenda cheia, embora os métodos de enxertia em fenda lateral e de encostia também possam ser utilizados. No processo de enxertia, são usadas, como porta enxertos, mudas de mangostão, com dois anos de idade. Os garfos ou enxertos devem ser retirados de ramos ortotrópicos (centrais), pois os ramos laterais formam plantas com crescimento lateral (plagiotropia).Após oprocesso deenxertia, ogarfoepartedoporta enxertodevem

Figura 33. Muda de mangostão.
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ser envolvidos por um saco transparente (câmara úmida), a fim de evitar a evaporação da água e o ressecamento do enxerto. As mudas recém enxertadas devem ser mantidas em local sombreado. Embora a propagação assexuada reduza em até dois anos o período vegetativo, na prática, tem sido observado que plantas propagadas por semente apresentamcrescimentomaisvigorosoe,quandoadultas,suplantamemproduçãoaquelas originadas de mudas enxertadas. Desse modo, a enxertia praticamente não tem sido utilizada na implantação de pomares comerciais. Nos outros países produtores, também não se utiliza a propagação vegetativa na formação de pomares comerciais.

O enxerto de fenda é um dos métodos de enxerto mais antigos e amplamente utilizados (Figura 34). Nesta técnica, um rebento saudável é obtido como o rebento de uma planta mãe selecionada ainda em crescimento ativo e é então inserido em um porta enxerto saudável (OSMAN; MILAN,2006).NaEmbrapa AmazôniaOriental, o cultivo deplantas enxertadas confirmou o crescimento lento, porém a quase totalidade das plantas entraram em fase reprodutiva quatro anos após o plantio, havendo casos de plantas com três anos de idade produzirem 65 frutos. No que concerne ao caule irregular e aos ramos decumbentes, foi constatado que, quando se utilizam garfos oriundos de ramos guia, a arquitetura da planta é semelhante à de plantas propagadas por sementes. Efetivamente, hánecessidadedepesquisasqueconfirmemaviabilidadedaimplantaçãodepomarescom mudas enxertadas (CARVALHO, 2014).

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Figura 34. Planta de mangostão propagada vegetativamente derivada de enxertia de fenda. Fotos: Osman e Milan (2006) e (MARDI).

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Mesmo assim, em condições de clima e solo favoráveis e manejo adequado, o mangostanzeiro pode iniciar a frutificação a partir de quatro anos (planta enxertada) ou seis anos (pé franco), em ambos os casos, após o plantio (SACRAMENTO et al., 2007).

Cultura de tecidos. A cultura de tecidos é uma ferramenta para cultivar uma planta inteira a partir de uma única célula ou tecido sob condições assépticas. É cultivado em meio sintético em um recipiente adequado sob um ambiente controlado. Estratégias de cultura de tecidos que podem ser utilizadas para a conservação in vitro de culturas de frutas tropicais foram descritas por Sahijram e Rajasekharan (1998). Tem sido amplamente utilizado para muitas espécies diferentes, incluindo mangostão. Alang e Normah (1991) revisaram o uso de técnicas in vitro para propagação do mangostão. A cultura de tecidos tem potencial para uso em mangostão para: (i) conservação de germoplasma, e (ii) micropropagação de materiais de plantio, (iii) reprodução de mutagênese in vitro. Também pode ser usado como avaliação da diversidade. Como os métodos de propagação vegetativa usados com o mangostão têm mostrado resultados variáveis, vários pesquisadores têm investigado o uso da cultura de tecidos, com graus variados de sucesso (ALMEYDA; MARTIN, 1976). Goh et al. (1988) utilizaram explantes de plântulas assepticamente germinadas em seus estudos in vitro sobre a micropropagação do mangostão. Brotos em proliferação foram obtidos de segmentos de cotilédones cultivados em meio modificado de Murashige e Skoog (1962) com 6 benzilaminopurina. Múltiplas gemasaxilares eadventícias foram formadas apartir de ápices de brotos e explantes nodais e intermodais, mas segmentos de raiz produziram poucas gemas. Os brotos foram enraizados por tratamento com ácido indol-butírico e foram prontamente estabelecidos em uma mistura de vermiculita:areia (1:1).

Goh et al. (1990) mostraram ainda que a benzilaminopurina (BAP) produziu um ótimo desenvolvimento de brotos a partir de explantes de plântulas, mas concentrações mais altas causaram brotos agrupados e atrofiados. Quando foram utilizadas folhas de árvores maduras que passaram de vermelho para verde, a frequência de formação de brotos diminuiu. O número de gemas vegetativas formadas foi maior em folhas vermelhas de plântulas, em comparação com folhas vermelhas jovens retiradas de árvores adultas. Plântulas de explantes de plântulas foram aclimatadas com sucesso e estabelecidas no solo.

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CONDIÇÕES EDAFOCLIMÁTICAS

1 Restrições à propagação do mangostão

As árvores de mangostão passam por uma fase juvenil que pode durar de 12 a 20 anos, embora um bom manejo resulte em árvores frutíferas em 5 a 7 anos após o plantio. A árvore tem uma ecologia rigorosa que a limita a 10°N e 10°S do equador (mas até 18° em áreas sem geadas), por exemplo, Malgaxe (Madagascar) e Queensland (Austrália). Uma curta estação seca é necessária para estimular a floração, mas o mangostão pode florescer duas vezes por ano ou esporadicamente e erraticamente. A precipitação anual de 1 270 mm é necessária e a faixa de temperatura ideal é de 25 35 °C com umidade relativa acima de 80% (KRISHNAMURTHI; RAO, 1962; BOURDEAUT; MOREUIL, 1970).

Em termos de exigências agroclimáticas, o mangostão prefere solos profundos, férteis, bem drenados e ligeiramente ácidos com elevado teor de matéria orgânica. As plantas não crescem bem em solos com pH alto. A árvore está adaptada a chuvas fortes e bem distribuídas. Omangostão requeralta umidade eprecipitação anual de1 200 mm ou mais, sem períodos secos prolongados. Algumas das plantas produtivas do mangostão são encontradas crescendo perto das margens de riachos, lagos, lagoas ou canais onde suas raízes estão quase constantemente úmidas. No entanto, as plantas requerem um curto período de seca para a indução de flores. A faixa de temperatura ideal é de 25ºC a 35°C. As exigências agroclimáticas do mangostão em comparação com outra fruta tropical (manga) são mostradas na Tabela 5.

Tabela 5. Exigências agroclimáticas do mangostão em comparação a mangueira.

climáticos

Nenhum ou curto

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Espécies Requerimentos
Requerimento agronômico Altitude (m) Chuvas (mm) Ótimo de Temp. (°C) Duração da estação seca pH Mangostão 0 600 >1.300 25 23
5.5 6.8 Manga 0 700 1000 2000 24 27 4 meses para floração 5.0 7.5 Fonte: UDPSM (2002).

1 Condições climáticas

Precipitações. O mangostão parece exigir um abastecimento de água ininterrupto com uma curta estação seca de 15 a 30 dias, esta última sucedendo ao iniciar a floração.

O ideal é que as chuvas sejam bem distribuídas ao longo do ano. Tem sido relatado que uma precipitação anual acima de 1.270 mm é necessária (FIRMINGER, 1869). Dede Juanda e Bambang Cahyono (2000) relataram uma precipitação adequada de 1.270 2.500 mm por ano, favoravelmente com dez meses úmidos.

No cultivo do mangostão parece que qualquer estresse devido ao déficit hídrico deve ser evitado e a irrigação pode ser necessária de tempos em tempos e especialmente durante a estação seca. É importante frisar que as árvores de mangostão podem resistir a algum alagamento, mas não à seca.

No entanto, as árvores de mangostão podem crescer com sucesso em outras áreas quando um suprimento constante de água é fornecido através da irrigação, especialmente durante a estação seca (OCHSE et al., 1961; PALMA GIL et al., 1972; VIETMEYER et al., 1975). Nas Filipinas, árvores frutíferas também podem ser encontradas onde a chuva não é distribuída uniformemente (GALANG, 1955).

Temperatura. O mangostão prospera na faixa de temperatura de 25 35 °C quando a UR é superior a 80% (BOURDEAUT; MOREUIL, 1970), mas uma faixa de 20 25 °C também é aceitável para o seu cultivo (VIETMEYER et al., 1975). Dede Juanda e Bambang Cahyono (2000) relataram uma faixa de temperatura adequada de 25 32 °C, mas o crescimento é afetado quando a temperatura cai abaixo de 25 °C. Temperaturas abaixo de 5 °C e acima de 38 40 °C são letais e como o crescimento é retardado em temperaturas de 15-20 °C, portanto, tal condição não é recomendado para plantar

Intensidade da luz solar. O sombreamento é essencial durante os primeiros 2 4 anos de crescimento, tanto no viveiro quanto durante o início do estabelecimento no campo (NAKASONE; PAULL, 1998). Não há relatos de resposta ao fotoperíodo. A taxa fotossintética é constante em uma faixa de temperatura de 27 35 °C, sob 20 50% de sombra (WEIBEL et al., 1993). Dede Juanda e Bambang Cahyono (2000) afirmaram que a intensidade da luz solar adequada é de 40 70%. As folhagem e frutos são suscetíveis a queimaduras solares sob luz solar direta (VERHEIJ, 1992).

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No Sudeste Asiático, o sombreamento é oferecido a árvore de mangostão por outras árvores nos tradicionais pomares de fruteiras em plantios de sistemas de policultivos ou consorciados. Em algumas plantações na Malásia, fileiras alternadas de Indigofera sp foram cultivadas para fornecer a sombra necessária nos primeiros anos de seu estabelecimento. Por outro lado, Hackett e Carolane (1982) afirmaram que as árvores de mangostão florescem tanto em dias longos quanto curtos, embora os cultivos mais produtivos geralmente sigam a floração de dias longos.

Vento: As árvores de mangostão têm uma estrutura de galhos bastante compacta e de grande ângulo e, portanto, raramente estão sujeitas a danos causados pelo vento. No entanto, em condições expostas, as folhas e os frutos podem ser rasgados ou machucados por ventos fortes e a presença de um quebra vento é recomendada onde essas condições são prováveis deocorrer, como nas Filipinas, onde os tufões sãopredominantes.Umrisco adicional é que ventos fortes reduzam o nível de umidade relativa ao redor das árvores; observou se que um alto nível de umidade é essencial para que ocorra um crescimento satisfatório (YAACOB; TINDALL, 1995).

2 Condições edáficas.

O mangostão pode crescer com sucesso em uma ampla variedade de solos (CAMPBELL, 1967; ALMEYDA; MARTIN, 1978). No entanto, a árvore não está adaptada a solos calcários, solos aluviais arenosos ou solos arenosos com baixo teor de húmus. São favoráveis ao crescimento do mangostão, alto teor de matéria orgânica e pH ótimo ente 5,5 a 7,0

Os melhores solos para o cultivo do mangostão são porosos, profundos, úmidos, mas bem drenados, ligeiramente ácidos, franco argilosos e, preferivelmente, com alto teor de matéria orgânica (GALANG, 1955; ALMEYDA; MARTIN, 1978; DEDE JUANDA; BAMBANG CAHYONO, 2000). Apesar de um sistema radicular relativamente fraco, as árvores podem tolerar solos pesados que impedem o movimento da água, desde que a transpiração seja limitada pela alta umidade e sombra. Sob condições secas, a irrigação é necessária, e coberturas mortas (grossas) são muito benéficas (VERHEIJ, 1992).

De acordo com Sacramento et al. (2007), o mangostão cultivado no Brasil adapta se bem em solos profundos argilo arenosos, bem drenados e, preferivelmente, com alto teor de matéria orgânica. Em Una (BA), o mangostão é cultivado em Latossolos Vermelho

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Amarelos, considerados de baixa fertilidade natural. No Estado do Pará, os plantios estão estabelecidos em Latossolo Amarelo.

SISTEMA DE PRODUÇÃO

Para o cultivo do Garcinia mangostana deve aplicar as melhores condições agronômicas ao longo do seu ciclo vegetativo, visando obter um elevado desenvolvimento da árvore e sua maior produtividade em poucos anos (6 8 anos)

ESCOLHA DA ÁREA

Na escolha da área, para investimento em cultivo de mangostão, o produtor deve avaliar, além dos aspectos edafoclimáticos,os aspectos estratégicos delocalizaçãodapropriedade em relação ao mercado consumidor e a proximidade de outros produtores, visando à formação de volume em larga escala para comercialização em grandes centros.

Considerando que o mangostanzeiro inicia a frutificação somente a partir de seis a oito anos, após o plantio, o produtor deve planejar o preparo da área para a exploração de outros cultivos de produção mais precoce, para consórcio durante o período improdutivo dessa frutífera, objetivando reduzir os custos de implantação e propiciar maior proteção do solo. Umadas opçõesutilizadas com ótimo resultado,duranteos quatroprimeiros anos de crescimento do mangostanzeiro, é o consórcio com a bananeira.

ANÁLISE DE SOLO E CALAGEM

Antes de preparar o local do pomar, é aconselhável avaliar o perfil do solo e analisar a camada do solo da zona de enraizamento. Para garantir que a amostra de solo seja representativadaparcela,eladeveserretiradadepelomenoscincopontosuniformemente distribuídos. Pegue as amostras até uma profundidade de 50 cm, descartando a camada de grama, e depois misture as. Separe 1 2 kg de solo, coloque o em um saco plástico e envie o ao laboratório para testes físico químicos.

Geralmente, é difícil corrigir características químicas atípicas no solo, embora algumas medidas possam ser tomadas para melhorar os casos graves. Para baixar o pH do solo pode ser útil aplicar aditivos acidificantes como enxofre e matéria orgânica, esterco e adubo verde, que tornam o carbonato de cálcio solúvel, formando ácidos orgânicos e dióxido de carbono. O carbonato de sódio está presente em solos com pH superior a 8,3 e evita a floculação da argila e a estruturação das partículas; como resultado, o solo é

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duro, asfixiante e impermeável. Três a dez toneladas de gesso (sulfato de cálcio) por hectare são aplicadas para remediar este problema. Isso libera Ca, que desloca o sódio para fora do complexo de troca, que então precisa ser lixiviado. De outra forma, a correção da acidez do solo deve ser feita para elevar o pH do solo para 5,5 7,0 (pH ideal para o mangostão), a uma profundidade mínima de 40 cm em área total. A aplicação do corretivo de acidez deve ser feita com calcário dolomítico.

PREPARAÇÃO DO SOLO

O preparo do solo para o cultivo do mangostão, quando realizado de forma correta desempenha um importante papel para o transplantio de mudas, e no posterior crescimento e desenvolvimento lento das plantas, principalmente por se trata de uma espécie perene. Por este motivo, é necessário avaliar sua viabilidade econômica em função de três tipos de situações: sem preparo, preparo mínimo e preparo total do campo. Sem preparo. É raro que as sementes sejam semeadas diretamente no pomar, embora em hortas domésticas isso às vezes seja praticado; mais frequentemente as mudas são transplantadas. O plantio da área de mangostão poderá ser realizado no início do inverno com mudas de 2 anos, as quais são preparadas no viveiro e, para garantir sua sobrevivência as condições adversas, recomenda se fazer o sombreamento das mudas em cada cova. No plantio de um pomar é preciso lembrar que as árvores maduras exigirão um espaço de 40 a 80 m² por árvore. Altas taxas de matéria orgânica no solo são recomendadas, e as práticas normalmente seguem as recomendações para outras culturas (MARSHALL; MARSHALL, 1983). A matéria orgânica pode ser incorporada nos locais de plantio 6 9 meses antes do plantio.

Preparo mínimo. O preparo mínimo do solo para a semeadura do magostão poderá ser realizado apenas nas linhas de plantio com aração mecânica. Se houver necessidade de acesso a equipamentos, uma nova limpeza de terreno pode ser feita usando um trator para remover plantas grandes junto com suas raízes. O uso de uma escavadeira pode causar compactaçãodosolo eaaraçãoprofundasubsequenteprecisaserrealizadaapósalimpeza do terreno. Sob condições médias do solo, uma passada de aração de disco (ou escarificação profunda) seguida de gradagem é suficiente para atingir a preparação do solo desejada (OSMAN; MILAN, 2006).

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Preparo do solo em toda área. A aração e gradagem com o trator podem ser feitas em toda área a ser cultivada com o mangosteiro no início da estação úmida, mas tal procedimento só é viável quando se pretende aproveitar os espaços livres para o plantio consociado com outras espécies.

TRANSPLANTE DE MUDAS

As mudas estão prontas para serem transplantadas para o campo quando tiverem cerca de 2 anos de idade. As covas de plantio são abertas com um tamanho mínimo de 60 x 60 x 60 cm. Em algumas operações comerciais, covas maiores são abertas cerca de um mês antes do transplante (dimensão da cova de 1,2 m x 1,3 m). A matéria orgânica pode ser misturada com o solo superficial e usada para preencher a cova de plantio ao redor da muda. A adição de fosfato (por exemplo, na quantidade de 100 g/cova) é recomendada. Varas de bambú são usadas como tutores das mudas nos estágios iniciais (OSMAN; MILAN, 2006).

Várias recomendações para reduzir a lesão radicular no transplante foram feitas por Almeyda e Martin (1976). O período para atingir o estágio de duas folhas varia e depende do tamanho da semente, do vigor da semente, do tipo de meio e das condições de crescimento. A taxa de sobrevivência dos transplantes foi observada declinando com o aumento da idade das mudas (HORN, 1940). O crescimento lento das plântulas é geralmente atribuído a um sistema radicular fraco, caracterizado pela ausência de pêlos radiculares e desenvolvimento radicular lateral deficiente.

É importante destacar que as mudas provenientes de polybags ou com um grande torrão do viveiro são transplantadas com o mínimo de perturbação possível para o sistema radicular. As mudas de mangostão têm uma raiz principal longa e delicada e um sistema radicular lateral ruim. Muitas falhas de mudas podem estar relacionadas a danos na raiz principal durante o transplante. Também é recomendado, mas raramente praticado, que as folhas das mudassejam podadas aomeioparaevitardanos indevidos às folhas (HORN, 1940a). As falhas também se devem à superexposição das mudas ao sol direto durante o transplante (OCHSE et al., 1961).

Em condições favoráveis, com irrigação regular e sombreamento adequado, as plantas podem atingir uma altura de 30 35cm e desenvolver uma área foliar superior a 200 cm2 após um ano; a taxa de crescimento é considerada a mais lenta de quase todas as mudas de frutas tropicais que têm um período juvenil prolongado.

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Em algumas áreas, as sementes são semeadas diretamente em sacos de polietileno de 18 cm x 10 cm e posteriormente transferidas para sacos de 30 cm x 19 cm, normalmente após o desenvolvimento do segundo par de folhas, o que pode ocorrer três ou quatro mesesdepois(BORDEAUT;MOREUIL,1970).Asmudaspodemsertransplantadaspara o pomar após 1 2 anos, quando atingirem aproximadamente 45 60 cm de altura. Devido ao sistema radicular pouco desenvolvido, no entanto, recomenda se que o transplante seja realizado quando as mudas não tiverem mais de 60 cm de altura, pois a raiz principal pode estar bastante desenvolvida nessa época. O uso de antitranspirantes, para reduzir a perda de água estomática, também tem sido sugerido. A seleção de plântulas vigorosas nos estágios iniciais de crescimento garante a sobrevivência de árvores de crescimento vigoroso (ALMEYDA; MARTIN, 1976).

TUTORAMENTO

Embora as árvores de mangostão sejam geralmente robustas, as mudas jovens, principalmente aquelas cultivadas à sombra, podem precisar de suporte por estacas ou tutores. Estes são melhor inseridos no momento do plantio para que o sistema radicular não seja danificado; isso poderia ocorrer se as estacas fossem cravadas no solo posteriormente. As estacas devem ter pelo menos 1 m de altura e deve se tomar cuidado para evitar que a muda se atrite contra a estaca, envolvendo o tronco com uma faixa protetora de juta ou outro material disponível onde for amarrado à estaca.

SOMBREAMENTO

O sombeamento deve ser fornecido rapidamente e é fundamental durante os primeiros dois anos de estabelecimento. As plantas de mangostão requerem cerca de 30 50% de sombra para protegê las do sol quente e evitar que as folhas se queimem (MOA, 2002). A sombra pode ser fornecida usando cestas de bambu que são colocadas de cabeça para baixo em um tripé acima das mudas (Figura 35). O tapume (cesta de bambu) da sombra deve estar 1,2 2 m acima do nível do solo (cesto suspenso por estacas ou tripé). As cestas podem fornecer a sombra necessária por cerca de dois anos, pois duram tanto tempo.

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O sombreamento deve ser fornecido pelo menos nos primeiros seis meses após o plantio. Outros materiais como folhas de coqueiro, folhas de dendê, folhas de bananeira ou gramíneas também podem ser usados para dar sombra às mudas (Figura 36). Folhas de palmeira são frequentemente usadas como sombra; elas são muito adequadas para o efeito, pois as folhas vão secando gradualmente, permitindo que as mudas fiquem endurecidas.

Figura 35.Plantas jovensdemangostãoreceberam asombranecessárianocampo usando cestas de bambu (MARDI). Foto: Osman; Milan (2006). Figura 36. Uma planta jovem de mangostão que recebeu a sombra necessária com folhas de coqueiro (MARDI). Foto: Osman; Milan, 2006.
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Já foi mencionado que uma cultura temporária de sombra, que também pode fornecer uma renda em dinheiro para o produtor, pode ser cultivada como uma cultura de entrelinha. Culturas como banana e mamão podem ser estabelecidas cerca de seis meses antes do plantio das mudas de mangostão. No entanto, essas culturas de sombra devem ser removidas dois a três anos depois, antes de começarem a competir com as mudas de mangostão. Alternativamente, o sombreamento pode ser obtido com povoamentos mistos (policultivos), com culturas como banana, rambutâ, durião e coco, distanciadas pelo menos a 1,5 m da árvore do mangostão. Os pomares de mangostão florescem muito bem sob o coqueiro (Figura 37). Em áreas com estação seca pronunciada, é uma boa prática cultivar sempre o mangostão sob sombra parcial.

Figura 37. Plantas de mangostão cultivadas sob coqueiros para aproveitar a sombra natural (MARDI). Foto: Osman; Milan, 2006.

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A sombra é mantida até 2 4 anos e depois é gradualmente reduzida para permitir a exposição total ao sol (FAIRCHILD, 1915; HUME, 1947; GONZALEZ; ANOOS, 1951; ALMEYDA; MARTIN, 1978). No entanto, em algumas condições climáticas, por exemplo em Mindanao, Filipinas, o mangostão já bem estabelecido pode ser transplantado definitivamente ao ar livre, sem sombra (Figura 38). Ao considerar um pomar, é melhor verificar a prática local para sombreamento usada pelos produtores da região

Figura 38. Pomar de mangostão jovem sem sombra com mais de 4 anos de idade. Foto: Yaacob; Tindall (1995).

As mudas que são transplantadas também requerem cobertura morta. A cobertura morta deve ser feita logo após o transplante. Uma cobertura pesada ao redor da planta é uma boa alternativa para o controle de ervas daninhas. A cobertura é aplicada a 30 cm da base do tronco até a extensão do dossel (HUME, 1947). Durante qualquer estação seca, a área ao redor da base da planta deve ser coberta com cobertura morta para manter o solo continuamente úmido (FAIRCHILD, 1915; HUME, 1947; ALMEYDA; MARTIN, 1978). Cachos de frutos de dendezeiros vazios, cascas de coco e gramíneas secas são coberturas úteis. As culturas de cobertura (Crotalaria sp., feijão fradinho, kudzu tropical, etc.) também ajudam.

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ÉPOCA DE PLANTIO

O plantio no campo deve ser feito no início da estação chuvosa ou inverno. Isso evita danos, pois as mudas são sensíveis a condições secas. Também neste momento não há necessidade de irrigação suplementar.

ESTABELECIMENTO DO CAMPO: PLANTIO

O plantio em áreas com irrigação suplementar pode ser efetuado em qualquer época do ano, enquanto em áreas não irrigadas deve ser realizado no início do período de chuvas.

As covas devem ter dimensões aproximadas de 40 cm x 40 cm x 40 cm e podem ser abertas com dragas manuais ou enxadões ou, mecanicamente, com broca perfuratriz de 18 polegadas de diâmetro atrelada à tomada de força de um trator. No último caso, há riscos de compactação das paredes laterais, principalmente em solos argilosos, sendo necessário que, após a abertura, efetue se raspagem das paredes laterais com uma pá reta.

As covas devem ser adubadas com 200 g de superfosfato simples e 10 a 20 litros de esterco.

Caso o plantio seja efetuado em pleno sol, ou seja, sem uma cultura para sombreamento provisório, é necessário proteger as plantas da radiação solar direta. Isto pode ser feito com folhas de palmeiras. O mangostanzeiro cresce melhor nos dois primeiros anos após o plantio, com nível de sombra em torno de 50%.

ESPAÇAMENTO

Em pomares mistos com outras frutas, como durian, rambutan ou coco, é permitida consorcia desde que obedeça uma área de 40 80 m² por planta de mangostão e são plantadas no espaçamento de 8 10m (110 140 plantas/ha). Recomenda se um espaçamento de 11 12 m se for necessário o acesso ao pomar de algum tipo de equipamento.

No cultivo comercial, o plantio quadrado é recomendado para o mangostão, mas vai depender da densidade de plantio, do tipo de material de plantio utilizado, profundidade e qualidade do solo, topografia e irrigação. O espaçamento para mudas de mangostão propagadas a partir de sementes é recomendada em 7 m x 7 m, totalizando 200 plantas por hectare. Outros espaçamentos de 6 m em linha e 6 8 m entre fileiras também são utilizados, totalizando 280 plantas por hectare (OSMAN; MILAN, 2006).

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IRRIGAÇÃO

O mangostão é sensível a ambientes muito úmidos ou muito secos. Quanto plantada em região que não tem chuvas uniformemente distribuídas ao longo do ano, um sistema de irrigação intenso é recomendado para fornecer água durante os meses secos.

Asplantas demangostãopodem sebeneficiardeirrigaçãosuplementar,mesmo quesejam plantadas em áreas bastante úmidas. O sistema radicular do mangostão carece de pêlos radiculares (HUME, 1947); consequentemente, há pouco contato com o solo para absorção eficiente da água. Por esta razão, a planta requer um suprimento constante e abundante de água no solo (FAIRCHILD, 1915; HUME, 1947; GONZALEZ; ANOOS, 1951; OCHSE et al., 1961; ALMEYDA; MARTIN, 1978). No entanto, na fase de muda, a água parada pode matar as plantas (POPENOE, 1928). A grande necessidade de água é indicada naturalmente por algumas árvores de mangostão mais frutíferas que crescem nas margens de riachos, lagos, lagoas ou canais onde as raízes estão quase constantemente molhadas (POPENOE, 1928).

A escolha correta do sistema de irrigação é essencial, pois um sistema inadequado pode levar à erosão do solo, alagamentos e também aumentar o custo de produção. Alguns sistemas de irrigação, como irrigação por gotejamento, irrigação por microaspersores, podem ser ideais dependendo do tipo de solo, topografia, fonte de água, espaçamento de plantio e custo.

O sistema de irrigação por gotejamento fornece água diretamente para a zona radicular das árvores através de uma rede de tubos (Figura 39). A principal vantagem deste sistema é a economia de água, uma vez que a perda de água por evaporação é mínima em comparação com outros sistemas de irrigação.

Figura 39. Árvore jovem com sistema de irrigação por gotejamento. Foto: Yaacob; Tindall (1995).
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A irrigação por gotejamento, o uso de microjato e aspersores de baixa pressão podem ser considerados métodos práticos de aplicação de irrigação e fertilizantes solúveis, incluídos no sistema de irrigação, parecem ser um método eficaz para garantir um suprimento adequado de macro e micronutrientes.

A prática geral no Sudeste Asiático parece irrigar as árvores a cada duas semanas durante a estação seca e considera se que as árvores se beneficiam da irrigação suplementar, mesmo em áreas relativamente úmidas (VERHEIJ, 1991). Coberturas pesadas são geralmente consideradas valiosas na conservação da umidade do solo, mas a irrigação é considerada necessária, mesmo com pequenos déficits de solo/água. Atualmente, as quantidades específicas denecessidadedeáguaem diferentes estágios decrescimento das plantas ainda não foram estabelecidas. Algumas práticas são indicadas abaixo:

Na fase de canteiro. As plântulas em polybags são regadas duas vezes ao dia, uma vez pela manhã e outra à noite. É importante que a mistura de solo usada no polybag não seja muito compacta, pois pode ocorrer alagamento ou encharcamento.

No estabelecimento de campo. Se o transplante não for realizado durante o início da estação chuvosa, énecessário um sistemadeirrigação paraevitarochoquedotransplante. No entanto, a rega contínua deve ser evitada porque muita água pode causar um crescimento atrofiado.

Floração e frutificação. Condições secas imediatamente antes e durante a floração podem ser desejáveis para induzir uma boa frutificação. Artificialmente, um período seco contínuo de 15 30 dias (para limitar o crescimento de gemas apicais) seguido de duas regas pesadas, espaçadas de 7 dias, pode ser imposta às árvores para induzir a floração.

A rega regular é então necessária durante o crescimento e desenvolvimento dos frutos, com pelo menos 80 85% da evaporação do tanque ET0 (KANCHANAPOM; KANCHANAPOM, 1998) (Figura 40). Uma quantidade insuficiente de água pode retardar severamente o desenvolvimento dos frutos. O excesso de água tende a resultar em árvores formando novos brotos. As plantas que formam novos brotos durante a frutificação resultam em frutos pequenos ou abortados.

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Figura 40. Etapas requeridas para induzir a floração em mangostão na Tailândia. Fonte: Salakpetch (1996).

CONSORCIAÇÃO

As indicações de espaçamento para o cultivo do mangostanzeiro no Brasil variam desde 7 m x 7 m até 10 m x 10 m (SACRAMENTO et al., 2007). Em um pomar de 13 hectares, estabelecido no município de Marituba PA, em espaçamento quadrangular de 10 m x 10 m, consorciado com rambuteiras plantadas a 5 m de distância dos mangostanzeiros (100 mangostanzeirose300rambuteiras),somentedepois de20anos houvecomprometimento na produção de mangostão, devido à sombra excessiva provocada pelas árvores de rambutã. O açaizeiro também vem sendo utilizado por agricultores paraenses e baianos em consórcio com o mangostanzeiro (Figura 41). Nesse caso, os mangostanzeiros são estabelecidos no espaçamento de 10 m x 10 m, com uma fileira de touceiras de açaizeiro, com quatro plantas, distanciadas dos mangostanzeiros em 5 m (100 mangostanzeiros e 300 touceiras de açaizeiro). Esse último consórcio, conquanto não seja recomendado por Sacramento (2001), tem se mostrado bastante satisfatório, com boa produção de açaí (30 a 40 kg/touceira) e de mangostão (800 a 1.000 frutos/planta).

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Figura 41. Consorciação de mangostanzeiro com mamoeiros e araçazeiros em Una, BA. Foto: Célio Kersul do Sacramento (2007).

ADUBAÇÃO

Brasil. Não existem estudos sobre os requerimentos nutricionais domangostanzeiro, nem recomendações de adubação devidamente consolidadas. Para solos de baixa fertilidade da Amazônia, os seguintes procedimentos são adotados pelos agricultores para pomares implantados com mudas oriundas de sementes, que só entram em fase reprodutiva oito anos após o plantio:

a) Nos três primeiros anos, adubar cada planta com 300 g da formulação NPK 14 14 14 e 20 litros de esterco por planta O adubo químico deve ser aplicado em três parcelas de 100 g, no início, meio e fim do período de chuvas, e o orgânico, no início das chuvas.

b) A partir do quarto e até o sétimo ano, cada planta deve receber 450 g da formulação NPK 14 14 14 e 20 litros de esterco. O adubo químico deve ser parcelado em três aplicações de 150 g, também no início, meio e fim do período de chuvas. A adubação orgânica deve ser realizada no início das chuvas.

c) Quando as plantas entrarem em fase reprodutiva, utilizar a formulação NPK 10-28-20 e 20 litros de esterco. No primeiro ano de frutificação, cada planta deve ser adubada com

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500 g dessa formulação e, por ocasião da floração, com 200 g de cloreto de potássio. A adubação com cloreto de potássio tem por objetivo reduzir a incidência do distúrbio fisiológico conhecido como ¨rompimento dos vasos lactíferos¨. Nos anos seguintes, aumentar gradualmente a quantidade de adubo químico, até o máximo de 2,0 kg, mantendo se sempre a proporção de 5:2, entre a formulação NPK e o cloreto de potássio (CARVALHO, 2014).

Índia. Verificaram se que as plantas de mangostão respondem bem à adubação (GALANG, 1955), e fertilizantes orgânicos diluídos que podem ser absorvidos lentamente também são considerados desejáveis (HUME, 1947). Na Índia, os produtores foram orientados para dar a cada planta uma adubação orgânica regular com esterco bem fermentado(45 90kg)efarelodeamendoim(4,5 6,8kg)todososanos.Damesmaforma, a aplicação de um fertilizante nitrogenado produz um crescimento vegetativo mais rápido das plantas (OCHSE et al., 1961; PALMA GIL et al., 1972). Os fertilizantes podem ser aplicados em círculo ao redor da base da planta na borda do dossel. Há uma escassez de informações exatas sobre os fertilizantes para o mangostão, no entanto, as seguintes recomendações gerais são sugeridas: 50 100 g de sulfato de amônio é aplicado um mês após o plantio e novamente no final da estação chuvosa ou 6 meses após o plantio. Durante os anos subsequentes de crescimento vegetativo, a quantidade de fertilizante é aumentada gradualmente. Quando as plantas começam a frutificar, são aplicados 500 g de fertilizante completo rico em N e K, uma vez no início e outra no final da estação chuvosa, ou a cada 6 meses. A quantidade de fertilizante é gradualmente aumentada a cada ano à medida que as plantas crescem e a produção de frutas aumenta. As plantas totalmente crescidas devem receber pelo menos 2 kg de fertilizante completo por ano.

O calcário dolomítico é aplicada na proporção de 0,2 kg por planta por ano de idade, sem aumento mesmo após os 15 anos. O esterco de galinha também pode ser aplicado na proporção de 2 kg por planta por ano, pois acredita se que isso melhora o vigor.

Tailândia. Para a Tailândia, Kanchanapom e Kanchanapom (1998) sugeriram o cronograma mostrado na Tabela 6. Para árvores com 15 anos ou mais, metade é aplicada quando o crescimento vegetativo está sendo estimulado após a colheita dos frutos e o restante é aplicado 2 5 semanas após a antese.

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Tabela 6. Um cronograma de fertilizantes do mangostão na Tailândia.

Idade da árvore (ano) Estrume/fertilizante Quantidade por planta (por ano)

Plantas jovens Estrumo orgânico

1 15 anos Dolomítico, N,P,K 200 g, 70 g, 6 g, 50 g

>15 anos 10:10:19 (N:P:K) 2-7 kg

Fonte: Kanchanapom e Kanchanapom, 1998.

Austrália. A programação de fertilizantes que foi usada na Estação de Pesquisa Hortícola Kamerunga (agora fechada), Cairns, Austrália, é apresentada na Tabela 7. Os micronutrientes foram aplicados, principalmente para zinco e ferro. Antes da primeira colheita, a adubação total foi aplicada em quatro partes nos meses de agosto, dezembro, fevereiro e abril.

Tabela 7. Cronograma de fertilizantes anteriormente praticado para mangostão na Estação de Pesquisa Hortícola Kamerunga, Austrália.

Idade da planta (anos) Fertilizante por planta por ano (g) (N:P:K)

1 2 70:6:50

2 4 210:18:150

4-6 350:30:250

6-8 490:42:350

8 10 630:54:450

Plantas portadoras de sementes 700:60:500

Fonte: Chay Prove (2004).

CONTROLE DE PLANTAS DANINHAS

O crescimento extremamente lento torna as mudas de mongostão muito vulneráveis e podem ser rapidamente ultrapassadas por ervas daninhas, portanto, a capina é extremamente necessária. Um programa geral de manutenção, como corte de ervas daninhas e/ou uso de herbicidas de contato, pode ser implementado após 2 anos. Se a cobertura morta foi realizada com sucesso ao redor da base da planta, a capina de coroamento da árvore pode não ser necessária.

Como a sombra fornecida pela árvore pode ocultar as ervas daninhas, são necessárias verificações regulares de tais ocorrências no pomar. Durante o crescimento inicial, as ervas daninhas ao redor do tronco da planta devem ser removidas, tomando cuidado para

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não danificar as plantas jovens. Para árvores adultas, as ervas daninhas podem ser controladas pela pulverização de paraquat a 1,0 kg/ha ou glufosinato de amônio a 0,5 kg/ha (MOA, 2002).

Onde os herbicidas estão disponíveis e seu uso é considerado desejável, como em pomares comerciais, amaioriadas ervas daninhas anuais eperenes podem sercontroladas usando glifosato a uma taxa de 1,5 3,75 kg/ha de ingrediente ativo ou, como pulverização local direcionada a ervas daninhas individuais, a uma taxa de 150 ml em 18 litros de água. O paraquat, que mata a parte aérea de todos os tipos de plantas daninhas, pode ser usado, na proporção de 0,5 1,0 kg/ha, preferencialmente misturado com um surfactante para garantir uma cobertura foliar adequada. A Figura 42 mostra o controle de ervas daninhas pelo uso de herbicidas.

Figura 42. Uso de herbicidas no controle de ervas daninhas (aplicação em coroamento).

Foto: Yaacob; Tindall (1995).

As culturas de cobertura leguminosas úteis incluem Crotalaria spp., Pueraria phaseoloides, feijão fradinho, fava de veludo e fava de cavalo. Estas podem ser semeadas uma vez que as árvores de mangostão estejam estabelecidas e devem ser

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semeadas novamenteacada3 4anos. Deve seterocuidadodegarantirqueumadistância de pelo menos um metro ao redor da base das árvores seja mantido livre de plantas de cobertura e ervas daninhas, uma vez que o mangostão, como a maioria das outras árvores frutíferas tropicais, é sensível à competição, principalmente durante o início estágios de crescimento. À medida que as árvores amadurecem, o aumento do tamanho da copa restringirá o crescimento das plantas daninhas e das culturas de cobertura entre as árvores (YAACOB; TINDALL, 1995).

Mulching ou cobertura morta. Todas as árvores, especialmente as plantas jovens, responderão bem aomulching regular,principalmentedurante a estação seca. Osmulches restringem o crescimento de ervas daninhas, mantêm uma temperatura do solo relativamente baixa e evitam a perda excessiva de umidade do solo por evaporação. A decomposição de uma cobertura morta também contribuirá para o conteúdo orgânico do solo ao redor da base da árvore. As coberturas podem consistir em grama seca, ervas daninhas,folhas decoco, folhas debananeiraouquaisquersubprodutos deprocessamento disponíveis, como casca de coco, café ou amendoim. Em Porto Rico, costuma se dar às árvores jovens uma cobertura anual, com pelo menos 2,5 cm de profundidade, de esterco bem curtido, aplicada no final da estação chuvosa (WINTERS, 1953).

PODA

A saúde geral das árvores de mangostão, que também está relacionada à sua produtividade, pode ser estimada a partir do tamanho do dossel ou da extensão do dossel.

O objetivo da poda é remover a madeira morta para permitir o máximo desenvolvimento de um dossel aberto, remover galhos que podem deixar seus frutos tocar o solo para permitiroacesso demáquinasagrícolasefacilitaracolheita.Asárvoresjovensprecisarão de pouca poda, exceto quando necessário para formar os troncos principais. À medida que as árvores crescem, elas podem precisar imediatamente de poda cuidadosa.

O mangostão geralmente termina seu estágio juvenil quando o tronco tem 16 pares de ventosas laterais (chupões laterais ao redor do tronco) e depois cresce em uma copa piramidal. Até então, nenhuma poda é necessária, exceto para remover galhos quebrados ou mortos.

As árvores de mangostão crescem em uma forma piramidal bem formada e normalmente não requerem manutenção durante os anos de formação. No entanto, a poda preventiva para remover galhos fracos e mortos e a poda corretiva para remover galhos de

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crescimento ereto e galhos internos menores devem ser realizadas regularmente. A limitaçãodealturada árvorede8a10m podeserdesejável, parareduzir aalturadaplanta a um nível conveniente para a colheita e promover maior desenvolvimento dos ramos laterais. Uma árvore crescendo em condições favoráveis pode ter produzido 16 camadas de galhos a partir do caule principal no momento da primeira colheita, que pode ser de 10 a 12 anos após o plantio.

A poda corretiva regular para remover as ventosas na base do tronco principal, galhos estranhos que crescem na vertical e pequenos galhos internos (internos) é uma boa prática (FAIRCHILD, 1915; HUME, 1947). Devido à altura da árvore adulta e ao fato de os frutos nascerem isoladamente, dificultando a colheita, sugere se que a poda pode ser útil para limitar a planta a uma altura de 8 10 m, permitindo maior expansão dos ramos laterais.

As árvores produzem fluxos periódicos de crescimento de brotos, até 6 por ano quando em estádio vegetativo e apenas 1 ou 2 por ano quando em estádio de produção. Nenhuma poda deve ser feita quando houver flores, frutos ou fluxos de crescimento de brotos. Ou seja, poda é realizada preferencialmente quando as árvores não estão dando flores, frutos ou folhas novas e a melhor época para podar normalmente é logo após a colheita.

A remoção de ramos fracos, subdimensionados, mortos ou doentes de dentro da estrutura de árvores velhas normalmente resulta na promoção da floração e frutificação. Isto é particularmente verdadeiroparaárvores velhasqueficaram improdutivas porvários anos.

Os galhos que estão em contato com o solo também devem ser removidos, visando a elevação da “saia” do mangostanzeiro, o que facilita a colheita manual de frutos (Figura 43). Árvores com folhagem densa geralmente produzem frutos apenas nas pontas dos galhose,consequentemente,muitodoseupotencialdefrutificaçãopodeserperdido.Uma poda criteriosa, aumentando a penetração de luz na copa das árvores, é, portanto, uma prática desejável. A poda severa do mangostão pode, no entanto, reduzir consideravelmente o nível de produção (ALMEYDA; MARTIN, 1976). Portanto, o corte drástico das árvores deve ser evitado.

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Figura 43. a) Árvores com folhagem densa sem poda de formação e com as pontas dos galhos tocando o solo e b). Árvore podada com elevação da “saia” do mangostanzeiro. Foto: Hosakatte Niranjana Murthy et al. (2022).

No corte de um galho, a prática normal de três cortes é desejável. O primeiro corte é feito por baixo a cerca de 15 cm do tronco principal. O segundo corte é feito por cima a cerca de 30 cm do corte. Assim, o primeiro corte protege contra rachaduras à medida que o ramo se afasta. O terceiro corte para retirar o toco deve então ser feito no tronco principal ou nabifurcação do galho. Asuperfíciecortadadeveserprotegidacom um produto (calda bordalesa ou calda sulfocálcica) de poda comercial

Alternativamente,ousodeporta enxertosanõestambémtemsidosugerido.NaTailândia, para as plantas de mangostão que levam de 12 a 20 anos para frutificar, pequenos ramos internos são podados de plantas velhas e improdutivas para estimular a produção.

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RALEAMENTO DE FRUTOS

A maior frutificação do mangostanzeiro ocorre nos ápices dos ramos expostos à luminosidade. Geralmente cada ápice de ramo apresenta apenas um fruto, entretanto podem ocorrer dois ou mais frutos por ápice ou mesmo em gemas perto do ápice, causando competição e gerando frutos de menor tamanho (Figura 44). Neste caso, o produtor deve manter somente o fruto localizado no centro. O raleamento tem como objetivo reduzir o número de frutos na árvore para estimular a produção de frutos maiores e com peso médio de 130 a 140 gramas, os quais obtêm melhores preços no mercado. A eliminação do excesso de frutos deve ser feita logo após a antese, não apresentando nenhuma vantagem quando aplicada a partir de determinado estádio de desenvolvimento do fruto (SACRAMENTO et al., 2007).

Figura 44. Ápice de ramo de mangostanzeiro com três frutos. Foto: Célio Kersul do Sacramento (2007)

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DOENÇAS E PRAGAS

É importante destacar que o mangostão não parece sofrer ataques graves das principais pragas e doenças (HUME, 1947).

1. Doenças

As seguintes doenças foram relatadas por Sacramento et al. (2007) atacando o mangostanzeironoBrasil: Queima do fio(Koleroga noxia)emurchado mangostanzeiro.

Queima-do-fio (Koleroga noxia). Essa doença tem sido relatada em plantios de mangostão do Pará, não havendo registros de sua ocorrência em plantios na Bahia (Figura 45). De acordo com Almeyda e Martin (1976), a queima do fio é comum em mangostanzeiros cultivados em Porto Rico, sendo encontrada também em cacaueiro, cafeeiro e seringueira, ocorrendo quando há excesso de sombra e umidade. A fase vegetativa do fungo ocorre como um filamento, que primeiro começa sobre os ramos menores. Quando o fungo alcança as folhas, forma um filme esbranquiçado sobre o limbo e então os ramos jovens são cobertos pelo filamento. Alguns frutos, principalmente aqueles em desenvolvimento, são cobertos com o filamento e secam. As folhas começam aperderobrilho,tornam semarrom claraseeventualmentedecoloraçãomarrom escuras ou mesmo negras. Neste estágio, elas se desprendem do ramo, porém permanecem suspensas por um fio semelhante à teia de aranha, o que constitui a melhor característica para o seu mangostanzeiros acima de 15 anos, em espaçamento de 10 m x 10 m, pode se considerar como boa produção 600 frutos por planta, o que resultaria em uma produtividade de 6 t.ha 1 .

FIGURA 45. Folhas do mangostanzeiro com sintomas de ataque de queima-do-fio. Foto: Célio Kersul do Sacramento (2007).
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Murcha do mangostanzeiro. Na região sul da Bahia, a murcha do mangostanzeiro tem se constituído no principal problema fitossanitário dessa espécie frutífera. A doença tem sido detectada principalmente em mangostanzeiros frutíferos, e as plantas atacadas caracterizam se por apresentar sintomas iniciais de amarelecimento, queda de folhas e murchamento dos frutos. Em menos de 1 mês, após os primeiros sintomas, a planta fica com aspecto de queimada e reduzida apenas a ramos secos (Figura 46). O ataque tem sido observado em mangostanzeiros frutíferos nos municípios de Una, Taperoá, Ituberá e Tancredo Neves, tanto em plantios comerciais como em plantas isoladas. Amostras de raízes de plantas atacadas foram analisadas no Labotatório de Fitopatologia do Centro de Pesquisas do Cacau (CEPEC/ CEPLAC) e, de acordo com Bezerra et al. (2003), foram encontrados diversos fungos associados às raízes de mangostanzeiros atacados: Mycoleptodiscus sp, Lasiodiplodia theobromae, Ganoderma philippi, Fusarium solani, Phytophthora sp., Beltrania e Cilindocladium sp., Xylaria sp., Cytospora sp. e Rosellinia sp. Não há resultados conclusivos, estando o problema em observação. Mudas plantadas nas covas onde houve morte do mangostanzeiro, não apresentam nenhum sintoma da doença na fase vegetativa.

Figura 46. Murcha do mangostanzeiro. Foto: Célio Kersul do Sacramento (2007).
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Outras doenças que causam problemas ao mangostanzeiro, como cancro do tronco e podridão marrom da raiz, são relatadas por Yaacoob e Tindall (1995).

Cancro do tronco (Zignoella garcineae P. Henn.). Na Malásia, esse fungo provoca a formação de galhas em ramos novos, as quais avançam para ramos adultos e, eventualmente, provocam a morte da parte infectada. Em casos sérios de infecção, a planta pode morrer, por isso, recomendam se o corte e a queima da parte afetada, para prevenir a dispersão da doença.

Podridão marrom da raiz (Phellinus noxius (Córner) G. H. Cunn) e podridão vermelha da raiz (Ganoderma sp.). Essas doenças, que ocorrem na Malásia, causam sérios problemas ao cultivo do mangostanzeiro. Ambas resultam de infecções das raízes, pelo contato com esporos de tocos podres de cultivos anteriores. As lesões desenvolvem se no tronco e são seguidas pelo murchamento das folhas. O controle consiste, principalmente, em remover ou queimar os troncos derrubados, antes da implantação do cultivo. As lesões marrons das raízes podem ser tratadas com fungicidas.

Duas doenças generalizadas, tais como: cancro do caule e fuligem estão discriminadas na Tabela 8

Tabela 8. Principais doenças do mangostão e seu controle.

Doenças Danos Controle

Cancro do caule, Zignoella garcineae.

A doença ataca ramos e caules. As folhas murcham e caem causando a morte da planta. As hastes tornam se cancerosas.

As plantas atacadas por este fungo devem ser completamente erradicadas, as partes infectadas devem ser queimadas para impedir a propagação da doença. Fuligem, Corticum salmonicolor.

Ataca os galhos, fazendo com que as folhas murchem, sequem e morram.

As áreas afetadas ficam rosadas.

Fonte: Mohd. Khalid and Rukayah (1993).

Melhorar a aeração e a penetração da luz solar por meio da poda de ramos sobrepostos reduzirá a infecção. Raspe e pinte a parte afetada com Tridemorth (Calicin).

Aqueimadefios,causadapor Pellicularia koleroga,foiregistradaemPortoRico,EUA e em outros lugares sob condições de excesso de sombra e umidade (ROGER, 1951). As hastes menores são atacadas primeiro e a doença torna se severa quando ataca as folhas, formando uma película esbranquiçada sobre a lâmina. As folhas ficam marrom claras e depois escurecem antes da abscisão. A remoção de alguma sombra e a aplicação de calda bordalesa ou outros fungicidas de cobre podem ser usados para controlar a doença.

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As doenças fúngicas da mancha foliar causadas por espécies de Pestalotia e Leptostoma podem causar danos menores (ROGER, 1951; SU, 1993).

Ocasionalmente, antracnose e doença bacteriana da bainha foliar foram registradas. O controle é possível com fungicidas comuns.

Botryodiplodia theobromae, uma podridão de frutos, não ataca as árvores, mas pode ser um problema para a podridão de pós colheita.

2. Pragas

As seguintes pragas foram relatadas por Sacramento et al. (2007) atacando o mangostanzeiro no Brasil: abelha arapuá ou abelha cachorro (Trigona spinipes), ácaros (Tetranichus sp.), tripes (Thrips sp.), etc.

Abelha-arapuá ou abelha-cachorro (Trigona spinipes) Essas abelhas danificam os botões florais e o fruto em crescimento, causando ferimentos na sua superfície. Dessas feridas, exsuda uma resina amarela, conferindo ao fruto um aspecto rugoso. Os danos causados pelas abelhas arapuá são externos e não afetam a parte comestível dos frutos, entretanto estes ficam com o aspecto visual comprometido, é rejeitado por mercados mais exigentes. A medida mais viável de controle dessa praga consiste na eliminação de seus ninhos, num raio de 500 m do pomar. Porém, essa prática não é de fácil execução (SACRAMENTO et al., 2007). Ácaros (Tetranichus sp.). O mangostão atacado por ácaros apresenta, externamente, aspecto ferruginoso.Emboranãohajadanointerno enãosejalimitanteàcomercialização, o aspecto ferruginoso dificulta a colheita e a classificação dos frutos quanto ao estágio de maturação (Figura 47). Em outras frutíferas, recomendam se inspeções periódicas para detectar a presença de ácaros, utilizando se de uma lente de aumento (10x) e, em caso de danos econômicos, tem sido utilizada a aplicação de acaricidas específicos e enxofre. No caso do mangostanzeiro, apesar dos danos causados, não tem sido aplicado nenhum produtoparacontroledos ácarose,especificamentenocasodeaplicaçãodo enxofre,pode comprometer a qualidade do fruto, na comercialização, pelo odor desse produto químico.

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Tripes (Thrips sp.). O ataque de tripes ocorre em plantios do Pará, sendo a maior frequência no período de estiagem, e os sintomas nos frutos atacados assemelham se aos danos provocados por ácaros (Figura 48).

Figura 47. Mangostão com sintomas de ataque por ácaros. Foto: Célio Kersul do Sacramento (2007). Figura 48. Mangostão danificado por Tripes. Foto: Célio Kersul do Sacramento (2007).
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Além dessas pragas, em outros países produtores, as formigas, tripes, ácaro vermelho, cochonilhas, morcegos, ratos e nematoides têm sido relatados como problemas no cultivo do mangostanzeiro (YAACOOB; TINDALL, 1995) Casos isolados de infestação por ácaros e cochonilhas também foram relatados.

Formigas. Uma praga comum, relatada em Porto Rico e em outros lugares, é uma pequena formiga, Myrnelachista ramulorum Wheeler. Essas formigas, que têm tórax amarelo e cabeça e abdômen azul escuro, vivem em grandes colônias nos galhos das árvores e em tocos velhos e em decomposição. Eles perfuravam túneis longos e irregulares através do tronco central da árvore e estes também podem se estender até os galhos vivos, causando o murchamento nos meristemas apicais ou nos pontos de crescimento (danificando o novo crescimento). As plantas às vezes são estimuladas a desenvolver uma massa de folhagem densa. Algum controle pode ser obtido pela poda de galhos mortos, remoção de tocos velhos e pulverização das colônias com malathion.

Tripes (Thrips spp.), ácaro vermelho (Tetranyclnus spp.) e outras espécies de ácaros têm sido relatados como infestando flores e danificando a superfície do fruto, tornando o inadequado para exportação.Essas pragas sãonormalmentepulverizadas nafloração com pó de enxofre ou carbaril ou organofosfatos.

Escama do coco. As escamas são frequentemente encontradas infestando as plantas adultas. A escama do coco (Aspidiotus destructor Sig.) forma colônias na superfície inferior das folhas, causando o desenvolvimento de manchas amarelas e geralmente reduzindo o vigor.

As lagartas e gafanhotos podem causar alguns danos às folhas. Uma lagarta mastigadora defolhas na Índiapodeseramesmaque atacanovos brotosnas Filipinas (Eupterote favia Cramer) e que foi identificada como Orgyra sp. da família Lymantridae da mariposa touceira. Lagartas de várias espécies podem danificar brotos e folhas jovens e os capsídeos podem desfolhar as plantas (GALANG, 1955).

Besouros amarelos (Hypomeces squamosus F.). Esses insetos mastigadores de folhas foram relatados no norte da Malásia. Em infestações graves, as novas folhas produzidas durante um fluxo podem ser severamente danificadas.

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A cigarrinha do mato (Onomachus leuconotus Serv.) é uma praga de mangostões na Malásia. Os adultos põem ovos nos galhos e as larvas se alimentam dos tecidos moles dentro do galho. Em infestações severas, os ramos infectados podem apresentar uma séria perda de vigor.

Nematoides. Os relatórios publicados sobre a infestação de nematoides em raízes de mangostão são muito limitados, mas foi observado por Chawla et al. (1981) que Tylenchulus semipenetrans Cobb., o nematoide dos citros, foi encontrado em raízes de mangostão cultivados em Tamil Nadu, Índia. As fêmeas adultas foram encontradas aderidas às raízes e os estágios larvais foram encontrados no solo ao redor das raízes. Os efeitos desta infestação no crescimento das árvores não são conhecidos.

Apenas algumas pragas de insetos foram relatadas, possivelmente devido à seiva amarga do mangostão. As principais pragas de insetos são lagartas mastigadores de folhas (Stictoptera sp.) que se alimentam de folhas e brotos jovens, o bicho mineiro (Phyllocnictis citrella) que perfura as folhas e besouros que põem ovos nos frutos e suas larvas se alimentam da polpa e das sementes. As brocas do fruto (Curculio sp.) também são notáveis no distrito de Mantin, Negeri Sembilan, Malásia. Nas Filipinas, a lagarta do-mato (Eupterote favia) se alimenta das folhas; a escama do coco (Aspidiotus destructor) forma colônias na face inferior da folha, causando amarelecimento das manchas e prejudicando o crescimento das plantas (GABRIEL, 1975). As três pragas generalizadas estão discriminadas estão na Tabela 9.

Tabela 9. Principais pragas do mangostão e seu controle.

Controle Mastigador de folhas, Stictoptera sp. (Noctuidae)

Pragas Danos

Pulverizar com inseticida sistêmico, como dimetoato e methamidophos. Pulverizar no intervalo de duas semanas. Bicho mineiro (Phyllocnictis citrella) (Lyontiidae)

Broca do fruto, Curculio sp. (Curculionidae)

No estágio larval come folhas e brotos jovens. Muitas vezes ocorre no canteiro. Se a população for alta, a planta ficará desfolhada.

As larvas são frequentemente encontradas em brotos jovens. A fase larval faz túneis na epiderme. Adulto uma mariposa.

Se a infestação não for grave, o inseto pode ser controlado por agentes biológicos. Se o nível de dano for alto, o controle pode ser realizado por pulverização com methidithion, abamectin e fenthion.

O estágiolarval ataca os frutos do estágio amadurecimento ao maduro. A broca come o mesocarpo, arilo e semente. Cada fruto pode abrigar até 8 larvas. As larvas saem da fruta para o solo e empupam mais tarde,tornando se besouros adultos

Nenhuma recomendação de controle disponível. Destrua todos os frutos afetados para reduzir a população de besouros no campo.

Fonte: Mohd. Khalid and Rukayah (1993).
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PRODUTIVIDADE

Bin Osmán e Milan (2006) relatam que, em condições ótimas de crescimento, na primeira colheita há rendimentos de 100 a 300 frutos de árvore 1 e até 500 em árvores em pleno crescimento. Os mesmos autores apontam que a produtividade tem aumentado entre 1.000 e 2.000 frutos nas árvores após o décimo ano de início da fase produtiva e especificam que, com uma densidade populacional de 15 árvores ha 1, a produtividade é de 4,5 t ha 1 .

Sob condições ideais na Malásia, as árvores de mangostão começam a frutificar 6 8 anos após o plantio. O rendimento varia de árvore para árvore e de estação para estação. A primeira colheita pode render 100 300 frutos por árvore e cerca de 500 frutos em uma árvore totalmente crescida. O rendimento aumenta constantemente até 1.000 2.000 frutos por árvore nos 10 20 anos de cultivo. Na Tailândia, o rendimento médio em 1987 foi de 4,5 t/ha. Para um peso médio estimado de 75 g por fruto e 150 árvores/ha, isso equivale a 400 frutos por árvore (VERHEIJ, 1992).

Árvores em dois pequenos pomares nas colinas Nilgiri no sul da Índia produziram em média 360 frutos por ano durante um período de 18 anos, as melhores árvores produzindo consistentemente até 500 frutos por ano (VERHEIJ, 1992). Juanda e Cahyono (2000), apontam que na Indonésia, a partir de uma produção inicial de 10 a 20 frutos de árvore 1 aos cinco anos de idade, são registrados aumentos de mais de 1.000 frutos de árvore 1 após 15 anos. Inclusive, são relatados casos de produção de até 1.500 frutos por árvore (KERSUL, 2001).

Na Austrália, os rendimentos são variáveis, e cerca de 400 900 frutos podem ser colhidos de cada árvore adulta (CHAY PROVE, 2004). Árvores mais velhas (45 anos) podem produzir 3.000 frutos por árvore e então diminuir o rendimento (KANCHANAPOM; KANCHANAPOM, 1998).

No México, Díaz Fuentes e Picón (2007) relatam que, em uma plantação de 31 anos, a produção média foi de 350 frutos de árvores 1 por ano. Kersul (2001) estima que uma boa produção é aquela em que são obtidos cerca de 600 frutos para cada árvore de 15 anos espaçadas de 10 m a 10 m, o que equivale a uma produtividade de 6 t ha 1 .

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Na Indonésia, a produção aumenta de uma média de 10 20 frutos por árvore após o 5º ano para mais de 1.000 frutos por árvore após o 15º ano, conforme mostrado na Tabela 10 (DEDE JUANDA; BAMBANG CAHYONO, 2000).

Tabela 10. Produção de frutos de mangostão de acordo com a idade da árvore na Indonésia.

Idade da árvore

Número de frutos produzidos por ano

5 anos 10 20

6 anos 40 60

7 anos 70 90

8 anos 100 - 150

9 anos 200 - 300

10 anos 350 - 500

15 anos em diante 1.000 1.500 Fonte: Dede Juanda; Bambang Cahyono (2000).

Normalmente, a árvore do mangostão é pouco perturbada pela colheita, mas uma atenção cuidadosaaoseu estado e cuidadosapós acolheita sãoimportantesparagarantirmelhores rendimentos e melhor qualidade dos frutos no ano seguinte. Portanto, as árvores tendem a produzir em anos alternados (VIETMEYER, 1975). Uma safra leve estimada é de 100 frutos por planta, enquanto uma safra pesada é de 500 600 ou mais frutos por planta (FAIRCHILD, 1915; POPENOE, 1928; GALANG, 1955). Rendimentos de 200 800 frutos por planta adulta foram relatados em locais com bons solos e foram observados até 2.000 frutos/árvore. As colheitas médias obtidas são 400 700 frutos/árvore. Com 15 árvores/ha resultará em mais de 4.500 kg + frutos/ha.

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PRÁTICAS DE CULTIVO UTILIZADA NA INDONÉSIA

A produção de mangostão na Indonésia é geralmente em pequena escala, e as árvores são frequentemente cultivadas em quintais e em encostas íngremes. Os mangostões são geralmente cultivados consorciados com outras culturas (policultivos), como banana (Musa spp.), coco (Cocos nucifera), mamão (Carica papaya), mandioca (Manihot esculenta) etc., visando proporcionar as plantas juvenis de mangostão o sombreamento durante os primeiros 4 anos de idade.

Os mangostões são propagados a partir de sementes ou por métodos vegetativos, como enxertia e rebento. Novas variedades de mangostão e material de plantio são propagados apartirdesementescertificadas registradas noDepartamentode Agricultura da Indonésia (IAQA, 2008). O material vegetativo utilizado para novas plantações tem geralmente um a dois anos de idade e cerca de 30 cm de altura. As árvores de mangostão são de crescimento lentoelevanomínimoseis anos paraaárvoreatingiramaturidadeecomeçar a dar frutos.

Os pomares geralmente consistem em uma variedade de mangostão, e as árvores jovens são comumente plantadas no início da estação chuvosa. As plantas são normalmente espaçadas a uma distância de 10 m por 10 m com outras plantas, como banana e coco plantadas no meio para fornecer sombra. Em terrenos íngremes, as parcelas são em terraços (Figura 49). Na base de cada terraço há uma vala para recolher folhas caídas e restos vegetais durante o período de frutificação e colheita.

Figura 49. Plantação de mangostão em terraceamento e vala. Foto: Department of Agriculture, Fisheries and Forestry Biosecurity (2012), Canberra, Austrália.
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Não existem técnicas hortícolas específicas necessárias para produzir mangostões. As árvores requerem pouco cuidado até que a floração comece quando a árvore atinge 6 a 10 anos de idade.

As árvores de mangostão requerem umidade adequada e boa drenagem, especialmente durante o estágio inicial de estabelecimento. A cobertura morta é espalhada ao redor da base das árvores jovens para manter o solo úmido. A cobertura morta também atua como fertilizante orgânico, enriquecendo o solo com nutrientes. À medida que a árvore amadurece, o solo é coberto naturalmente pela queda de folhas e restos vegetais das plantas vizinhas. O solo é limpo do excesso de folhas a cada dois meses ou mais, e as folhas são queimadas. Durante o período de frutificação e colheita, o pomar é limpo de restos vegetais com mais regularidade.

As árvores são levemente podadas antes da floração para permitir que mais luz solar penetre. As árvores são novamente podadas após a colheita para promover um novo crescimento. Os produtores podam galhos velhos, doentes e danificados, galhos que tocam o solo e ventosas (chupões) que crescem da base do tronco.

As ervas daninhas são controladas manualmente ou naturalmente através de cobertura morta. As pulverizações químicas não são uma prática comum para o manejo de plantas daninhas.

A irrigação não é necessária, pois a chuva natural fornece água suficiente para as plantas. Além disso, a sombra da vegetação circundante evita a perda de água e a cobertura morta mantém o solo úmido.

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Capítulo II

MATURAÇÃO, COLHEITA, PÓS-COLHEITA E COMERCIALIZAÇÃO

Vicente de Paula Queiroga Josivanda Palmeira Gomes Nouglas Veloso Barbosa Mendes Acácio Figueiredo Neto Alexandre José de Melo Queiroz Bruno Adelino de Melo

Esther Maria Barros de Albuquerque (Editores Técnicos)

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MATURAÇÃO

Introdução Garcinia mangostana ou mangostão, muitas vezes conhecida como a “Rainha das Frutas”, é uma importante fruta tropical desejada por sua aparência distinta e sabor único. O mangostão é dividido em 3 partes principais, como casca, polpa/arilo e partes da semente apomítica (Figura 50). O mangostão tem uma casca distinta que não pode ser consumida e deve ser separada da polpa. A parte carnuda geralmente consumida tem um sabor único e aparência distinta (TE CHATO, 2007; CHAOVANALIKIT et al., 2012).

Figura 50. Distintas partes do mangostão. Foto: Parijadi (2019).

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A casca do mangostão é geralmente uma baga lisa, em forma de globo, com cálice persistente de coloração espessa e roxa (durante o processo de maturação) (CHAOVANALIKIT, et al., 2012). A casca de mangostão também contém vários compostos antioxidantes e antimicrobianos que já se estabeleceram para serem consumidos como suplemento de saúde. O mangostão como composto antimicrobiano e antioxidante no pericarpo do fruto foi isolado com sucesso em 1987 pela primeira vez (MAHABUSARAKAM; WIRIYACHITRA, 1987; SHIBATA et al., 2013).

A parte polpa/arilo geralmente possui 4 8 segmentos incluindo 1 ou 2 segmentos que contêm sementes apomíticas (PAULL; KETSA, 2002; 2014). A parte de polpa branca leitosa geralmente consumida fresca como sobremesa. Como alimento processado, os frutos do mangostão foram ainda aplicados como calda pesada, geleia, calda de purê e sabor para sorvete ou suco. A polpa é doce, ligeiramente ácida e de sabor suave a distintamente ácido e é aclamada como requintadamente saborosa e deliciosa (PALAKAWONG; DELAQUIS, 2018).

Frutas climatéricas. Com base em seu modo de amadurecimento, os frutos são categorizados em duas categorias, como frutas climatéricas e frutas não climatéricas. O amadurecimento de frutos climatéricos é dependente da explosão concomitante de etileno, enquanto o amadurecimento de frutos não climatéricos não é afetado pela existência de etileno. A progressão do amadurecimento é indicada por mudanças na cor, textura e sabor da casca. O exemplo de frutas climatéricas são banana, mamão, manga e mangostão. Em contraste, morango, kiwi e pimenta são listados como frutas não climatéricas, que não são afetadas pela explosão concomitante de etileno ao redor dos frutos (KLIE et al., 2014; OSORIO et al., 2012; LOMBARDO et al., 2011).

Sendo assim, o mangostão é uma das frutas climatéricas que muda de aparência devido à existência de etileno ao redor da fruta. O processo de amadurecimento do mangostão é afetado pela existência de etileno ao redor do fruto (Figura 51). O etileno muda a cor do mangostão de amarelo esverdeado para roxo enegrecido. Vários pesquisadores classificaram os estágios de maturação do mangostão pela cor (PALAPOL et al., 2009; TONGDEE; SUWANAGUL, 1989; LERSLERWONG et al., 2013). Consequentemente, estudo anterior determinou os estágios de maturação do mangostão a partir da medição de vários parâmetros físicos, tais como: os sólidos solúveis totais (SST, %brix), acidez titulável (AT, pH), endurecimento do pericarpo, massa fresca (grama), diâmetro do fruto (cm) (PALAPOL et al., 2009; DORLY et al., 2008; KURNIAWATI et al., 2011).

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Figura 51. Produção de etileno durante as fases de maturação do mangostão. Foto: Palapol et al. (2009).

Estudos foram conduzidos sobre índices de colheita, alterações físico bioquímicas, respiração e produção de etileno (EP) e armazenamento em atmosfera modificada do fruto do mangostão. O tempo de maturação dos frutos nos estádios de coloração (CS) 1 e 0 para atingir a maturidade (CS 5) a 25 °C foi de 14 e 7 dias, respectivamente. Cada estágio de CS 0 4 exigiu 1 2 dias de diferença para amadurecer. Frutos maduros de CS 0 4 tiveram a melhor qualidade alimentar, enquanto que os de (CS) 1 tiveram sabor inferior. O padrão respiratório do fruto do mangostão assemelha se ao do fruto climatérico com taxa de respiração aumentando de 10 a 30 ml/kg/h e EP aumentando de 2 a 15 microl/kg/h. O pico de EP ocorreu 2,5-3 dias após o pico climatérico (CP). A água aplicada através da superfície de corte do pedúnculo do fruto causou aumentos da respiração e EP e o fruto tornou se CS 4 mais rápido em 2 dias. A aplicação de etileno resultou em rápida ocorrência de CP, que seria mais rápida com maior concentração de etileno aplicado. Como resultado, desencadeou a produção de etileno autocatalítico. Os aumentos de respiração e EP podem ser induzidos por 6 24 horas após a queda da fruta no chão. O mangostão com pedúnculo e cálices de frutos mergulhados em solução de GA3 a 1.000 ppm e frutos inteiros revestidos com emulsão de 10% Sta fresh 7055 apresentaram menores concentrações de CO2 interno e etileno em comparação com o

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controle durante os primeiros 15 dias de armazenamento a 13 °C. Após outros 15 dias sob a mesma condição de armazenamento, aparência externa e qualidade dos frutos tratados com GA3 eram comercializáveis (NOICHINDA, 1992).

Progressão do amadurecimento. Na última década, a tendência crescente de produtos frescos, incluindo frutas e qualidade de produtos agrícolas e alimentícios, tornou se um dos principais problemas na indústria de alimentos. O processo de amadurecimento dos frutos é um processo que envolve a regulação coordenada de inúmeras vias metabólicas que influenciam a cor, o sabor, o aroma e a textura. Além disso, inúmeros esforços para prolongar a vida útil dos produtos agrícolas foram deliberadamente realizados por exportadores para atender à demanda dos consumidores, no caso do fruto de mangostão é um novo desafio, principalmente quando se pretende apoiar a progressão do seu amadurecimento de pós colheita.

A rápida progressão do processo de amadurecimento dos frutos irá degradar a qualidade dos frutos. Enquanto a crescente demanda pelo produto de frutas frescas faz incontáveis esforços para prolongar a vida útil das frutas. Várias tecnologias pós colheita (baixa temperatura, revestimento comestível exemplo de cera de carnaúba) foram extensivamente desenvolvidas para alcançar a condição mais favorável para melhoria da qualidade ou melhoria da vida útil (DE MORAES et al., 2012; DAVE et al., 2017). Compreender as mudanças que ocorrem durante o amadurecimento é necessário para avaliar a maturidade ideal da colheita e a qualidade da fruta à medida que é comercializada para o consumidor, bem como para elaborar estratégias adequadas de embalagem e manuseio pós-colheita.

Os estágios de amadurecimento do mangostão são geralmente determinados pela mudança de cor de amarelo esverdeado para roxo escuro (Figura 52) (PALAPOL et al., 2009; TONGDEE; SUWANAGUL, 1989). O estágio 2 dos estágios de amadurecimento do mangostão é descrito como 51 a 100% de manchas rosadas espalhadas. O estágio 2 dos estágios de maturação do mangostão é selecionado para ser uma qualificação padrão para o procedimento de exportação para atingir o estágio final (estágio cinco ou seis) para consumo quando chega ao país de destino da exportação declarado pelo CODEX, SNI (SNI 01 3211 1992), Norma Agrícola Tailandesa (TAS 2 2013) e Norma ASEAN para mangostão (ASEAN Stan 10, 2008). O estágio 2 do amadurecimento do mangostão também é selecionado como um estágio adequado para ser exportado, pois a produção de etileno aumenta após o estágio 2.

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Figura 52. Estágios de maturação do mangostão. Foto: CENTROHS, IPB.

É importante frisar que os frutos do mangostão são colhidos a partir de 103 dias após a floração. Os mangostões amadurecem em taxas diferentes; portanto, os frutos colhidos de uma árvore individual podem estar em vários níveis de maturidade. Os mangostões indonésios são geralmente colhidos quando a fruta é de cor rosa a vermelha (índice de maturidade4ou5,Figura52),poisestestipossão maispreferidosparaosmercadoslocais e os mercados correntes de exportação. A Indonésia tem recomendado que a fruta intacta do mangostão com índicedematuridade2 3seriaexportadoparaaAustrália.Estesfrutos são considerados não hospedeiros condicionais para as moscas das frutas.

O desenvolvimento da cor durante os estágios de amadurecimento do mangostão com base na observação visual foi relatado em estudos anteriores (PALAPOL et al., 2009; TONGDEE; SUWANAGUL, 1989; DANGCHAM; KETSA, 2007). A descrição detalhada das mudanças decor duranteos estágios de amadurecimento domangostãoestá especificada na Tabela 11

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Tabela 11. Índice de maturidade do mangostão da Indonésia e a descrição física dos estágios de maturação do fruto do mangostão.

Fonte: IAQA (2011).

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No estudo realizado por Parijadi (2019), frutos mangostão de sete estádios de amadurecimento foram coletados em diferentes condições de amadurecimento, conforme apresentado na Figura 53

Figura 53. Avaliando as alterações metabólicas entre diferentes condições de colheita e maturação e o efeito do tratamento pós colheita em mangostanzeiro. Fonte: Parijadi (2019). Informações das amostras deste estudo Sete estádios de maturação foram coletados em diferentes condições de maturação. Amostras de condição “natural na árvore” foram coletadas a partir de 2016. Amostras “aleatórias na árvore” foram coletadas aleatoriamente de diferentes árvores e diferentes áreas de cultivo em 2018. O número mostrado nas figuras representa o estágio de maturação. Ambas as amostras de condição de amadurecimento foram analisadas em conjunto usando GC MS (Gas chromatography Mass Spectrometry). A condição “off tree” (fora da árvore) foi realizada utilizando o estágio dois como estágio inicial que permite o amadurecimento em temperatura ambiente até atingir o estágio seis de amadurecimento. Amostras “fora da árvore” serão usadas ainda como controle no tratamento pós colheita. O estágio dois foi coletado aleatoriamente e tratado com vários tratamentos pós colheita.

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Com base no resultado do estudo da Figura 53, a condição de amadurecimento em árvore mostrou a progressão do processo de amadurecimento de acordo com o acúmulo de alguns metabólitos precursores do aroma na parte da polpa e a quebra da pectina na parte da casca. Curiosamente, uma tendência semelhante foi encontrada na condição de amadurecimento “fora da árvore”, embora a progressão do processo de amadurecimento observado através de mudanças de cor tenha ocorrido muito mais rápido em comparação com o amadurecimento “na árvore”. Além disso, o tratamento de baixa temperatura é mostrado como o tratamento mais eficaz para prolongar a vida útil do mangostão entre todos os tratamentos pós colheita testados neste estudo em comparação com o tratamento controle. Após o tratamento pós colheita, um total de 71 e 65 metabólitos foram anotados na parte da casca e da polpa do mangostão, respectivamente. Vários metabólitos constituídos (xilose, galactose, ácido galacturônico, glucuronato, glicina e ramnose) foram diminuídos após o tratamento na parte da casca. No entanto, o tratamento de baixa temperatura não mostrou diferenças significativas em comparação com um tratamento de temperatura ambiente na parte da polpa. As conclusões resultantes indicam claramente que há uma tendência semelhante de mudanças metabólicas entre as condições de amadurecimento na árvore e fora da árvore. Além disso, o tratamento pós-colheita influência direta ou indiretamente muitos processos metabólicos (processo de degradação da parede celular, qualidade do sabor doce ácido) durante o tratamento pós colheita. (PARIJADI, 2019)

Com relação ao estudo de tratamentos após colheita, os quatro conjuntos de tratamentos experimentais foram conduzidos durante este experimento: baixa temperatura (BT; 12,3 ± 1,4 °C); metil jasmonato (MeJa) 0,5 mM, e 5,0 mM de tratamento com ácido salicílico (SA). O armazenamento à temperatura ambiente (TA; 27 ± 3,4 °C) foi realizado como tratamento de controle (PARIJADI, 2019). Esses tratamentos pós colheita foram relatados anteriormente como um tratamento eficaz para prolongar a vida útil do mangostão (PIRIYAVINIT; VAN DOORN, 2011; CASTRO et al., 2012). O estágio dois do amadurecimento do mangostão foi usado como um estágio inicial antes de ser tratado com vários tratamentos pós colheita, ou seja, baixa temperatura e tratamento indutor de estresse usando ácido salicílico ou metil jasmonato. Todas as amostras tratadas foram deixadas amadurecer e avaliadas por 10 dias de armazenamento (Figura 54).

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Figura 54. Comparativo da aparência física de frutos entre a temperatura ambiente e vários tratamentos de temperatura após dez dias de armazenamento. Os frutos foram selecionados na maturidade verde púrpura (estágio dois) usando o parâmetro de mudança de cor como estágio inicial e foram tratados com vários tratamentos pós colheita. Os frutos foram então armazenados dentro dos recipientes em temperatura ambiente e baixa temperatura (12,3 ± 1,4 °C) por 10 dias. Fonte: Parijadi (2019).

A cor da casca durante o tratamento é mostrada na Figura 54. Quando colhido no estágio 2 (dia 0 após a colheita), a cor era amarelo esverdeado claro disperso com uma mancha rosada. No dia 2 após a colheita, a amostra controle (armazenamento em temperatura ambiente (TA) a 27 ± 3,4 °C) apresentou rápida mudança da cor da casca para vermelho e roxo. No dia 5, atingiu a cor roxo escuro e a cor permaneceu constante até o dia 10. Entre todos os tratamentos pós colheita, a baixa temperatura (BT) mostrou o efeito mais significativo para retardar o amadurecimento com base na cor da casca, enquanto o tratamento indutor de estresse (SI) não mostrou nenhum efeito significativo em relação ao controle (PARIJADI, 2019). Alterações semelhantes nos parâmetros físicos após o tratamento com BT estão de acordo com os resultados (tratamento semelhante) obtidos por Piriyavinit e Van Doorn (2011) e Castro et al. (2012) e é considerado um tratamento adequado para prolongar a vida útil do mangostão com base na cor da casca com boa reprodutibilidade

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Problemas fisiológicos ou distúrbio do látex amarelo na polpa ou arilo. No sul da Tailândia, o mangostão (Garcinia mangostana L.) é uma fruta importante e os mercados de exportação são promissores. Mesmo assim, as incidências de desordem de polpa translúcida (DPT) e desordem de gomose (gamboge ou resina) (DG) são ambos os principais problemas da produção de frutos de mangostão em trópicos úmidos (YAACOB; TINDALL, 1995). Portanto, a desordem de polpa translúcida (DPT) e a desordem de gomose (DG) são distúrbios fisiológicos de frutos de mangostão, pois a desordem de polpa translúcida (DPT) mostra se como água embebida pela polpa, enquanto a desordem de gomose (DG) é um latex amarelo na casca ou na polpa (PANKASEMSUK et al., 1996). Vale destacar que o látex amarelo (gamboge), considerado um distúrbio causado pelo acúmulo de látex amarelo no interior do fruto, é um grande problema no mangostão. Essa desordem ocorre e gera o sabor amargo do fruto no início da maturação (PAULL; KETSA, 2014; SUKATTA, et al., 2013).

Consequentemente, esta desordem tem rebaixado a qualidade do fruto que afeta sua comercialização e preço tanto no mercado interno quanto no mercado de exportação. A causa deste distúrbio permanece obscura. No entanto, estudos realizados por Mansyah et al. (2012) e Sdoodee; Chiarawipa, (2005 a, b) sugerem que a destruição das células epiteliais que circundam os ductos secretores de látex amarelo e o efeito do excesso de água em nove semanas após a floração podem causar esse distúrbio. A avaliação sobre a redução desse distúrbio já havia sido relatada em pesquisas conduzidas por Dorly et al. (2008) e Pechkeo et al. (2007), como regular a irrigação e aplicação de pulverização de cálcio durante o processo de amadurecimento do fruto na árvore.

Portanto, as incidências de desordem de polpa translúcida (DPT) e desordem de gomose (gamboge ou resina) (DG) são causadas pelo excesso de água durante o período de pré colheita, e geralmente levam à rachadura dos frutos (LUCKANATINVONG, 1996). Chutinunthakun (2001) constatou que o limite de incidência de DPT e DG de frutos de mangostão submetidos a excesso de água foi em torno de 9 semanas após a floração. Sdoodee e Limpun Udom (2002) relataram que a água poderia penetrar na casca do fruto e causar desordem de polpa translúcida (DPT) e desordem de gomose (DG).

Kheoruenromn (1990) sugeriu ainda que a deficiência de cálcio (Ca) pode causar rachaduras nos frutos em relação ao excesso de água na planta. Osotsapar (2000) relatou que o Ca pode prevenir a quebra de frutos. Limpun Udom (2001) descobriu que as concentrações de cálcio (Ca) e boro (B) na casca e na polpa de frutos normais (FN) de

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mangostão foram altas em comparação com frutos de desordem de polpa translúcida (DPT) e desordem de gomose (DG), enquanto a concentração de Boro na polpa de frutos normais (FN) foi menor do que aqueles de frutos DPT e DG. Um papel importante do B é apoiar a função do Ca na planta (LIM et al., 2001). A deficiência de boro limita o crescimento e o rendimento das plantas, apesar de que a deficiência de B não cause sintomas visíveis na planta (OSOTSAPAR, 2000).Callan (1986) e Meheriuk et al. (1991) indicaram quea aplicação dos compostos “CaCl2, Ca(OH2) e H3BO3” (cloreto de cálcio, hidróxido de cálcio + ácido bórico) por pulverização durante a fase de pré colheita pode reduzir o rachamento dos frutos em cereja. Além disso, os impactos do excesso de água e o desequilíbrio da deficiência de nutrientes essenciais no mangostão podem causar frutos em desordem de polpa translúcida (DPT) e em desordem de gomose (DG). Portanto, os sintomas de desordem de frutas (Figura 55) precisam ser investigados como uma diretriz para o manejo de fertilizantes para melhorar a produção de mangostão.

Figura 55. Aparências de arilo translúcido afetado por desordem de polpa (direita) e arilo normal (esquerda) em frutos de mangostão. Foto: DDM.

No experimento conduzido por Pechkeo et al. (2007), o solo do pomar de mangostão no distrito de Thung Song, na província de Nakhon Si Thammarat, era extremamente ácido a muito ácido (pH 3,92 4,92, solo: água = 1:5), e com poucos nutrientes essenciais para o crescimento da planta do mangostão. A aplicação dos compostos CaCl2 e H3BO3

[Tratamentos: concentrações de Ca e B pulverizados (wt/vol): (controle (sem pulverização), 5% CaCl2; 10% CaCl2; 5% CaCl2 + 0,5 mg kg 1B; 10% CaCl2+0,5 mg kg 1B] por pulverização (às 6, 7 e 8 semanas após a floração) pode aumentar as concentrações de Ca e B na casca e polpa de frutos de mangostão. Pulverizando com 10%

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CaCl2, a porcentagem de frutos normais (FN) aumentou, enquanto a porcentagem de frutos com defeito [desordem de polpa translúcida (DPT) e desordem de gomose (DG)] diminuiu. Dez por cento de pulverização de CaCl2 + 0,5 mg kg 1B poderia aumentar a eficiência do Ca para aumentar a proporção de FN:DPT e DG.

De acordo com o trabalho de pulverização de cálcio sobre os frutos na árvore efetuado por Dorly et al. (2011), a Figura 56 destaca a casca e o arilo do fruto do mangostão com e sem manchas de látex amarelas.

Figura 56. Casca do fruto (A e B) e arilo (C e D) com mancha de látex amarela e sem mancha de látex amarela, respectivamente, em frutos de mangostão. Foto: Dorly et al. (2011).
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Danos nos frutos durante a colheita e comercialização podem afetar mais de 20% dos frutos. O distúrbio de gamboge (gamose) ocorre onde o látex penetra na polpa (arilo), tornando a amarela e dando lhe um sabor amargo. O gamboge também se move para a superfície externa da fruta. Este é um distúrbio pré colheita de causa desconhecida que dificulta a separação do arilo do tecido circundante, mesmo em frutos maduros; provoca também o endurecimento do pericarpo. Isso não deve ser confundido com lesão por impacto que leva ao endurecimento do pericarpo no ponto de impacto e colapso do arilo, desidratação, desenvolvimento de cor rosada ou escurecimento (TONGDEE; SUWANAGUL, 1989). Uma queda de 10 cm pode causar danos leves no pericarpo, indicados como endurecimento no ponto de impacto em 24 h. Quedas mais altas causam danos significativamente maiores e muitas vezes levam a desclassificação da fruta (TONGDEE; SUWANAGUL, 1989; KETSA; ATANTEE, 1998). Outro distúrbio do fruto do mangostão é o arilo translúcido (nuekaew) que se acredita ser induzido pela chuva forte durante o crescimento e desenvolvimento do fruto, mesmo que pouco antes da colheita (LAYWISAKUL, 1994). A gravidade específica da fruta com arilo translúcido é >1,0, enquanto a do arilo normal é <1,0. Isso permite a separação dos frutos flutuando-os na água (PODEE, 1998). Os frutos com arilo translúcido apresentam menor SSC (teor de sólidos solúveis) e AT (acidez titulável) do que frutos normais (PANKASEMSUK et al., 1996).

Critérios decolheita. Um estudo depós colheitasobreoamadurecimento do mangostão, realizado na Indonésia, mostrou que a vida de prateleira mais longa de 9 dias foi obtida quando os frutos foram colhidos no estágio em que manchas roxas uniformes cobriam aproximadamente um quarto do pericarpo do fruto (HARJADI et al, 1989). Outro estudo confirmou que o momento ideal para a colheita era quando 25% da casca da fruta tinha desenvolvido uma cor roxa. Tais frutos amadurecem normalmente em um dia, quando armazenados em temperatura ambiente, após o desprendimento da árvore (DARYONO, SOSRODIHARJO, 1986).

A maturidade comercial foi estudada na Indonésia por Sosrodiharjo (1980) e ele considerou que o crescimento físico máximo dos frutos foi alcançado 103 dias após a plena floração, quando a acidez da polpa atingiu seu maior valor e manchas vermelhas eram aparentes na casca. Os frutos colhidos após 90 dias, na fase de maturação verde, amadureceram normalmente à temperatura ambiente; a casca amolece após 14 dias,

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acompanhada de uma leve mudança de cor, mas os frutos acabam se tornando semelhantes aos frutos amadurecidos na árvore.

Os produtores normalmente colhem apenas os frutos que se tornaram violeta púrpura de acordo com a escala de cores (estágios de 0 a 6). A colheita de frutos antes de atingir a maturidade ideal de colheita está associada a um fluxo excessivo de látex no ponto de desprendimento dos frutos. O látex causa manchas em outros frutos e, para evitar isso, os frutos não devem ser colhidos antes de atingirem o estágio 2. À medida que a maturidade aumenta, aumenta a suscetibilidade dos frutos a danos mecânicos. As frutas no estágio 5, por exemplo, são incapazes de suportar uma força de compressão de 6 kg (TONGDEE; SUNWANAGUL, 1989).

COLHEITA

A colheita é a fase da exploração comercial da cultura do mangostão, na qual o produtor planeja, organiza, executa e supervisiona todas as tarefas que permitem a colheita e colocar a fruta no mercado. O produto colhido deve satisfazer os requisitos do cliente, em termos de qualidade, preço e condições de entrega. É importante destacar que a colheita do mangostão é feita com base na experiência dos produtores, que geralmente utilizam a cor e o tamanho do fruto como indicadores de maturação fisiológica e de frutos de qualidade, respectivamente.

Os frutos são colhidos dois ou três dias depois de terem mudado de cor, de verde para violeta(Figura57).Estafasedecolheitadeterminaaqualidadefinaldosfrutos.Acolheita precoce (casca amarela esverdeada com manchas rosadas) afeta o sabor da polpa.

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Figura 57. Frutos colhidos em fase de mudança de cor, de verde para violeta. Foto: Craig Taylor. Assim, a árvore de médio porte irá produzir mais frutos e também irá facilitar a colheita manual pelo produtor, cujo método utiliza uma variedade de ferramentas manuais, dos frutos localizados nos galhos baixos por meio de uma tesoura de poda e aqueles frutos em posição mais elevadas da planta, são colhidos por meio de varas compridas que possuem em uma das extremidades um saco de pano preso para coletar o fruto; ou varas curtas bifurcadas na ponta; ou um cesto coletor de frutas (Figuras 58 e 59).

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Figura 58. Diferentes tipos de varas compridas de colheita. Vara com bolsa anexada (esquerda) e vara bifurcada (direita). Foto:

Figura 59. Cesta coletora de frutas, tendo seis arames agrupados e curvados para dentro (tipo pente) que chegam a ultrapassar a altura do cesto circular, os quais irão retirar as frutas maduras posicionadas na parte mais elevada da árvore do mangostão. Fotos: Arquivo da Amazon.

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Este colhedor é o mais recomendado, porque o operário introduz na bolsa de pano o fruto a ser colhido e com um puxão dado à vara secciona o pedúnculo com a lâmina cortante do saco apanhador. Os frutos não devem ser lesionados ou sofrerem ranhuras ou qualquer outro tipo de dano à epiderme. O seguinte procedimento é sugerido:

a) Corte com ganchos que tenham um objeto pontiagudo como lâminas afiadas integradas no anel onde a fruta é inserida no saco pequeno, evitando assim que a fruta caia ao solo; a seguir a ponta da vara é baixada até o solo para recolher o fruto e depositá lo no cesto feito com fibras de palmeira (Figura 60).

b). Recomenda se sempre que o pedúnculo seja cortado com o máximo de comprimento possível. Esse processo de colheita com vara é bastante demorado.

Figura 60. Frutos de mangostão colhidos em cesta de fibra de bambu ou de palmeira forrada com folhas de bananeira (direita). Foto: Australia

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Os frutos colhidos são levados para uma casa de coleta localizada próxima aos pomares.

As casas de coleta são responsáveis por receber frutas de grupos de agricultores cadastrados (um grupo equivale a cerca de 50 agricultores ou pomares) de uma área de produção definida.

A casa de coleta geralmente consiste em um galpão aberto ou casa de alvenaria com piso de concreto. Aqui, as frutas colhidas de fazendas registradas para exportação são separadas daquelas de fazendas não registradas.

A fruta é pré classificada em caixas plásticas com código de cores. As formas azuis ou verdes são usadas para identificar frutas de pomares de exportação registrados. Todas as frutas danificadas e frutas que não atendem ao requisito do índice de maturidade para exportação são removidas. As caixas são pesadas e rotuladas com um código da casa de coletade4 dígitos, númeroderegistroGAP enúmerodeproduçãode5 dígitos. Onúmero de produção identifica a fazenda de origem da fruta, data de colheita, volume e destino. Não há instalações de armazenamento na casa de coleta, e os frutos de mangostão colhidos são transportados diariamente para o “packing house” em caminhões fechados.

Danos nos frutos na colheita. Uma fruta madura com possibilidade de cair da árvore e, se cair em uma camada de folhas, cobertura ou ervas daninhas, provavelmente permanecerá em boas condições. Se, no entanto, cair em uma superfície dura, como solo nu, sofrerá sérios danos.

Embora o mangostão tenha um pericarpo relativamente espesso, ele precisa ser manuseado com cuidado para evitar que seja danificado ou "rachado". A fissuração causa a exsudação de látex amarelo e um rápido endurecimento da parte afetada do pericarpo. Danos mecânicos ao pericarpo são claramente visíveis a olho nu. A porção danificada do pericarpoendureceem 24 horas, causandoo colapsodotecido doarilo subjacente.Segue seadesidrataçãorapidamenteeafrutaficamarrom (TONGDEE;SUWANAGUL,1989); isso reduz a qualidade do fruto, tornando o pouco atraente. Se as frutas forem vendidas em mercados locais ou de exportação, as frutas devem ser colhidas pouco antesdeamadurecerem completamente,usandoum dispositivopara pegar as frutas (Figura 61). A colheita manual é essencial, pois o pericarpo, que ainda está levemente mole neste estágio, provavelmente será danificado se cair; os frutos devem ser colhidos sempre com o pedúnculo preso. Para a colheita manual, são necessárias escadas

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para árvores mais altas. Um método alternativo, se a colheita manual não for possível, é usar uma vara longa com um gancho e uma cesta presa na ponta para pegar os frutos, como às vezes são usados para a colheita de manga. Varas de bambu, com um garfo em forma de V na parte superior para destacar frutas únicas, são usadas na Malásia, mas, em pomares no leste e sul da Tailândia, as escadas e as cestas de colheita são preferidas.

PÓS-COLHEITA

Manejo pós-colheita para exportação de frutas. Após a colheita, as frutas colhidas de mangostão devem ser encaminhadas o mais rápido possível para o “packing house”, onde são selecionados e classificados de acordo com o tamanho, uniformidade, nível de maturidade e qualidade do fruto, embaladas e armazenadas, para em seguida serem transportadas e comercializadas. As operações de manuseio de pós colheita realizadas no “packing house” são as seguintes:

Recepção. As frutas chegam ao “packing house”. Elas são rotuladas para identificar a origem e a data de chegada, verificados quanto à quantidade ou peso entregue e confirmados pelo recebimento ao fornecedor.

Seleção. Na triagem preliminar do mangostão, devem se remover as frutas não comercializáveis (frutas imaturas, maduras e danificadas) e material estranho.

Figura 61. Destaque da frutificação do mangostão. Foto: Yaacob; Tindall (1995).
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Limpeza e lavagem. As frutas são limpas com cuidado, pois danos à pele promoverão a deterioração precoce. A lavagem é necessária para remover quaisquer manchas de látex adquiridas por ferimentos causados durante a colheita.

Secagem. Os frutos lavados são espalhados em uma única camada em racks, à sombra, mas expostos a uma boa ventilação para facilitar a secagem rápida.

Classificação. As frutas são classificadas de acordo com a qualidade e tamanho antes de serem embaladas. O escopo dessas operações depende do mercado. Mesmo assim, as frutas são classificadas em três classes (IAQA, 2011), as quais são:

Super I O pedúnculo do fruto é de cor verde fresca, o cálice é completo e de cor verde brilhante e a casca do fruto está livre de danos

Super II O pedúnculo do fruto é verde pálido, o cálice é incompleto e verde com alguma cor marrom, e 30% da casca do fruto apresenta danos por arranhões

-Super III O pedúnculo do fruto é de cor verde opaca, o cálice é incompleto e verde com alguma cor marrom, e 30 50% da casca do fruto apresenta danos por arranhões

Qualquer fruta danificada ou defeituosa é rebaixada e removida pela equipe do “packing house” antes de ser embalada para exportação. A Indonésia informou que os mangostões classificados como 'Super I e II' seriam exportados para a Austrália.

Limpeza e classificação final. Cada mangostão individual é limpo manualmente com pistolas de pressão de ar para remover quaisquer detritos ou insetos escondidos sob o cálice da fruta. A limpeza individual é realizada por uma equipe de trabalhadoras sobre armadilhas adesivas ou banhos maria para coletar o material e evitar contaminação. Após a limpeza com pressão de ar, os mangostões são escovados individualmente para remover quaisquer pragas aderentes à fruta.

Qualquer fruta danificada durante o processo de limpeza é removida e a fruta é então classificada por peso em outras classes, dependendo do destino de exportação e das exigências do mercado.

Embalagem Após a colheita, os frutos devem ser manuseados e embalados com cuidado especial. As cascas das frutas devem ser limpas de qualquer goma aderida e a área abaixo dassépalasdeveserverificadaquantoàinfestaçãodeinsetos(formigaspretas).Quaisquer insetos devem ser removidos soprando ou escovando suavemente. Frutas da mesma cor e tamanho devem ser selecionadas e cada uma embrulhada em papel de seda branco ou

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malha de espuma. A fruta deve ser colocada em uma caixa de papelão ondulado, tamanho 25 cm x 37,5 cm x 7,5 cm, com 6 furos de cada lado para ventilação. Cada caixa deve conter cerca de 24 frutas e pesar aproximadamente 2,5 kg.

Outro método é colocar a fruta em uma bandeja de espuma de 13 cm x 13 cm, que pode conter quatro frutas. A bandeja é coberta com filme de PVC e colocada em uma caixa de tamanho 25 cm x 37,5 cm x 7,5 cm com 6 bandejas para cada caixa. Existem muitos tipos de recipientes que variam em tamanho, resistência e custo. Um dos principais problemas que resultam na perda de qualidade das commodities é devido à prática incorreta de embalagem e embalagens inadequadas. Embrulhar cada fruta individualmente em plásticoouPVCnãotemnenhumavantagem,pois afrutaaquecerapidamente,acelerando a maturação e posteriormente apodrecendo.

Os mangostões são geralmente embalados em caixas de plástico de 8 kg forradas com papel. Uma folha de espuma levemente molhada é colocada em cima de cada caixa para manteroníveldeumidadeeacaixaéselada.Emseguida,12caixasdealtura(nomáximo) são empilhadas em câmaras frigoríficas, onde são armazenadas por um curto período de tempo a ~ 13 °C. As frutas para os mercados interno e de exportação são armazenadas separadamente.

Na Bahia (Brasil), os frutos destinados à comercialização nos grandes centros são previamente selecionados, quanto aos aspectos de maturidade, problemas de endurecimento, manchados e danificados. Após a limpeza, os frutos são classificados por tamanho, com base no diâmetro transversal, em classes que variam de 9 a 20. Essa classificação se dá em função da quantidade de frutos de diâmetros semelhantes, que cabem, dispostos numa única camada, em caixas de papelão de dimensões internas de 21 cm x 21,5 cm de comprimento e 6,5 cm de altura, com quatro aberturas de 2,8 cm de diâmetro. Os frutos com classificação nove até 12 (acima de 100 g) obtêm os melhores preços no mercado (SACRAMENTO; COELHO JÚNIOR, 2005; Figura 62).

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Armazenamento. Na fase de pós colheita, os frutos mantêm se apenas alguns dias à temperatura ambiente, enquanto a 10 12ºC (com 85 90% de umidade relativa) podem manter se durante três semanas sem que a qualidade seja afetada. A temperatura de armazenamento inferior a 10 ºC causa sérios danos fisiológicos. Por fim, mesmo que o pericarpo do mangostão pareça forte, os impactos durante o manuseio do fruto resultam em muitas perdas.

Para que haja oferta desse fruto na entressafra, que varia de dois a quatro meses dependendo da produção local, é necessário utilizar técnicas de pós colheita para prolongar a vida útil do mangostão. A utilização de baixas temperaturas, filmes plásticos e coberturas comestíveis (exemplo da cera de carnaúba) são algumas das opções para aumentar a vida útil das frutas. Os frutos do mangostão têm uma vida pós colheita de armazenamento e comercialização não superior a uma semana em condições tropicais. Em baixas temperaturas (9 12 °C), o mangostão pode ter uma vida útil de até quatro semanas (MARTIN, 1980). Segundo Osman e Milan (2006), atualmente, o melhor método de armazenamento de frutas é mantê las sob refrigeração. Yaacob e Tindall (1995) relataram que os frutos armazenados em caixas de papelão em temperatura ambiente podem manter sua qualidade por mais de quatro semanas e que o armazenamento de frutos maduros em temperaturas de 4 a 8 °C pode prolongar a vida de prateleira. Esses autores afirmam que a temperatura de 13 °C, no entanto, mostrou se

Figura 62. Embalagem de frutos de mangostão forradas com papel. Foto: Célio Kersul do Sacramento.
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mais favorável para armazenar e manter o padrão de qualidade dos frutos e a temperatura ideal para seu transporte. Temperaturas de armazenamento entre 4 e 8 °C podem ser usadas para prolongar a vida útil do mangostão, mas com o armazenamento em baixas temperaturas, o endurecimento do pericarpo reduz a aceitação geral do fruto pelo consumidor devido à dificuldade de corte (AUGUSTIN; AZUDIM, 1986). Choehom et al. (2003) verificaram que o armazenamento de mangostão a 12 °C produziu níveis aceitáveis de sintomas de frio e, portanto, resultou em uma vida de armazenamento mais longa(20dias).Estudosparadeterminaraextensãodotempodearmazenamentodefrutos demangostão quando embalados em sacos defilmede polietileno(LDPE) com diferentes espessuras nas temperaturas de 8 e 13 °C foram realizados por Pranamornkith et al. (2003a). Esses autores verificaram que, em comparação às frutas não embaladas, o uso de bolsa de filme de polietileno, independente da espessura e temperatura de armazenamento, aumentou a vida útil das frutas. Os frutos mantidos a 13 °C e embalados em bolsa de filme de PEBD de 40 e 80 µm tiveram o maior período de retenção (24 dias), mas a espessura de 40 µm manteve qualidade superior à de 80 µm. Esses mesmos autores compararam posteriormente o uso de LDPE de 40 µm com PVC de 42 µm (policloreto de vinila) para prolongar a conservação do fruto a 13 ºC, individualmente e em embalagens de quatro (4) frutos. O PEBD foi mais eficaz que o PVC, e a embalagem com quatro frutos foi melhor que os frutos embalados individualmente em termos de inibição da respiração, produção de etileno, perda de peso, brilho da casca, cobertura de clorofila e firmeza do fruto. Portanto, os frutos embalados com PEBD tiveram um período de armazenamento de 24 dias, enquanto os embalados com PVC tiveram um período de armazenamento de 20 dias. Os frutos embalados individualmente em PEBD ou PVC duraram 20 e 16 dias, respectivamente. Os sólidos solúveis e a acidez não foram prejudicados (PRANAMORNKITH et al., 2003b). Revestimentos comestíveis, como a cera de carnaúba, também têm se mostrado boas alternativas para melhorar o armazenamento dos frutos. A cera é utilizada para reduzir a perda de massa (umidade) e, consequentemente, o amolecimento e o murchamento; também confere ao fruto um aspecto mais brilhante, melhorando sua qualidade visual (KAPLAN, 1986). Além disso, possui ação antimofo e minimiza distúrbios cutâneos e colapso de tecidos próximos ao pedúnculo (WAKS et al., 1985). Os revestimentos de cera aumentam o período de conservação de frutas e hortaliças devido à redução da taxa de transpiração e da atividade metabólica (OLIVEIRA, 1996). Hagenmaier e Baker (1994) afirmaram que as emulsões à base de cera de carnaúba conferem melhor proteção contra a perda de peso do que a

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cera à base de goma laca, polietileno oxidado e resina de madeira. Formulações contendo 5% de cera diminuíram o amolecimento da goiaba de 10 para 30% (McGUIRE; HALLMAN, 1995). O uso de revestimento de cera prolongou a vida pós colheita do pêssego (CHITARRA; CARVALHO, 1985; HAGENMAIER; BAKER, 1994). Baldwin e Wood (2006) argumentaram que os revestimentos à base de CMC (carboximetilcelulose) apresentam potencial para prolongar a vida útil dos grãos de noz pecã, mas nenhum estudo foi realizado com mangostão até o momento

A aplicação de tecnologias visando à extensão do período de conservação de frutos de mangostão foi estudada por Castro et al. (2012) e comparada com o armazenamento a 25 °C/70 75% U.R. Os frutos foram colocados em bandejas de poliestireno (5 frutos/bandeja). Foram realizados cinco tratamentos a 13 °C/90 95% UR: revestida de cera de carnaúba; cobertura com lecitina + CMC (Carboximetilcelulose); filme de PELBD (polietileno linear de baixa densidade) 50 µm; PVC (Policloreto de vinila), e sem nenhuma cobertura ou revestimento. Foram realizadas análises físico químicas duas vezes por semana. Entre os índices de qualidade analisados, diferenças significativas foram observadas para perda de massa, textura e teor de umidade da casca. Os resultados mostraram que o período de armazenamento do mangostão a 25 °C é de duas semanas e, quando estocado a13 °C, obteve se aconservação defrutos por25dias.Conclui se,desse modo, que o tratamento a 13 °C/90 95% UR sem o uso de revestimentos e filmes foi o melhor e o mais econômico.

Medição da taxa de respiração e produção de etileno. O mangostão tem um padrão respiratório climatérico que mostra as alterações características após a colheita. A fruta produz dióxido de carbono CO2 e etileno C2H4 a taxas de 10,95 ml/h e 29,72 μl/h, respectivamente, a uma temperatura de 25 °C. O calor produzido por esta respiração é de cerca de 2.405 BTU/t/dia (KOSIYACHINDA, 1987). A temperatura e a umidade relativa da câmara de armazenamento são os principais fatores que afetam a vida útil do mangostão. As condições de armazenamento adequadas para o mangostão relatadas por muitos pesquisadores estão na faixa de 4 13 °C a 85 90% de umidade relativa, dependendo do estágio de maturação, método de colheita e transporte (MARTIN, 1980; AUGUSTIN; AZUDIN, 1986; KOSIYACHINDA; TANSIRIYAKUL, 1988). Estudos limitados sobre atmosfera modificada para prolongar a vida de armazenamento indicaram queotratamento com CO2 domangostãoduranteo armazenamentopode prolongaravida de armazenamento sem afetar a qualidade do alimento.

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Tratamento de armazenamento a frio. Os frutos de mangostão têm uma vida útil de armazenamento e comercialização não superior a uma semana em condições ambientais tropicais (KOSIYACHINDA, 1987). Em baixas temperaturas (9 12°C), o mangostão pode ter uma vida útil de até quatro semanas (MARTIN, 1980). Atualmente, o melhor método para armazenamento de frutas é manter a fruta sob refrigeração. As frutas colhidas em um estágio adequado para exportação podem ser mantidas por mais tempo sob armazenamento. A temperatura ótima da câmara fria para armazenamento é de 2 °C. Nessa temperatura, os frutos podem ser mantidos por 42 dias. No entanto, o período ideal de armazenamento nessa temperatura é de 1 a 21 dias após a colheita. Frutas mantidas em câmara fria devem ser seladas em sacos plásticos herméticos. Durante esse período, os frutos mantêm a qualidade inicial e estão aptos para o consumo. O armazenamento por períodos mais longos fará com que a casca endureça e mude de cor.

Na Austrália, as frutas são lavadas em água e classificadas de acordo com o peso da fruta: >100 g, 75 100 g e <75 g. Para os mercados de exportação, os produtores da Tailândia embrulham cada fruta em papel de seda e as embalam em caixa de papelão. Cada caixa tem orifícios de ventilação e contém 24 30 frutas. O armazenamento a 13 °C é adequado para manter um alto padrão de qualidade, e a faixa ideal de temperatura de transporte é de 13 25 °C. Experimentos mostraram que os frutos podem ser armazenados por 7 semanas a 4,5 °C e 85 90% UR, mas o endurecimento do pericarpo nessas condições causa uma redução na qualidade dos frutos (CHACKO et al., 1995). Os requerimentos de embalagem e armazenamento recomendados para armazenamento a frio de mangostão são mostrados na Tabela 12

Tabela 12. Requerimentos de embalagem e armazenamento recomendados para armazenamento a frio de mangostão na Austrália.

Embalagem Mais de 95g/fruta

Sem mancha ou defeito

Cor uniforme mais escura que o vermelho rosado no estágio 3

Sem resíduos visíveis de insetos/químicos/fúngicos na fruta

Armazenar 5 °C a RH >85% por até 4 semanas, ou -18°C ou -27°C por até 16 meses

Fonte: Lim et al. (1998)

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Recomendações detalhadas para manter a qualidade pós colheita foram dados por Kader (2002) e Paull e Ketsa (2002), na Tabela 13.

Tabela 13. Recomendações para manter a qualidade pós colheita.

Recomendações por Kader (2002)

Temperatura ótima: 13 ± 1°C (56 ± 2°F), potencial de armazenamento = 2 4 semanas, dependendo da cultivar e estágio de maturação.

Recomendações por Paull e Ketsa (2002)

Classificação, Tamanhos e Embalagem: Não há padrões americanos ou internacionais. Os frutos são classificados por tamanhoe cor. Eles são normalmente vendidos em caixa de papelão de 2,25 kg (5 lb) de camada única com estofamento, ou às vezes em bandejas com frutas embaladas individualmente para evitar ferimentos (20 a 24 frutas por bandeja). No Sudeste Asiático, as frutas são vendidas em cestas ou amarradas em pacotes de 10 a 25 frutas.

Umidade Relativa Ideal: 90 95% Condições de pré resfriamento: O resfriamento ambiente é normalmente utilizado (AUGUSTIN; AZUDIN, 1986).

Taxas de Respiração: 6 10ml CO2/kg/h a 20°C (68°F); padrão respiratório climatérico. Para calcular a produção de calor, multiplique ml CO2/kg/h por 440 para obter Btu/ton/dia ou por 122 para obter kcal/ton/dia.

Condições ideais de armazenamento: As recomendações variam de 3,9 a 5,6°C (39 a 42°F) com 85 a 90% de UR por 7 semanas (PANTASTICO, 1975) a 13,3°C (56°F) com 85 a 90% de UR por 14 a 25 dias. O armazenamento a 4°C (39,2°F) ou 8°C (46,4°F) pode levar a um endurecimento significativo da pele (AUGUSTIN; AZUDIN, 1986), embora a polpa ainda possa ser aceitável após 44 dias. A prática atual é armazenar frutas de 12 a 14°C (54 a 57°F), proporcionando uma vida útil de cerca de 20 dias sem danos por frio. A aplicação de revestimentos de superfície reduz a perda de peso (CHOEHOM, 1997).

Taxas de Produção de Etileno: 3 30μl C2H4/kg/h a 20°C (68°F).

Considerações sobre atmosferas controladas (CA): Uma atmosfera de 5% O2 + 5% CO2 foi usada por 1 mês (YAHIA, 1998) e resultou na melhor retenção geral da aparência da casca e qualidade interna (RATTANACHINNAKORN et al., 1996). O armazenamento de frutas em sacos de filme de polietileno reduz a perda de peso e doenças (DARYONO; SABARI, 1986). No entanto, não está claro se os efeitos se devem à prevenção da perda de água ou às atmosferas modificadas nas bolsas.

Distúrbios patológicos: O apodrecimento pode ser causado por Botryodiplodia theobromae, Diplodia spp., Pestalotia flagisettula, Phomopsis spp. ou Rhizopus spp.

Distúrbios Fisiológico (Injúria por frio): Os sintomas incluem escurecimento e endurecimentodacascaemaiorsuscetibilidade à decomposição quando a fruta é movida para temperaturas mais altas após armazenamento a menos de 10 °C (50°F) por mais de 15 dias ou a 5°C (41°F) por mais de 5 dias.

Patologia pós colheita: Botryodiplodia theobromae, Diplodia spp., Pestalotia flagisettula, Phomopsis spp e Rhizopus spp. foram relatados; eles endurecem a casca e apodrecem o arilo.

Problemas de quarentena: Mangostão é um hospedeiro de mosca da fruta. A irradiação tem potencial para desinfestação. Alternativamente, os frutos colhidos são cuidadosamente cortados e o arilo inspecionado; as frutas são congeladas inteiras e enviadas por navio.

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Distúrbios fisiológicos: Danos nos frutos durante a colheita e comercialização podem afetar mais de 20% dos frutos. O distúrbio de gamboge (gamose) ocorre onde o látex penetra na polpa (arilo), tornando a amarela e dando lhe um sabor amargo. O gamboge também se move para a superfície externa da fruta. Este é um distúrbio pré colheita de causa desconhecida que dificulta a separação do arilo do tecido circundante, mesmo em frutos maduros; provoca também o endurecimento do pericarpo. Isso não deve ser confundido com lesão por impacto que leva ao endurecimento do pericarpo no ponto de impacto e colapso do arilo, desidratação, desenvolvimento de cor rosada ou escurecimento (TONGDEE; SUWANAGUL, 1989). Uma queda de 10 cm pode causar danos leves no pericarpo, indicados como endurecimento no ponto de impacto em 24 h. Quedas mais altas causam danos significativamente maiores e muitas vezes levam a desclassificação da fruta (TONGDEE; SUWANAGUL, 1989; KETSA; ATANTEE, 1998). Outro distúrbio do fruto do mangostão é o arilo translúcido (nuekaew) que se acredita ser induzido pela chuva forte durante o crescimento e desenvolvimento do fruto, mesmo que pouco antes da colheita (LAYWISAKUL, 1994). A gravidade específica da fruta com arilo translúcido é >1,0, enquanto a do arilo normal é <1,0. Isso permite a separação dos frutos flutuando-os na água (PODEE, 1998). Os frutos com arilo translúcido apresentam menor SSC (teor de sólidos solúveis) e AT (acidez titulável) do que frutos normais (PANKASEMSUK et al., 1996).

Características pré-colheita e qualidade do mangostão. Condições de cultivo inadequadas como drenagem deficiente ou deficiência de minerais (principalmente cálcio e zinco) podem afetar a qualidade dos frutos e torná los impróprios para comercialização (polpa translúcida). Da mesma forma, certas pragas causam sérios efeitos indiretos: picadas pormoscas dafrutaouinsetos causam fluxos delátexamarelo quetornam a polpa branca da fruta amarga ao tocá la.

Os tripes parecem ser as principais pragas do mangostão e as picadas repetidas afetam fortemente a cor do fruto, que é uma importante característica de venda.

Inspeção fitossanitária. O mangostão embalado é inspecionado em instalações de inspeção de quarentena designadas por inspetores da IAQA para atender aos requisitos fitossanitários do país importador. Somente os mangostões que atendem aos requisitos do país importador recebem um certificado fitossanitário para exportação.

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Carregamento e transporte. A fruta embalada é carregada da instalação de armazenamento a frio em caminhões ou contêineres refrigerados fechados (7 13 ºC) e selada. Os contêineres refrigerados são transportados diretamente do “packing house” para o porto ou aeroporto. Embora o transporte aéreo seja o meio de transporte preferido, os mangostões também podem ser exportados para a Austrália por via marítima em contêineres refrigerados (7 13 ºC).

O transporte de mangostão da Indonésia para a Austrália, ou seja, do “packing house” até a chegada, pode levar até 7 dias por via aérea e 16 a 19 dias por via marítima (AUSTRALIA TRADE; SHIPPING, 2012).

Comercialização

A maior parte dos frutos produzidos durante a safra na Bahia é geralmente enviada para comercialização em São Paulo (CEAGESP), Rio de Janeiro e outras capitais do Sudeste brasileiro. Na Bahia, os frutos são embarcados em avião, no aeroporto de Ilhéus, duas vezes por semana, na época da safra. Nas feiras e supermercados regionais são comercializados os frutos excedentes ou muitos maduros para transporte a longas distâncias, além de frutos pequenos ou manchados.

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REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

AIZAT, W. M.; AHMAD HASHIM, F. H.; JAAFAR, S. N. S. Valorization of mangosteen, “The Queen of Fruits,” and new advances in postharvest and in food and engineering applications: A review. Journal of Advanced Research, v.20, November 2019, p.61 70.

AIZAT, W. M.; JAMIL, I. N.; AHMAD HASHIM, F. H.; NORMAH, M. N. Recent updates on metabolite composition and medicinal benefits of mangosteen plant. Peer J., v.7, p.e6324, 2019.

AJAYI, I. A.; ODERINDE, R. A.; OGUNKOYA, B. O. et al. Chemical analysis and preliminary toxicological evaluation of Garcinia mangostana seeds and seed oil. Food Chemistry, v.101, p.999 1004, 2007.

ALANG, Z. C.; NORMAH, M. N. In vitro techniques for conservation and utilization of underexploited tropical species. In: ZAKRI, A. H.; NORMAH, M. N.; KARIM, A. G. A.; SENAWI, M. T. (Eds.). Conservation of Plant Genetic Resources Through In vitro Methods. Proceedings of MNCPGR CSC International Workshop on Tissue Culture for the Conservation of Biodiversity and Plant Genetic Resources, Kuala Lumpur: 1991, p.155 169.

ALMEYDA, N.; MARTIN, F. W. Cultivation of neglected tropical fruits with promise: the Mangosteen. Mayagüez: Agricultural Research Service, U.S. Department of Agriculture, 1976.

ALMEYDA, N.; MARTIN, F. W. Tropical fruits: The mangosteen. World Farming, v.20, n.8, p.10 23, 1978.

ALTENDORF, S. Minor tropical fruits: Mainstreaming a niche Market. Food outlook, 2018, p.67 70. Disponível em: http://www.fao.org/fileadmin/templates/est/ COMM_MARKETS_MONITORING/Tropical_Fruits/Documents/Minor_Tropical_Fru its_FoodOutlook_1_2018.pdf. Acesso em: 10/12/2020.

APIRATIKORN, S.; SDOODEE, S.; LERSLERWONG, L.; RONGSAWAT, S. The impact of climatic variability on phenological change, yield and fruit quality of mangosteen in Phatthalung Province, Southern Thailand. Kasetsart Journal Natural Science, v.46, p.1 9, 2012.

Referências Bibliográficas | 126

ASKER, S. E.; JERLING, L. Apomixis in plants. CRC Press, London. 1992.

AUGUSTIN, M. A.; AZUDIN, M. N. Storage of mangosteen (Garcinia mangostana L.). ASEAN Food Journal, v.2, p.78 80, 1986.

AUSTRALIA TRADE AND SHIPPING. Australia shipping timetable: imports. 2012. http://www.australiatrade.com.au/Timetables/Imports/Asia.htm Accessed 12 January 2012.

AWACHARE, C. M.; UPRETI, K. K. Phenological growth stages in mangosteen (Garcinia mangostana L.) according to the extended BBCH scale. Ann. Appl. Biol., v.176, p.16 25, 2020.

BALDWIN, E. A.; WOOD, B. Use of edible coating to preserve pecans at room temperature. Horticultural Science, v.41, n.1, p.188 192, 2006.

BEZERRA, J. L.; SACRAMENTO, C. K.; ALMEIDA, O. C.; BEZERRA, K. M. T. Ocorrência de murcha do mangostanzeiro (Garcinia mangostana L.) na região sul da Bahia. In: SEMINÁRIO DE PESQUISA E PÓS GRADUAÇÃO DA UESC, 7, 2003, Ilhéus, BA. Anais… Ilhéus, BA: UESC, 2003, p.117 118.

BIN OSMAN, M.; MILAN, A. R. Mangosteen Garcinia mangostana. Southampton Centre for Underutilised Crops, University of Southampton, Southampton, UK., 2006, 186p.

BOONKLONG, O. Climate change affecting mangosteen productivity in Thailand 2005. PhD dissertation in computational science. Thailand: Walailak University. 2005.

BOURDEAUT, J.; MOREUIL, C. Le mangoustanier, ses possibility de culture in Cote d'Ivoire et a Madagascar. Fruits d’Outre Mer., v.25, p.223-245, 1970.

BPS Statistics Indonesia. Indonesia Statistics of Annual Fruit and Vegetable Plants 2013. 2014.

BPS Statistics Indonesia. Indonesia Statistics of Annual Fruit and Vegetable Plants 2016. 2017.

BROWN, W. H. Useful Plants of the Philippines. Rep. Philip. Dep. Agric. Nat. Res. Tech. Bull. 10, Vol. 2. Bur. Printing, Manila. 1954.

Referências Bibliográficas | 127

CALLAN, N. W. Calcium hydroxide reduces splitting of “Lambert” sweet cherry. J. Amer. Soc. Hort. Sci., v.111, n.2, p.173 175, 1986.

CAMPBELL, C. W. Growing the mangosteen in Southern Florida. Proceedings of the Florida State Horticultural Society, v.79, p.399 401, 1967.

CARVALHO, J. E. U. Mangostanzeiro: botânica, propagação, cultivo e utilização. Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal SP, v.36, n.1, p.148 155, Março 2014.

CASTRO, M F. P. P. M.; ANJOS, V. D. A.; REZENDE, A. C. B.; BENATO, E. A.; VALENTINI, S. R. T. Postharvest technologies for mangosteen (Garcinia mangostana L.) conservation. Ciênc. Tecnol. Aliment., Campinas, v.32, n.4, p.668 672, 2012.

CHACKO, E. K.; WIEBEL, J.; DOWNTON, W. J. S. Mangosteens. In: BIN OSMAN, M.; ABD. RAHMAN MILAN, A. B. D. (Eds). Mangosteen Garcinia mangostana (Southampton UK: Southampton Centre for Underutilised Crops University of Southampton). 1995.

CHANARAT, P.; CHANARAT, N.; FUJIHARA, M.; NAGUMO, T. Immunopharmacological activity of polysaccharide from the pericarp of mangosteen Garcinia: phagocytic intracellular killing activities. Journal of The Medical Association of Thailand, Bangkok, v.80, n.1, p.149 54, 1997.

CHANDLER, W. H. Evergreen orchards. Ed. 2., Lea and Febiger, Philadelphia. 1958.

CHAOVANALIKIT, A. et al. Anthocyanin and total phenolics content of mangosteen and effect of processing on the quality of mangosteen products. International Food Research Journal, v.19, p.1047 1053, 2012.

CHAWLA, M. L.; SAMATHANAM, G. J.; SHARMA, S. B. Occurrence of citrus nematode (Tylenchulus semipenetrans Cobb) on roots of mangosteen (Garcinia mangostana). Indian Journal of Nematology, v.10, n.2, p.240 242, 1981.

CHAY PROVE, P. Mangosteen: General crop management. DPI’s Agency for Food and Fibre Sciences, Horticulture. 2004. http://wmw.dpi.qld.gov.au/horticulture/ 5447.htm.

CHIN, H. F. Production and storage of recalcitrant seeds in the tropics. Acta Horticulturae, v.83, p.17 21, 1976.

Referências Bibliográficas | 128

CHITARRA,M. I.F.;CARVALHO,V.D.Frutostemperados:pêssegos,ameixasefigos. Informe Agropecuário, v.11, n.125, p.56 66, 1985.

CHOEHOM,R. Effectof waxingandplantgrowth regulators on qualityand storage life of mangosteen (Garcinia mangostana L.) fruit during cold storage. Graduate Special Problem, Department of Horticulture, Kasetsart University, Bangkok. [In Thai]. 1997.

CHOEHOM, R.; KETSA, S.; VAN DOORN, W. G. Chilling injury in mangosteen fruit. Journal of Horticultural Science and Biotechnology, v.78, n.4, p.559 562, 2003.

CHUTINUNTAKUN,T. Preventionoftheincidenceoftranslucentfleshdisorderand internal gumming fruits in mangosteen (Garcinia mangostana L.) and screening techniques. 2001. M.Sc. Thesis. Prince of Songkla University, Songkhla. 2001.

CORNER, E. J. H. Wayside trees of Malaya. Vol. 1. Ed. 3., Malayan Nature Society, Kuala Lumpur. 1988.

CORNER, E. J. H. Garcinia mangostana L. In: Wayside trees of Malaya. Vol.l. 2nd ed.. Govt. Printing Office, Singapore: 1952, p.312 320.

CORONEL, R. E. Mangosteen. In: Promising fruits of the Philippines. College of Agriculture. UPLB, Los Banos, Philippines: 1983, p.307-322.

CRISOTOMO, L. C. Preservation of fruits and vegetables. Bureau of Plant Industry. Manila, Philippines, 1977.

CRONQUIST, A. A.1981. A integrated system of classification of flowering plants New York: Columbia Un. Pres, 1981. 520p.

DANGCHAM, S.; KETSA,S.Relationship betweenmaturitystages andlowtemperature involved in the pericarp hardening of mangosteen fruit after storage Thai Journal of Agrictural Science, v.40, p.3 4, 2007.

DARYONO, M.; SABARI, S. The practical method of harvest time on mangosteen fruit and its characteristics in storage. Indonesia Buletin Penelitian Hortikultura, v.14, p.38 44, 1986.

DARYONO, M.; SOSRODIHARJO, S. Cara praktis penentuan saat pemanenan buah manggis dan sifat sifatnya selama penyimpanan (Practical methods for harvesting

Referências Bibliográficas | 129

mangosteen fruits and their storage characteristics). In: Indonesia Buletin Penelitian Hortikultura, Indonesia, v.14, n.2, p.38 44, 1986.

DAVE, R. K.; RAO, T. V. R.; NANDANE, A. S. Improvement of post harvest quality of pear fruit with optimized composite edible coating formulations. Journal of Food Science Technology, v.54, p.3917 3927, 2017.

DEDE JUANDA, J. S.; BAMBANG CAHYONO. Manggis: Budi Daya & Analisis Usaha Tani. Penerbit Kanisius, Yogyakarta. 2000, 79p.

DE MORAES, K. S.; FAGUNDES, C.; MELO, M. C.;ANDREANI, P.; MONTEIRO, A. R. Conservation of Williams pear using edible coating with alginate and carrageenan. Cienc. E Tecnol. Aliment., v.32, p.679 684, 2012.

DÍAZ FUENTES, V. H.; PICÓN, R. L. Influencia de los factores climáticos en la fenología del mangostán (Garcinia mangostana L.) en la zona centro del estado de Veracruz, México. In: Memoria del II Simposio Internacional de Fruticultura tropical y subtropical. La Habana, Cuba. 2007, 98p.

DORLY, D.; TJITROSEMITO, S.; POERWANTO, R.; JULIARNI, J. Secretory duct structure and phytochemistry compounds of yellow latex in mangosteen fruit. Hayati Journal of Biosciences, v15, p.99 104, 2008.

DORLY, S.; SILVA, J. A. T.; POERWANTO, R.; EFENDI, D.; BARASA, F. Calcium spray reduces yellow latex on mangosteen fruits (Garcinia mangostana L.). Journal of Fruit and Ornamental Plant Research, v.19, n.2, p.51 65, 2011. DOWNTON, W. J. S.; GRANT, W. J. R.; CHACKO, E. K. Effect of elevated carbon dioxide on the photosynthesis and early growth of mangosteen (Garcinia mcmgostana L.). Scientia Horticulturae, v.44, p.215 225, 1990.

DU, C. T.; FRANCIS, F. J. Anthocyanin of mangosteen, Garcinia mangostana. Journal of Food Science, v.42, p.1667 1668, 1977.

ENOCH, I. C. Morphology of germination. In: CHIN, H. F.; ROBERTS, E. H. Recalcitrant crop seeds. Malaysia: Tropical Press, 1980, p.6 37.

FAIRCHILD, D. G. The Mangosteen. Journal of Heredity, v.6, p.338 347, 1915.

Referências Bibliográficas | 130

FIRMINGER, T. Manual of Gardening for Bengal and Upper India. Calcutta, India. 1869.

FORD, H.; RICHARDS, A. J. Isoenzyme variation within and between Taraxacum agamospecies in a single locality. Heredity, v.55, p.289 291, 1985.

GABRIEL, B. P. Insects and mites injurious to Philippine crop plants. Dep. Entom., Coll. Agric., U.P. Los Banos, Laguna, Philippines, 1975.

GALANG, F. G. Fruit and nut growing in the Philippines. ALA Printing Press, Malabon, Rizal. 1955.

GOH, H. K. L., RAO, A. N.; LOH, C. S. Direct shoot bud formation from leaf explants of seedlings and mature mangosteen (Garcinia mangostana L.) trees. Plant Science, v.68, n.1, p.13 121, 1990.

GOH, K. H. L.; RAO, A. N.; LOH, C. S. In vitro plantet formation in mangosteen (Garcinia mangostana L.). Annals of Botany, Exeter, v.62, n.1, p.87 93, 1988.

GONZALEZ, L. G.; ANOOS, Q. A. The growth behavior of mangosteen and its graft affinity with some relatives. Philippine Agriculture, v.35, n.7, p.379 386, 1951.

HACK, H.; BLEIHOLDER, H.; BUHR, L.; MEIER, U.; SCHNOCK FRICKE, U.; WEBER, E.; WITZENBERGER, A. Einheitliche Codierung der phänologischen Entwicklungsstadien mono und dikotyler Pflanzen Erweiterte BBCH Skala, Allgemein Nachrichtenblatt des Deutschen Pflanzenschutzdienstes, v.44, p.265 270, 1992.

HACKETT, C.; CAROLANE, J. Edible horticultural crops. Part 1. Academic Press, London, 1982.

HAGENMAIER, R. D.; BAKE, R. A. Wax micro emulsions and emulsions as citrus coating. Journal of Agricultural and Food Chemistry, n.42, p.899 902, 1994.

HARJADI, S. S.; HIDAYAT, A.; ARGASASMITA, M. Eco physiological study and post harvest handling of mangosteen fruits (Garcinia mangostana L.). 1989.

HAVARD DUCLOS, B. Le mangoustanier. Fruits d’Outre Mer, v.5, p.161 166, 1950.

Referências Bibliográficas | 131

HO, C. K.; HUANG, Y. L.; CHEN, C. C. Garcinone E, a xanthone derivative, has potent cytotoxic effect against hepatocellular carcinoma cell lines. Planta Medica, Antwerp, v.68, n.1, p.975, 2002.

HORN, C. L. Existence of only one variety of cultivated mangosteen explained through asexually formed “Seed”. Science, v.92, p.237 238, 1940b.

HORN, C. L. Stimulation of growth in juvenile mangosteen plants. Journal of Agricultural Research, v.61, p.397 400, 1940a.

HUME, E. P. Difficulties in mangosteen culture. Tropical Agriculture, v.24, p.1 3, 1947. (Cited in the Malayan Agricultural Journal, v.33, p.104 107, 1947.

HUME, E. P. Difficulties in mangosteen culture. Hal. Agric. J., v.33, p.104 107, 1950.

HUME, E. P.; COBIN, M. Relation of seed size to germination and early growth of mangosteen. Proceedings of the American Society for Horticultural Science, Madison, v.48, p. 293 302, 1946.

IAQA. Import proposal of mangosteens from Indonesia. Agency for Agricultural Quarantine, Ministry of Agriculture, Jakarta, Indonesia. 2008.

IAQA. Additional information for the production, packhouse and pest management of Indonesian mangosteen. Agency for Agricultural Quarantine, Ministry of Agriculture, Jakarta, Indonesia. 2010.

IAQA. Additional information for the production, packhouse and pest management of Indonesian mangosteen. Agency for Agricultural Quarantine, Ministry of Agriculture, Jakarta, Indonesia. 2011.

IBPGR. Genetic resources of tropical and sub tropical fruits and nuts (excluding Musa). International Board of Plant Genetic Resources, Rome, 1986.

INTENGAN, C. L. Food composition table recommended for use in the Philippines. Food Nut. Res. Inst. Handb. 1. Nat. Sci. Dev. Board, Manila. 1968.

JI, X.; AVULA, B.; KHAN, I. A. Quantitative and qualitative determination of six xanthones in Garcinia mangostana L. by LC PDA and LC ESI MS. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, Amsterdan, v.43, n.4, p.1270 1276, 2007.

Referências Bibliográficas | 132

JOLY, A. B. Botânica: introdução à taxonomia vegetal. São Paulo: Editora Nacional, 11 ed., v.4, 1993. 777p.

JUANDA, D. J. S.; CAHYONO, B. Manggis: Budi Daya & Analisis Usaha Tani. Penerbit Kanisius. Yogyakarta, Indonesia. 2000, 80p.

KADER, A. A. Mangosteen: Recommendations for Maintaining Postharvest Quality. Department of Pomology, University of California, Davis. 2002.http://rics. ucdavis.edu/postharvest2/Produce/ProduceFacts/Fruit/mangosteen.shtml.

KANCHANAPOM, K.; KANCHANAPOM, M. Mangosteen. In: SHAW, JR., P. E.; CHAN, H. T.; NAGI, S. (Eds.). Tropical and Subtropical Fruits. AgScience Inc., USA: 1998, p.191 216.

KAPLAN, H. J. Washing waxing and color adding. In: WARDOWSKI, W. F.; NAGY, S.; GRIERSON, W. (Eds.). Fresh Citrus Fruit. New York: AVI Publishing, 1986. p.379 395.

KERSUL, S. C. Mangostanzeiro (Garcinia mangostana L.). Serie Frutas Potenciais. Sociedade Brasileira de Fruticultura. Ilhéus, Brasil. 2001, 16 19p.

KETSA, S.; ATANTEE, S. Phenolics, lignin, peroxidase activity and increased firmness of damaged pericarp of mangosteen fruit after impact. Postharv. Biol. Technol., v.14, p.117 124, 1998.

KETSA, S.; PAULL, R. E. Mangosteen (Garcinia mangostana L.). In: YAHIA, E. M. (Ed.). Postharvest biology and technology of tropical and subtropical fruits. Vol. 4: Mangosteen to white sapote. Woodhead Publishing, Cambridge, UK, 2011, p.1 30.

KHEORUENROMN, I. Soil of Thailand. Department of Soil Science, Kasetsart University, Bangkok. 1990;

KLIE, S. et al. Conserved changes in the dynamics of metabolic processes during fruit development and ripening across species. Plant Physiology, v.164, p.55 68, 2014.

KOSIYACHINDA, S. Exporting Thai mangosteen and rambutan to Hong Kong. ASEAN Food Handling Newsletter, Jan 7-8, 1987.

KOSIYACHINDA, S.; TANSIRIYAKUL, S. Respiration rate and ethylene production of fresh fruits, vegetables and cut flowers. Journal of Food, v.18, p.1 10, 1988.

Referências Bibliográficas | 133

KRISHNAMURTHI, S.; RAO, N. V. M. Mangosteen deserves wider attention. Indian Horticulture, v.7, n.1, p.3 8, 1962.

KRISHNAMURTHI, S.; RAO, V. N. M.; RAVOOF, N. A. A note on the flowers and floral biology in mangosteen (Garcinia mangostana L.). South Indian Horticulture, v.12, p.99 101, 1964.

KURNIAWATI, A.; POERWANTO, R.; EFENDI, D.; CAHYANA, H. Character, xanthone content and antioxidant properties of mangosteen fruit’s hull (Garcinia mangostana L.)atseveral fruitgrowthstadia.JurnalAgronomyIndonesia,v.39,p.188 192, 2011.

KUSHWAHA, C. P.; SINGH, K. P. India needs phenological stations network. Current Science, v.95, n.7, p.832 834, 2008.

LAN, L. A. The embryology of Garcinia mangostana L. (Clusiaceae). Gard Bull Singap, v.37, p.97 103, 1989.

LAYWISAKUL, S. Factors Influencing the Development of Translucent Disorder in Mangosteen. 1994. M.S. Thesis. Kasetsart University, Bangkok. [In Thai] 1994.

LEONG, L. P.; SHUI, G. An investigation of antioxidant capacity of fruits in Singapore markets. Food Chemistry, Kidlington, v.76, n.1, p.69 75, 2002.

LEONTOWICZ, M.; LEONTOWICZ, H.; DRZEWIECKI, J.; JASTRZEBSKI, Z.; HARUENKIT, R.; POOVARODOM, S.; PARK, Y. S.; JUNG, S. T.; KANG, S. G.; TRAKHTENBERG, S.; GORINSTEIN, S. Two exotic fruits positively affect rat’s plasma composition. Food Chemistry, Kidlington, v.102, n.1, p.192 200, 2007.

LERSLERWONG, L.; RUGKONG, A.; IMSABAI, W.; KETSA, S. The harvest period of mangosteen fruit can be extended by chemical control of ripening A proof of concept study. Scientia Horticuturae., v.157, p.13 18, 2013.

LIM, A. L. The embryology of Garcinia mangostana L. (Clusiaceae). Gardens' Bulletin, Singapore, v.37, p.93 103, 1984.

LIM, M.; SDOODEE, S.; CHANAWERAWAN, S.; ONTHONG, C. Growth pattern and phonological development of longkong (Aglai dookoo Griff.). Songklanakarin Jounal of Science and Technology, v.23, n.4, p.467 478, 2001.

Referências Bibliográficas | 134

LIM, T. K. Edible medicinal and non medicinal plants, vol. 2, Fruits, Springer, 2012, p.21 133

LIMPUN UDOM,S. Influenceof wateron theincidenceoftranslucentflesh disorder in mangosteen (Garcinia mangostana L.) fruits. 2001. M.Sc. Thesis. Prince of Songkla University, Songkhla. 2001.

LOMBARDO, V. A. et al. Metabolic profiling during peach fruit development and ripening reveals the metabolic networks that underpin each developmental stage. Plant Physiol., v.157, p.1696 1710, 2011.

LUCKANATHINVONG, V. The study on chemical composition, cell viability and influence of water on translucent flesh disorder in mangosteen (Garcinia mangostana L.). 1996. M.Sc. Thesis. Kasetsart University, Bangkok. 1996.

MACLEOD, A. J.; PIERIS, N. M. Volatile flavour components of mangosteen, Garcinia mangostana Phytochem, v.21, p.117 119, 1982.

MAcMILLAN, H. F. Tropical Planting and Gardening with Special Reference to Ceylon. 5th Edition. MacMillan and Co. London, 1956.

MAcMILLAN, H. F. Tropical Planting and Gardening with Special Reference to Ceylon. 4th Edition, MacMillan and Co. London. 1935.

MAHABUSARAKAM, W.; PHONGPAICHIT, S.; WIRIYACHITRA, P. Screening of anti fungal activity of chemicals from Garcinia mangostana Sonklanakarin Journal of Science and Technology, v.5, p.341 342, 1983.

MAHABUSARAKAM, W.; WIRIYACHITRA, P. Chemical constituents of Garcinia mangostana Journal of Natural Products, v.50, p.474 478, 1987.

MANGOSTEEN (Garcinia mangostana L.). Researchgate Information Series on Ecosystems (RISE). Laguna, v. 31, n. 1, 44 p., jan./ jun. 2019. Disponível em: http://erdb.denr.gov.ph/files/publications/rise/r_v31n1.pdf. Acesso em: 12/10/2019.

MANSYAH, E.; MUAS, I.; JAWAL AS, M.; SOBIR, A. S. Morphological variability of apomictic mangosteen (Garcinia mangostana L.) in Indonesia: Morphological evidence of natural populations from Sumatra and Java. SABRAO Journal of Breeding and Genetics, v.42, p.1 8, 2010.

Referências Bibliográficas | 135

MANSYAH, E.; SOBIR, E.; SANTOSA, A.; SISHARNIN & SULASSIH. Polymorphic marker designed from bioinformatics sequences related to cell wall strength for discrimination of mangosteen (Garcinia mangostana L.) clones resistant to gamboge disorder. International Journal of Agricultural Biological Engineering, v.6, p.1023 1028, 2012.

MARSHALL, J. R.; MARSHALL, J. Mangosteen. Fact Sheet No. 3, Rare Fruit Council of Australia, Cairns, Queensland. 1983.

MARTIN, F. W. Durian and mangosteen. In: NAGY, S.; SHAW, P. E. (Eds.). Tropical and Subtropical Fruits. AVI Publishing, Westport, CT, USA: 1980, p.407 414.

MARZAIMI, I. N.; AIZAT, W. M. Current review on mangosteen usages in antiinflammation and other related disorders. In: WATSON, R. R.; PREEDY, V. R. (Eds.). Bioactive food as dietary interventions for arthritis and related inflammatory diseases (second ed.), Academic Press, United Kingdom, 2019, p.273 289.

MATRA, D. D.; POERWANTO, R.; E. SANTOSA, E.; HIGASHIO, H.; ANZAI, H.; INOUE, E. Analysis of allelic diversity and genetic relationships among cultivated mangosteen (Garcinia mangostana L.) in Java, Indonesia using microsatellite markers and morphological characters. Tropical Plant Biology, v.9, p.29 41, 2016.

MATSUMOTO, K.; AKAO, Y.; KOBAYASHI, E.; OHGUCHI, K.; ITO, T.; TANAKA, T.; IINUMA, M.; NOZAWA, Y. Induction of apoptosis by xanthones from mangosteen in human leukemia cell lines. Journal of Natural Products, Dawners Grove, v.66, n.8, p.1124 1127, 2003.

McGUIRE, R. G.; HALLMAN, G. J. Coating guavas with cellulose or carnauba based emulsions interferes with post harvest ripening. Postharvest Biology and Technology, v.30, n.2, p.294 295, 1995.

MEHERIUK, M.; NEILSEN, G. H.; MEKENZIC, D. L. Incidence of rain splitting in sweet cherries treated with calcium or coating materials. Canadian Journal of Plant Science, v.71, n.1, p.231-234, 1991.

MIDIN, M. R.; NORDIN, M. S.; MADON, M.; SALEH, M. N.; GOH, H. H.; NOOR, N. M. Determination of the chromosome number and genome size of Garcinia

Referências Bibliográficas | 136

mangostana L. via cytogenetics, flow cytometry and k mer analyses. Caryologia, v.71, p.35 44, 2018

MOA. Business proposal for the commercial cultivation of mangosteen (Garcinia mangostana L.). Ministry of Agriculture, Malaysia, 2002.

MOONGKARNDI, P.; KOSEM, N.; KASLUNGKA, S.; LUANRATANA, O.; PONGPAN, N.; NEUNGTON, N. Antiproliferation, antioxidation and induction of apoptosis by Garcinia mangostana (mangosteen) on SKBR3 human breast cancer cell line. Journal of Ethnopharmacology, Limerick, v.90, n.1, p.161 166, 2004.

MOREUIL, C. Notes breves sur quelques especes fruitieres de la cote est de Madagascar. Fruits d'Outre Mer., v.26, p.53 65, 1971.

MORTON, J. F. Mangosteen. In: MORTON, J. F. (Ed.). Fruits of warm climates. Miami, 1987,p.301 304. Disponível em: <http://www.hort.purdue.edu/newcrop/morton/ mangosteen.html>.

MÜLLER, C.H.; CALZAVARA,B.B.G ; GUIMARÃES,A.D.G. Mangostão.Belém: Embrapa CPATU, 1989. 6p. (Recomendações Básicas, 14).

MÜLLER, C. H.; FIGUElREDO, F. J. C.; MÜLLER, N. R. M. Armazenamento de sementes de mangostão. Belém: Embrapa-CPATU, 1991. 15p. (Embrapa-CPATU, Circular Técnica, 58).

MÜLLER, C. H.; FIGUEIREDO, F. J. C.; NASCIMENTO, W. M. O.; CARVALHO, J. E. U.; STEIN, R. L. B.; SILVA, A. B.; RODRIGUES, J. E. L. F. A cultura do mangostão. Belém: Embrapa CPATU; Brasília: Embrapa SPI, 1995. 56p. (Coleção plantar, 28).

MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v.15, p.473 497, 1962.

NACZK, M.; SHAHIDI, F. Phenolics in cereals, fruits and vegetables: Occurrence, extraction and analysis. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, Amsterdan, v.41, n.5, p.1523 1542, 2006.

NAKASONE, H. Y.; PAULL, R. E. Mangosteen. In: NAKASONE, H. Y.; PAULL, R. E. (Eds.). Tropical Fruits, CAB International: 1998, p.359 369.

Referências Bibliográficas | 137

NAZRE, M.; NEWMAN, M. F.; PENNINGTON, R. T.; MIDDLETON, D. J. Taxonomic revision of Garcinia Section Garcinia (Clusiaceae). Phytotaxa, v.373, p.1 52, 2018

NOICHINDA, S. Effect of modified atmosphere condition on quality and storage life of mangosteen (Garcinia mangostana L.) fruit. 1992. 74f. Thesis (Doctorate) Kasetsart Univercity, Bangkok, 1992.

NUSWAMARHAENI, S.; PRIHATI, D.; POHAN, E. P. Mengenal buah unggul Indonesia. TRUBUS. [in Indonesian], 1989.

OCHSE, J. J.; SOULE, JR., M. J.; DIJKMAN, M. J.; WEHLBURG, C. Tropical and Subtropical Agriculture. MacMillan Co. New York. 1961.

OKONOGI, S.; DUANGRAT, C.; ANUCHPREEDA, S.; TACHAKITTIRUNGROD, S. CHOWWANAPOONPOHN, S. Comparison of antioxidant capacities and cytotoxicities of certain fruit peels. Food Chemistry, Kidlington, v.103, n.33, p.839 846, 2007.

OLIVEIRA, M. A. Utilização de películas de fécula de mandioca como alternativa à cera comercial na conservação pós colheita de frutos de goiaba (Psidium guayava) variedade Kumagai. 1996. 73f. Dissertação (Mestrado em Ciência e Tecnologia de Alimentos) Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Universidade de São Paulo, Piracicaba, 1996.

OSMAN, M. B.; MILAN, A. R. Fruits for the Future - Mangosteen (Garcinia mangostana). Southampton: Southampton Centre for Underutilised Crops, 2006. 170p.

OSORIO, S. et al. Integrative comparative analyses of transcript and metabolite profiles from pepper and tomato ripening and development stages uncovers species specific patterns of network regulatory behavior. Plant Physiol., v.159, p.1713 1729, 2012.

OSOTSAPAR, Y. Plant Nutritions. Department of Soil science, Faculty of Agriculture, Kasetsart University, Bangkok. 2000, 424p.

PADOLINA, F. Vegetative propagation experiments and seed germination. Philippine Journal of Agriculture, v.2, n.4, p.347 355, 1931.

PALAKAWONG, C.; DELAQUIS, P. Mangosteen processing. A review. J. Food Process. Preserv., v.42, p.1 10, 2018.

Referências Bibliográficas | 138

PALAPOL, Y.; KETSA, S.; STEVENSON, D.; COONEY, J.M.; ALLAN, A.C..; FERGUSON, I.B. Colour development andquality ofmangosteen(Garcinia mangostana L.) fruit during ripening and after harvest. Postharvest Biology and Technology, v.51, p.349 353, 2009.

PALMA GIL, C. J.; REYES, R. C.; MANZON, L.Q. Mangosteen (Garcinia mangostana L., Guttiferae). In: Cultural Direction for Philippines Agricultural Crop, Vol. 1(Fruits): 1972, p.169 172. Bureau Plant Industry, Manila, Philippines.

PANKASEMSUK, T.; GARNER, J. O.;MATTAR, F. B.; SILVA, J. L. Translucent flesh disorder of mangosteen fruit (Garcinia mangostana L.). HortScience, v.31, n.1, p.112 113, 1996.

PANTASTICO, E. B. Postharvest physiology, handling and utilization of tropical and subtropical fruits and vegetables. AVI Pub., Westport, Conn. 1975.

PARIJADI, A. A. R. Metabolic Profiling of Garcinia mangostana (mangosteen): a newinsightintoqualityafter postharvest treatment.2019. 143f.Doctoral Dissertation Osaka University Osaka University Knowledge Archive: OUKA, 2019.

PAULL, R. E.; KETSA, S. Mangosteen. Agriculture Handbook No. 66. The commercial storage of fruits, vegetables, and florist and nursery stocks, 2002.

PAULL, R. E.; KETSA, S. Mangosteen. In: GROSS, K. C.; WANG, C. Y.; SALTVEIT, M. (Eds). Agriculture Handbook No. 66. The Commercial Storage of Fruits, Vegetables and Florist and Nursery Stocks. Produce Quality and Safety Laboratory, USDA, Beltsville, Maryland, USA. 2002.

PAULL, R. E.; KETSA, S. Mangosteen: Postharvest Quality Maintenance Guidelines. Fruit, Nut, Beverage Crop., p.30 32, 2014.

PECHKEO, S.; SDOODEE, S.; NILNOND, C. The effects of calcium and boron sprays on the incidence of translucent flesh disorder and gamboge disorder in mangosteen (Garcinia mangostana L.). Kasetart Journal (Natural Science), v.41, p.621 632, 2007.

PIRIYAVINIT, P.; KETSA, S.; VAN DOORN, W. G. 1 MCP extends the storage and shelf life of mangosteen (Garcinia mangostana L.) fruit. Postharvest Biology and Technology , v.61, p.15 20, 2011.

Referências Bibliográficas | 139

PODEE, R. Nondestructive methods for separation of translucent pulp in mangosteen by specific gravity and X-Ray Computed Tomography. 1998. M.S. Thesis. Chiang Mai Univ. Thailand. [In Thai], 1998.

POPENOE, W. The mangosteen in America. Journal of Heredity, v.19, p.537 545, 1928.

PRANAMORNKITH, T.; KANLAYANARAT, S.; UTHAIRATANAKIJ. A. Effect of polyethylene film packaging on the storage life of mangosteen fruit (Garcinia mangostana L.). In: AUSTRALIAN POST HARVEST HORTICULTURE CONFERENCE, 2003, Brisbane. Proceedings… Brisbane, 2003a.

PRANAMORNKITH, T.; KANLAYANARAT, S.; UTHAIRATANAKIJ, A. Effect of polymeric films and packing methods on storage life of mangosteen fruit (Garcinia mangostana L.). In: AUSTRALIAN POST HARVEST HORTICULTURE CONFERENCE, 2003, Brisbane. Proceedings… Brisbane, 2003b.

PRATT, D. S.; DEL ROSARIO, J. I. Philippine fruits: Their composition and characteristics. Philippine Journal of Science, v.A8, p.59 80, 1913.

RAJAN, S.; TIWARI, D.; SINGH, V. K.; SAXENA, P.; SINGH, S.; REDDY, Y. T. N.; … KENNEDY, R. Application of extended BBCH scale for phonological studies in mango (Mangifera indica L.). Journal of Applied Horticulture, v.13, n.2, p.108 114, 2011.

RAMAGE, C. M.; SANDO, L.; PEACE, C. P.; CARROL, B. J.; DREW, R. A. Genetic diversity revealed in the apomitic fruit species Garcinia mangostana L. (mangosteen). Euphytica,Wageningen v.136, n.1, p.1 10, 2004.

RAMLAN, M. F.; MAHMUD, T. M. M.; HASAN, B. M.; KARIM, M. Z. Studies on photosynthesisonyoungmangosteenplantsgrownunderseveralgrowthconditions. Acta Horticulturae, v.321, p.482 489, 1992.

RATTANACHINNAKORN, B.; PHUMHIRAN, J.; NANTHACHAI, S. S. Controlled atmosphere storage of mangosteen. Ann. Tech. Conf., Proc. Hort. Res. Inst., Dept. Agric., Bangkok, Thailand. [In Thai], 1996.

Referências Bibliográficas | 140

RICHARDS, A. J. Studies in Garcinia, dioecious tropical forest trees: the origin of the mangosteen (G. mangostana L.). Botanical Journal of the Linnean Society, v.103, p.301 308, 1990b.

RICHARDS, A. J. Studies in Garcinia, dioecious tropical forest trees: agamospenny. Botanical Journal of the Linnean Society, v.103, p.233 250, 1990a.

RIDLEY,N.H.TheFloraoftheMalay Peninsula.L.Reeve& Co.,Ashford,UK, 1967.

ROGER, L.Phytopathologiedes pays chauds.EncyclopedieMycologique, v.17,p.948 958, 1951.

ROSTINI, N.; HAERUMAN, M. K.; MANSYAH, E.; MUAS, I. Current Status on Mangosteen Mutation Breeding in Indonesia Deutscher Tropentag, 2003, p.8 10 October, 2003, Gottingen.

SACRAMENTO, C. K. Mangostãozeiro (Garcinia mangostana L.). Jaboticabal: Sociedade Brasileira de Fruticultura, 2001. 66p. (Série Frutas Potenciais).

SACRAMENTO, C. K.; CARVALHO, J. E. U.; MÜLLER, C. H.; NASCIMENTO, W. M. O.; COELHO JÚNIOR, E. Mangostão. In: SANTOSSEREJO, J. A.; DANTAS, J. L. L.; COELO, Y. S. Fruticultura tropical: espécies regionais e exóticas. Brasília: Embrapa Informação Tecnológica, 2009. p.39-362.

SACRAMENTO, C. K.; COELHO JÚNIOR, E.; CARVALHO, J. E. U.; MULLER, C. H.; NASCIMENTO, W. M. O. Cultivo do mangostão no Brasil. Revista Brasileira de Fruticultura. Jaboticabal, v.29, n.1, p.195 203, abr. 2007.

SACRAMENTO, C. K.; COELHO JUNIOR, E. Cultivo do mangostão na Bahia. Bahia Agrícola, Salvador, v.7, n.1, p.15-18, 2005.

SAHIJRAM, L.; RAJASEKHARAN, P. E. Tissue culture strategies applicable to in vitro conservation on tropical fruits crops. In: ARORA, R. K.; RAO, R. V. (Eds.). Tropical Fruits in Asia. Diversity, Maintenance, Conservation and Uses. IPGRI. India: 1998, p.113 119.

SAMSON, J. A. Tropical fruits. Longman, London. 1986. SANDO, L. Assessment of genetic diversity in Australian grown Mangosteen (G. mangostana L.) and its Wild Relatives. Paper presented at the Second International

Referências Bibliográficas | 141

Symposium on Biotechnology of Tropical and Subtropical Species, p.5 8 Nov 2001, Academia Sinica, Taipei, Taiwan. 2001.

SAW, L. G.; LA FRANKIE, J. V.; KOCHUMMEN, K. M.; YAP, S. K. Fruit trees in a Malaysian rain forest. Economic Botany, v.45, n.1, p.120 136, 1991.

SDOODEE, S. The influence of global warming on phonological change of mangosteen (Garcinia mangostana L.) in Songkhla. In: (STT33) “Science & Technology for Global Sustainability”, 3p. 33rd Congress on Science & Technology. Nakhon Si Thammarat, Thailand: Walailak University, 2007.

SDOODEE, S.; CHIARAWIPA, R. Fruit splitting occurrence of Shogun mandarin (Citrus reticulate Blanco cv. Shogun) in southern Thailand and alleviation by calcium and boronsprays. Songklanakarin Jounal ofScienceand Technology,v.27,n.4,p.719730, 2005a.

SDOODEE, S.; CHIARAWIPA, R. Regulating irrigation during pre harvest to avoid the incidence of translucent flesh disorder and gamboge disorder of mangosteen fruits. . Songklanakarin Jounal of Science and Technology, v.27, p.957 965, 2005b

SDOODEE, S.; LIMPUN UDOM, S. Effect of excess water on the incidence of translucent flesh disorder in mangosteen (Garcinia mangostana L.) Acta Hort., v.575, p.813 820, 2002.

SHANDIZ, H. T.; RAZAVI, B. M.; HOSSEINZADEH, H. Review of Garcinia mangostana and its xanthones in metabolic syndrome and related complications Phytotherapy Research, v.31, p.1173 1182, 2017.

SHIBATA, M.; MATOBA, Y.; TOSA, H.; IINUMA, M. Effects of mangosteen pericarp extracts against mammary cancer. Altern. Integr. Med., v.2, p.8 12, 2013.

SIDDAPPA, G. S.; BHATIA, S. S. Preservation of mangosteen (Garcinia mangostana L.) Bull. Centr. Food Res. Inst. Mysore, India, v.3, p.296 297, 1954.

SMITH, N. J. H.; SERRAO, E. A. S.; ALVIM, P. T.; FALESI, I. C. AmazoniaResiliency and Dynamism of the Land and its People. The United Nations University, 1995.

SINGH, R. Fruits. National Book Trust, New Delhi, India, 1969.

Referências Bibliográficas | 142

SOBIR, P. R.; POERWANTO, R. Mangosteen genetics and improvement. International Journal of Plant Breeding, n.1, p.105 111, 2007.

SOBIR, P. R.; SANTOSA, E.; SINAGA, S.; MANSYAH, E. Genetic variability in the apomictic mangosteen (Garcinia mangostana) and its close relatives (Garcinia spp.) based on ISSR markers. Biodiversitas, v.2, p.59 63, 2011.

SOSRODIHARJO, S. Picking maturity of mangosteen. Buletin Penelitian Hortikulture, v.8, n.4, p.11 17, 1980 (In Indonesian).

SPRECHER, M. A. Étude sur la semence et la germination du Garcinia mangostana L. Rev. Génér. de Botan., v.31, p.513 531, 2019.

STEPHENS, S. E. Some tropical fruits. 1. The mangosteen. Queensland Agricultural Journal, v.44, p.346 348, 1935.

SU, M. T. Report of the Mycologist, Burma, Mandalay, 1993.

SUHENDRA, D.; MUSTAMU, N. E. Structure and germination pattern mangosteen seed (Garcinia mangostana L). Earth Environmental Science, v.205, p.012 015, 2018.

SUKATTA, U. et al. Distribution of major xanthones in the pericarp, aril, and yellow gum of mangosteen (Garcinia mangostana Linn.) fruit and their contribution to antioxidative activity. Bioscience. Biotechnology. Biochemistry., v.77, p.984 987, 2013.

SUKSAMRARN, S.; SUWANNAPOCH, N.; PHAKHODEE, W.; THANUHIRANLERT, J.; RATANANUKUL, P.; CHIMNOI, N.; SUKSAMRARN, A. Antimycobacterial activity of prenylated xanthones from the fruits of mangosteen. Chemical and Pharmaceutical Bulletin, v.51, n.7, p.857-859, 2003.

SUNARYONO, H. Shortening the juvenile period of mangosteen (Garcinia mangostana). Warta Penelitian dan Pengembangan Pertanian (Indonesia), (in Indonesian). 1987.

SYAHPUTRA, M. R.; SETIADO, H.; SIREGAR, L. A. M.; DAMANIK, R. I. Morphologicalcharacteristicsofmangosteenplants(Garcinia mangostana L.)inLangkat District, North Sumatera, Indonesia. IOP Conference Series: Earth Environmental Science, v.782 p.042 056, 2021.

Referências Bibliográficas | 143

TE CHATO, S. Floral and fruit morphology of some species in Garcinia spp. Songklanakarin Jounal of Science and Technology, v.29, p.245 252, 2007.

TE CHATO, S.; LIM, M. Improvement of mangosteen micropropagation through meristematic nodular callus formation from in vitro derived leaf explants. Scientia Horticulturae, v.86, n.4, p.291 298, 2000.

THOMAS, S. C. Geographical parthenogenesis in a tropical forest tree. American Journal of Botany, v.84, p.1012 1015, 1997.

TIXIER, P. Contribution a létude des Garcinia. Fruits d’Outre Mer, v.10, p.209 212, 1955.

TONGDEE, S. C. Mangosteen. Second Progress Report ACIAR Project No. 8356. TISTR, Bangkok, Thailand. 1985.

TONGDEE, S. C.; SUWANAGUL, A. Postharvest mechanical damage in mangosteen. ASEAN Food Journal, v.4, n.4, p.151 155, 1989.

UNITED STATES DEPARTMENT OF AGRICULTURE (USDA). Garcinia mangostana L. 2014. Retrieved from http://plants.usda.gov/core/profile?symbol=GAMA10

VARGAS, O.; ALIX, Ch.; LOBO, A. D. Frutales y condimentarías del trópico húmedo. La Ceiba, HN, UNAH, 1999, 345p.

VERHEIJ, E. W. M. Garcinia mangostana. In: VERHEIJ, E. W. M.; CORONEL, R. E. (Eds.). Edible Fruits and Nuts. PROSEA No. 2, Bogor, Indonesia: 1992, p.175-181.

VERHEIJ, E. W. M. Garcinia mangostana L. In: VERHEIJ, E.W.M.; CORONEL, R. E. (Eds.). Plant Resources of South East Asia No. 2, Edible Fruit and Nuts. Wageningen: Pudoc. 1991.

VIETMEYER, N. D. Underexploited Tropical Plants with Promising Economic Value. National Academy of Sciences. Washington, D.C. 1975.

VOGEL, E. F. Seedling of dicotyledons. Center Agric. Publ. Doc. Wageningen, Netherlands, 1980, 471p.

WAKS, J. et al. Relationship between fruit waxing and development of rots in citrus fruit during storage. Plant Disease Reporter, v.69, n.10, p.869 870, 1985.

Referências Bibliográficas | 144

WESTER, P. J. The food plants of the Philippines. Philippines Agricultural Review, v.14, n.3, p.211 384, 1921.

WESTER, P. J. The preservation of tropical fruits. Philippines Agricultural Review, v.13, n.3, p.173 185, 1920.

WESTER, P. J. Edible Garcinias and possible mangosteen stocks. J. Dep. Agric., Puerto Rico, v.10, p.283 305, 1926.

WESTER, P. J. Food plants of the Philippines. II. Fruits and spices. Philippines Agricultural Review, v.9, p.199 256, 2016.

WHITMORE, T. C. Tree Flora of Malaya: A Manual for Foresters. Volume 2. Longman: Kuala Lumpur, Malaysia, 1973.

WIEBEL, J.; CHACKO, E. K.; DOWNTON, W. J. S.; SUB HADRABANDHU, S. Mangosteen (Garcinia mangostana L.): a potential crop for tropical northern Australia. Acta Horticulturae, v.321, p.132 141, 1992.

WEIBEL, J.; EAMMS, D.; CHACKO, E. K.; DOWNTON, W. J. S.; LUDDERS, P. Gas exchange characteristics of mangosteen (Garcinia mangostana L.) leaves. Tree Physiology, v.13, p.55 69, 1993.

WINTERS, H. F. The mangosteen. Fruit Var. Hort. Dig., v.8, n.4, p.57 58, 1953.

WINTERS, H. F.; RODRIGUEZ COLON, F. Storageof mangosteen seeds. Proceedings of the American Society for Horticultural Science, Alexandria, n.1, v.6, p.304 306, 1953.

YAACOB, O.; TINDALL, H. D. Mangosteen cultivation. Roma: FAO, 1995. 124p. (Plant Production and Protection Paper, n. 129).

YAHIA, E. M. Modified and controlled atmospheres for tropical fruits. Horticultural Review, v.22, p.123 183, 1998.

YAPWATTANAPHUM, C.; SUBHADRABANDHU, S.; SUGIURA, A.; YONEMORI, K.; UTSUNOMIYA, N. Utilisation of some Garcinia species in Thailand. Acta Horticulturae, v.575, n.2, p.563 570, 2002.

ZEVEN, A. C.; DE WET, J. M. J. Dictionary of cultivated plants and their regions of diversity. Wageningen. 1982, 259p.

Referências Bibliográficas | 145

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