Vol. 1 Núm. 3 Ene-Mar 2009

REVISTA MEXICANA DE MEDICINA DE LA

Asociaci贸n Mexicana de Medicina de la Reproducci贸n, A.C.

Volumen 1, n煤mero 3, enero-marzo 2009

REVISTA MEXICANA DE MEDICINA DE LA

Mesa Directiva 2008-2009 Dr. Gerardo Velázquez Cornejo Presidente

Dra. Imelda Hernández Marín Tesorero

Dr. Fernando Gaviño Gaviño Vicepresidente

Dr. Saúl Vital Reyes Protesorero

Dr. Ranferi Gaona Arreola Secretario

Dr. Luis Ignacio Aviña Cueto Dra. Olivia Marín Romero Dr. Adán Oliveros Ceballos Dr. Rafael Alfonso Sánchez Usabiaga Dr. René Jaime Toro Calzada Vocales

Dr. Julio Francisco de la Jara Díaz Prosecretario

Comité Editorial para la Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Editor Dr. Gerardo Velázquez Cornejo

2008-2011

Co-Editores Dr. Juan Carlos Hinojosa Cruz Dr. Carlos G. Salazar López Ortiz Dr. Manuel Mario Matute González Dra. Imelda Hernández Marín

2008-2011 2008-2011 2008-2011 2008-2011

Comité Editorial 2008-2011 Distrito Federal Dra. Judith Ablanedo Aguirre Dr. Manuel Álvarez Navarro Dr. Luis Ignacio Aviña Cueto Dr. Gerardo Barroso Villa Dr. Juan Carlos Barros Delgadillo MVZ Esperanza Carballo Mondragón Dr. Silvio Cuneo Pareto Dr. Julio Francisco de la Jara Díaz Dr. Fernando Gaviño Gaviño Dr. Ranferi Gaona Arreola Dr. Imelda Hernández Marín Dr. Juan Carlos Hinojosa Cruz Dr. Alberto Kably Ambe Dr. Olivia Marín Romero Dr. Ma. Teresa Márquez Cristino Dr. Manuel Mario Matute González Dr. Héctor Mondragón Alcocer Dr. Carlos Morán Villota M. en C. Paloma Neri Vidaurri Dr. Carlos G. Salazar López Ortiz

Dr. Héctor Rogelio Santana García Dr. Álvaro Santibáñez Morales Dr. Claudio Serviere Zaragoza Dr. Rosario Tapia Serrano Dr. René Toro Calzada Dr. Sergio Téllez Velasco Biol. Gerardo Villegas Moreno Dr. Saúl Vital Reyes Otras sedes Dr. Álvaro Sevilla y Ruiz Dr. Ernesto Gallardo Lozano Dr. Efraín Pérez Peña Dr. Carlos Félix Arce Dr. Rafael Alfonso Sánchez Usabiaga Dr. Eduardo del Río Dr. Adán Olivero Ceballos Dr. Alfonso Batiza Reséndiz Dr. Antonio Gutiérrez Gutiérrez Dr. Luis Arturo Ruvalcaba Castellón

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

REVISTA MEXICANA DE MEDICINA DE LA

Volumen 1, número 3, enero-marzo, 2009

CONTENIDO

Contents

EDITORIAL

EDITORIAL

87

Gerardo Velázquez Cornejo

87

Gerardo Velázquez Cornejo

ARTÍCULO DE REVISIÓN 89

Reproducción asistida: a 30 años del primer nacimiento de fertilización in vitro Alberto Kably Ambe, Sergio Estévez González

REVIEW ARTICLE 89

ARTÍCULOS ORIGINALES 96

102

Vitrificación en cryotop, técnica de alto rendimiento para la criopreservación de ovocitos humanos Luis Arturo Ruvalcaba Castellón, Martha Isolina García Amador, José Medina Flores, Edgar Quiróz Torres, Rocío Martínez Armas Sensibilidad de los canales de calcio dependientes de voltaje al pH intracelular en el espermatozoide humano capacitado. Efecto modulador del AMPc Paloma del Carmen Neri Vidaurri, Víctor Torres Flores, Marco Tulio González Martínez

ORIGINAL ARTICLES 96

102

CASO CLÍNICO 109

Primer nacido vivo en México luego de transferencia de embrión único obtenido a partir de cigotos vitrificados. Comunicación del caso Martha Isolina García Amador, Alejandro Chávez Badiola, José Medina Flores, Edgar Quiróz Torres, Rocío Martínez Armas, Luis Arturo Ruvalcaba Castellón

Assisted reproduction: after thirty years of the first birth of in vitro fertilization Alberto Kably Ambe, Sergio Estévez González

Vitrification in cryotop, high performance technique for crypreservation of human oocytes Luis Arturo Ruvalcaba Castellón, Martha Isolina García Amador, José Medina Flores, Edgar Quiróz Torres, Rocío Martínez Armas Voltage-dependent calcium channels’ sensitivity yo intracellular pH in the capacitated human sperm. cAMP mudulator effect Paloma del Carmen Neri Vidaurri, Víctor Torres Flores, Marco Tulio González Martínez CLINICAL CASE

109

First alive born in Mexico after transfer of unique embryo obtained from vitrified zygotes. A report of the case Martha Isolina García Amador, Alejandro Chávez Badiola, José Medina Flores, Edgar Quiróz Torres, Rocío Martínez Armas, Luis Arturo Ruvalcaba Castellón

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción es el Órgano Oficial de la Asociación Mexicana de Medicina de la Reproducción, A.C. Los artículos y fotografías son responsabilidad exclusiva de los autores. La reproducción parcial o total de este número sólo podrá hacerse previa autorización del editor en jefe. Toda correspondencia relacionada con el contenido y suscripciones deberá dirigirse al editor en jefe: WTC Montecito 38, piso 15, oficina 29, colonia Nápoles, CP 03810, México, DF. Tel.: 9000-2863. E-mail: ammr@wtcmexico.com.mx Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción: Certificado de Licitud de Título en trámite. Certificado de Licitud de Contenido en trámite. Registro de Reserva del Derecho de Autor en trámite. Autorización como Publicación Periódica por Sepomex en trámite.

Publicación realizada, comercializada y distribuida por EDICIÓN Y FARMACIA, SA de CV, Calle E manzana 8, número 1, colonia Educación, México, DF, CP 04400. Tel.: 5678-2811, fax: 5544-3225. E-mail: articulos@nietoeditores.com.mx Impresa por Roma Color, SA de CV. Pascual Orozco 70, col. San Miguel Iztacalco, México, DF, CP 08650.

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción 2009;1(3):87

Editorial

E

ste número de la Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción está conformado por dos artículos originales, un artículo de revisión y un caso clínico.

El trabajo de investigación se refiere a la vitrificación en cryotop, técnica de alto rendimiento para la criopreservación de ovocitos humanos. Esta contribución tuvo como propósito describir la evolución de 1,191 ovocitos humanos propios y donados luego de vitrificación en cryotop, en un centro de reproducción asistida. Este estudio reporta tasas de supervivencia, fertilización y clivaje comparables con las reportadas por otros autores para la vitrificación de ovocitos humanos, independientemente del dispositivo utilizado para el depósito final de éstos.

La proporción de embarazos es similar a la informada para ciclos en fresco, transferencia de embriones obtenidos a partir de ovocitos propios, donados o vitrificados.

Llama la atención que, hasta ahora, los nacidos luego de un proceso de vitrificación de ovocitos, al parecer tienen incidencia de anomalías congénitas no mayor que la de los nacidos de embarazos espontáneos en mujeres fértiles. Es indudable que aún hace falta más investigación al respecto, con mayor cantidad de material de estudio y con una metodología más compleja que aumente su nivel de evidencia. Es loable el interés de los grupos mexicanos de infertilidad no sólo en la atención de pacientes, sino en reportar sus experiencias para hacerlas del conocimiento de la comunidad médica internacional.

y cuantificar el aumento de la concentración del calcio intracelular inducido con progesterona. Los autores de este trabajo consideran que los bioensayos con espermatozoides no capacitados incubados con papaverina, para la inseminación de ovocitos de mamíferos inferiores, abren camino para que puedan usarse en pacientes con astenozoospermia o biopsia testicular con fines de reproducción asistida, en donde por lo general se administra pentoxifilina con tiempos más largos de incubación.

El artículo de revisión es una visión retrospectiva de 30 años de reproducción asistida. Más allá de su valor histórico, es una fuente de información bibliográfica importante para quienes se incian en el estudio de la especialidad en reproducción humana. La lectura de este trabajo permitirá al lector percatarse que la evolución en tres décadas ha sido por demás impresionante, no sólo por el número de investigadores que esta especialidad ha atraído, sino también por sus logros y el refinamiento de sus técnicas.

El caso clínico es de una paciente con esterilidad primaria de cinco años de evolución y es el reporte del primer embarazo en México a partir de cigotos vitrificados. Esto demuestra que la vitrificación es una técnica útil para la criopreservación de tejidos, ovocitos, cigotos y blastocistos, entre otros, con tasas de recuperación exitosas.

El otro artículo resultado de una investigación original versa sobre la sensibilidad de los canales de calcio dependientes de voltaje al pH intracelular en el espermatozoide humano capacitado. Este ensayo tuvo como propósito examinar la repercusión de incrementar el AMPc intracelular con el inhibidor de fosfodiesterasas papaverina,

Aprevechamos la oportunidad para reiterarles que la continuidad de nuestra Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción es una responsabilidad que nos compete a todos los que nos dedicamos a la reproducción humana.

La del editor está limitada a la respuesta y venebolencia de quienes asumen su compromiso de fortalecer y aportar para que nuestra publicación alacance pronto el reconocimiento que esperamos.

La versión completa de este artículo también está disponible en: www.revistasmedicasmexicanas.com.mx

Dr. Gerardo Velázquez Cornejo Editor

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

87

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción 2009;1(3):89-95

Artículo de revisión Reproducción asistida: a 30 años del primer nacimiento de fertilización in vitro Alberto Kably Ambe,* Sergio Estévez González* RESUMEN La hiperestimulación ovárica controlada se creó para obtener una mayor cantidad de ovocitos y un número adecuado de embriones de buena calidad para transferir. En un principio hubo estimulaciones exageradas en las que se capturaban más de 20 óvulos, ya que las técnicas de micromanipulación como la inyección intracitoplasmática y la eclosión asistida eran deficientes; por tanto, se ha buscado la estimulación óptima que incluye: el estudio clínico de la mujer y pruebas de laboratorio y gabinete. Es importante descartar enfermedades que interfieran en el desarrollo de la estimulación ovárica, como el hipogonadismo hipogonadotrófico, hiperprolactinemia, hipotiroidismo y trastornos de la alimentación como la obesidad y la anorexia. La tendencia es buscar medicamentos de depósito que permitan disminuir el número de aplicaciones a la paciente y hacer un protocolo más accesible, por lo que se encuentra en desarrollo una hormona denominada coriofolitropina. La tendencia será regresar a la no estimulación, en cuanto sea más eficaz la selección del embrión a transferir y se incremente la tasa de embarazo. La captura de ovocitos por vía transvaginal, con guía ultrasonográfica, ha demostrado ser altamente efectiva, rápida e inocua. Gracias a la técnica PICSI se han logrado mejores índices de fertilización en parejas con falla en la fertilización o bloqueo de embriones o para aquellas con un factor masculino severamente dañado. En la actualidad se busca reducir el número de embriones a transferir sin afectar la tasa de embarazo, sobre todo si la transferencia se realiza entre los días 3 y 5. Durante estos 30 años se ha demostrado la necesidad del soporte de la fase lútea. Actualmente se encuentran en estudio métodos de depósito para hacer más sencilla su aplicación.

Palabras clave: reproducción asistida, hiperestimulación ovárica controlada.

ABSTRACT Controlled ovarian hyper-stimulation was created to obtain a higher quantity of ovocytes and an adequate number of embryos of good quality to transfer. At the beginning there were exaggerated stimulations in which more than 20 ovules were captured, because micro-manipulation techniques such as intracytoplasmic injection and assisted hatching were deficient; thus, optimal stimulation has been searched including: the clinical study of women and lab tests. It is important to underline diseases interfering in the developing of ovarian stimulation, such as hypogonadotrophic hypogonadism, hyperprolactinemia, hypothyroidism and eating disorders, such as obesity and anorexia. The trend is to look for depot drugs leading to diminish the number of applications to the patient and to do a more accessible protocol, thus a hormone denominated corifollitropin is under development. The trend will be to return to no-stimulation, when the selection of embryo to transfer is more efficient and pregnancy rate increases. Ovocytes capture by vaginal way, with ultrasonographic guide, has been demonstrated to be highly effective, quick and safe. Due to the technique PICSI, better fertilization rates have been reached in couples with fertilization failure or embryo blocking or for those couples with a severely damaged male factor.

Nowadays the purpose is to reduce the number of embryos to transfer without affecting pregnancy rate, especially if transfer is done between days 3 and 5. During these 30 years it has been demonstrated the need of luteal phase support. Currently depot methods to do simpler its application are under study.

Key words: assisted reproduction, controlled ovarian hyper-stimulation.

*

Centro Especializado para la Atención de la Mujer, Unidad de Reproducción Asistida, Hospital Ángeles de las Lomas.

Correspondencia: Dr. Alberto Kably A. Hospital Ángeles de las Lomas. Avenida Vialidad de la Barranca s/n, colonia Valle de las Palmas, Huixquilucan, Estado de México, 52763.

Recibido: septiembre, 2008. Aceptado: diciembre, 2008.

Este artículo debe citarse como: Kably AA, Estévez GS. Reproducción asistida: a 30 años del primer nacimiento de fertilización in vitro. Rev Mex Reprod 2009;1(3):89-95.

La versión completa de este artículo también está disponible en: www.revistasmedicasmexicanas.com.mx

HIPERESTIMULACIÓN OVÁRICA CONTROLADA Hace tres décadas nació Luis Brown, producto de un ciclo natural sin estimulación, cuando sólo existía experiencia para la inducción de ovulación técnica destinada a pacientes con anovulación. Sin embargo, al poco tiempo se creó la hiperestimulación ovárica controlada para obtener una mayor cantidad de ovocitos y un número adecuado de embriones de buena calidad para

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

89

Kably Ambe A y Estévez González S

transferir. En un principio hubo estimulaciones exageradas en las que se capturaban más de 20 óvulos, ya que las técnicas de micromanipulación como la inyección intracitoplasmática y la eclosión asistida se encontraban en etapas tempranas de desarrollo, eran poco efectivas y causaba daño a los óvulos, lo que provocaba bajas tasas de fertilización. Esto llevaba, a su vez, a la cancelación de un número importante de transferencias por falta de embriones para este fin.

Desde hace varios años se demostró que la estimulación exagerada generaba concentraciones de estradiol muy elevadas e interferían en la implantación del embrión, por lo que se busca realizar una estimulación óptima. En general, se reporta que es suficiente la captura de 10 a 14 ovocitos; de éstos, generalmente se encuentran maduros 80% (metafase II).1,2 El primer paso para tener una estimulación óptima es el estudio clínico de la mujer, principalmente el patrón menstrual y el antecedente de cirugías ováricas dentro de la historia clínica; deben realizarse pruebas de laboratorio y gabinete para evaluar cualitativamente la reserva ovárica, número de folículos antrales, tamaño y volumen de los ovarios, las hormonas denominadas basales (folículo estimulante, luteinizante y estradiol); las cuales se realizan los primeros días del ciclo menstrual (días 2 a 4). Todo lo anterior será suficiente para predecir una falla ovárica, una baja respuesta o una respuesta exagerada, como sucede con las pacientes que padecen síndrome de ovarios poliquísticos.3-5 Si bien existen hormonas ligeramente más específicas para una hiperrespuesta, como la hormona antimülleriana, es importante considerar que a diferencia del conteo de folículos antrales, su determinación tiene un costo elevado y es difícil de reproducir,6 por lo que se le descarta como estudio de tamizaje.7 También es importante descartar otras enfermedades que interfieran en el desarrollo de la estimulación ovárica, como el hipogonadismo hipogonadotrófico, hiperprolactinemia, hipotiroidismo y trastornos de la alimentación como la obesidad y la anorexia.8 Para lograr este objetivo fue necesario un mayor reclutamiento y desarrollo de folículos antrales, por lo que se creó la extracción de gonadotropinas urinarias de mujeres menopáusicas, de ahí el nombre de menotropinas, se purifican en laboratorio, logrando al inicio la obten-

90

ción de más ovocitos maduros. Al poco tiempo surgió la duda de probables contaminantes y la relación de los mismos en la variación de la respuesta a la estimulación, aun en la misma paciente con los mismos medicamentos, creando las gonadotropinas altamente purificadas que inclusive separan la FSH de la LH, aunque en la mayoría de los casos se administraban a la paciente incluso con la misma jeringa y al mismo tiempo.9 Sin embargo, el incremento masivo de estos procedimientos generó una demanda que con el tiempo se volvería imposible cubrir, además de que se creyó que existía una variación entre los lotes de producción. Como respuesta, se crearon nuevas gonadotropinas con tecnología recombinante que han demostrado más grado de inocuidad, estar libres de reacciones alérgicas e incluso dar mejores resultados en pacientes con mala respuesta, como las mujeres mayores o quienes no respondieron adecuadamente con las menotropinas. No obstante, con el tiempo, en diversos metanálisis acerca de la administración de menotropinas, menotropinas altamente purificadas o gonadotropinas, e inclusive en la LH recombinante,10,11 la tasa de embarazo no se ha modificado.

Durante todos estos años, la tendencia es buscar medicamentos de depósito que permitan disminuir el número de aplicaciones a la paciente y hacer un protocolo más accesible, por lo que se encuentra en desarrollo una hormona denominada coriofolitropina con una vida media hasta de siete días, que sustituya al menos cinco días de inyecciones de FSHr y demuestre la misma tasa de embarazo en relación con los protocolos con FSHr.12 Durante años de estudio se ha confirmado que la respuesta a la estimulación ovárica no es dosis-dependiente, sino que se relaciona con el tipo de paciente y, específicamente, con el tipo de receptores que tiene para las gonadotropinas. Éstos son estudios caros y muy específicos, que sólo serán importantes en las bajas o en las hiperrespondedoras, en el resto de las pacientes existe un consenso mundial a no superar la dosis diaria de 300 unidades, ya que no existe diferencia al respecto y sólo incrementa de manera notable el riesgo de padecer síndrome de hiperestimulación ovárica.13,14 La tendencia será regresar a la no estimulación, en cuanto sea más eficaz la selección del embrión a transferir y se incremente la tasa de embarazo. Este hecho se ha estudiado por diversos autores para las mujeres de más

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Reproducción asistida: a 30 años del primer nacimiento de fertilización in vitro

edad con baja respuesta a la estimulación, y otros con la idea de capturar ovocitos y llevar a cabo la maduración in vitro, que ha mostrado muy buenos resultados.15 Captura de ovocitos

Al inicio fue uno de los principales problemas de las técnicas de alta complejidad, ya que este paso necesitaba una cirugía mayor, incluso por medio de una laparotomía generaba el subsecuente riesgo anestésico y un tiempo largo de recuperación posquirúrgico. Con la invención de la laparoscopia, se acortó el tiempo de recuperación y el procedimiento fue menos doloroso, pero se agregaron nuevos riesgos generados por el proceso endoscópico como el enfisema o las lesiones vasculares en órganos adyacentes. La creación de la captura transvaginal con guía ultrasonográfica fue uno de los mayores avances en la reproducción asistida, hecho que también permitió saber que la probabilidad de capturar un ovocito metafase II es mayor cuando el diámetro del mismo es igual o mayor a 18 mm. Difícilmente se considera una nueva forma de capturar los ovocitos, puesto que en la actualidad la vía transvaginal, con guía ultrasonográfica, ha demostrado ser altamente efectiva, rápida e inocua, prácticamente sin complicaciones en manos experimentadas. Los últimos avances se encuentran en el material y la forma de las agujas transvaginales para este procedimiento, cada vez más refringentes al ultrasonido y más delgadas, lo que facilita capturar ovocitos para maduración in vitro, donde los folículos son más pequeños.16 La adición de nuevas tecnologías al ultrasonido, como el uso de Doppler a color para valorar la vascularidad perifolicular, únicamente ha demostrado una mayor probabilidad de capturar un ovocito en un folículo mejor irrigado, pero no influye en la calidad, grado de madurez o potencial reproductivo.17 El Doppler de poder con medición de los flujos vasculares, como el índice de resistencia, aún se encuentra en experimentación y desafortunadamente con resultados poco alentadores.18 Por lo anterior, la captura ovocitaria es uno de los procesos que ha experimentado más cambios durante estos años pero que difícilmente mostrará mayor evolución.

Micromanipulación

La inyección intracitoplásmica de espermatozoides (ICSI) fue el inicio de la micromanipulación de gameto

y durante todo este tiempo la evolución se encuentra destinada a nuevas técnicas para la selección adecuada del espermatozoide a inyectar; se ha demostrado que a pesar de tener una clasificación de criterio estricto (Kruger), dentro de parámetros normales, existen parejas con falla en la fertilización o bloqueo de embriones.19 Para este tipo de parejas o para aquellas con un factor masculino severamente dañado, es necesario otro tipo de selección en relación con el grado de fragmentación del ADN. 20 Con este objetivo existe una propuesta para utilizar una nueva técnica denominada PICSI, que consiste en nuevas cajas de Petri que contienen gotas de hialuron, en las que se selecciona el espermatozoide a inyectar de la siguiente manera: se vierte la muestra seminal capacitada en estos discos en donde los espermatozoides con menor fragmentación del ADN se adhieren al hialuron y son los que se seleccionan para realizar la inyección intracitoplasmática de un espermatozoide.

Gracias a esta tecnología se han logrado mejores índices de fertilización en este tipo de pacientes.

La eclosión asistida (denominada assisted hatching en inglés) fue el siguiente paso importante en la micromanipulación. Al inicio se realizaba de manera mecánica, con el tiempo se sustituyó con la química; sin embargo, el procedimiento requiere un gran adiestramiento para poder llevarlo a cabo. En esta técnica suele emplearse tecnología nueva como el láser, el cual sólo necesita programarse con una computadora, por lo que es más fácil y nítido el corte. Gracias a esto ya no es necesaria la curva de aprendizaje que normalmente existía en un embriólogo. Seguramente en un futuro cercano demostrará su utilidad incrementando la tasa de embarazo.

Otra avance de gran importancia fue el desarrollo del diagnóstico de preimplantación. Se pensó que sería la solución al problema de las parejas no sólo con padecimientos genéticos hereditarios o con riesgo incrementado durante el embarazo (como las mujeres mayores de 37 años), sino también algunas con otros padecimientos como la pérdida gestacional recurrente (tres o más abortos) o falla en la implantación (transferencia de seis o más embriones de buena calidad sin lograr implantación). Pero el estudio genético de una o dos células al embrión previo a su implantación es un proceso difícil de realizar, por lo que es necesario un

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

91

Kably Ambe A y Estévez González S

número adecuado de embriones, algo sumamente difícil debido a que, como ya se mencionó, este procedimiento se realiza en mujeres mayores de 37 años y bajas respondedoras, por lo que se emplea únicamente en parejas con sospecha o alto riesgo de daño cromosómico.21 No obstante, es necesario desarrollar técnicas específicas con tecnologías como el FISH para la detección de alteraciones genéticas.22 Para el tratamiento de la azoospermia obstructiva, gracias a la inyección intracitoplasmática de un espermatozoide, se realiza una biopsia testicular en lugar de aspiración directa del epidídimo, ya que la primera es más fácil de hacer y pueden criopreservarse muestras de tejido testicular para nuevos intentos, u otro embarazo, sin necesidad de repetir el procedimiento.

Finalmente, otro cambio importante en los últimos años se dirigió a disminuir el probable daño ocasionado por las diferentes técnicas, por lo cual los micromanipuladores se equiparon con nuevas agujas anguladas para facilitar la inyección del espermatozoide (recordemos que el microscopio cuenta de dos dimensiones). También se han desarrollado nuevas tecnologías como el Oosight o el poloscope unido al microscopio, un sistema computado con el que puede observarse el huso acromático, con el fin de no dañarlo al momento de la inyección intracitoplasmática del espermatozoide.

Transferencia embrionaria

En este procedimiento cae mucha responsabilidad porque todo el esfuerzo logrado hasta este momento puede ser desperdiciado si la transferencia no es adecuada, por lo que una enseñanza importante durante este tiempo de evolución es realizar un ensayo denominado prueba de transferencia durante la programación del procedimiento. Este paso quedó en desuso por la creación de nuevos catéteres, que incluyen camisas de diferentes formas y calibres que permiten no exponer a los embriones a hipoxia o a hipotermia durante los intentos por pasar el catéter en transferencias difíciles. La importancia de este paso previo radica en que tiene una alta capacidad para identificar las transferencias con alto grado de dificultad.

Lo anterior se comprobó después de hacer un protocolo de estudio que demostró que si bien las pruebas de transferencia fáciles no siempre lo son, las de dificultad elevada prácticamente siempre serán complicadas y son

92

las importantes de detectar, para tener la precaución de contar con diferentes instrumentos como catéteres más refringentes ultrasonográficamente, delgados, curvos o semirrígidos, que faciliten el procedimiento. Además, toda paciente con una transferencia difícil debe tener sedación anestésica para reducir la complejidad y evitar el dolor a la paciente.

En relación con el tipo de catéteres, no existe duda que los flexibles son menos agresivos con el endometrio y, por tanto, cuentan con las mejores tasas de embarazo.

Cada vez los catéteres flexibles tienen menor calibre para ser aun menos invasores con el endometrio. De los múltiples diseños existentes, ninguno ha demostrado ser mejor y el éxito dependerá de la experiencia de la persona que lo utilice.

El cambio constante entre los múltiples catéteres para realizar este proceso se enfoca al material con el que se producen y al tipo, forma y longitud de las guías o camisas que evitan el daño a los embriones.

La nueva tendencia mundial al cambio radica en el número de embriones a transferir, con la finalidad de reducir una de las principales complicaciones de las técnicas de reproducción asistida de alta complejidad, que es el embarazo de alto orden fetal.23,24 Históricamente se ha demostrado que la transferencia de más de tres embriones no disminuye la tasa de embarazo por transferencia, pero incrementa en forma importante el porcentaje de gestaciones triples o mayores.

En la actualidad se concentran esfuerzos para reducir el número de embriones a transferir sin afectar la tasa de embarazo, sobre todo si la transferencia se realiza entre los días 3 y 5. En algunos países europeos, en donde por razones de legislación sólo se permite transferir uno o dos embriones, se ha visto que el porcentaje de embarazos se afecta en forma insensible. En Latinoamérica y México es difícil que esto ocurra a largo plazo; sin embargo, la postura de transferencia máxima de tres embriones tiene una posibilidad menor de 1% de embarazos triples. Esta tendencia es sumamente importante porque ha permitido conocer características embriológicas como factores de buen pronóstico de implantación; además, junto con las técnicas de reproducción asistida de alta complejidad, surgieron nuevos procedimientos como la micromanipulación de gametos o embriones, así como nuevas opciones de embarazo en mujeres mayores,

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Reproducción asistida: a 30 años del primer nacimiento de fertilización in vitro

como las que ingresan a los protocolos de donación de óvulos. Junto con esto se observó un incremento en la incidencia de complicaciones perinatales, como la enfermedad hipertensiva inducida por el embarazo, rotura prematura de membranas, diabetes gestacional, retardo de crecimiento intrauterino y placentación anómala.25 Recientemente se demostró que todas estas complicaciones se encuentran ligadas de manera estrecha con el incremento en la incidencia de embarazo múltiple (más evidente en los de alto orden fetal) y no con la edad de la paciente o con la incompatibilidad genética, como se pensaba en las receptoras de óvulos donados. Por lo anterior, el objetivo mundial se encuentra encaminado a reducir estos embarazos y la forma más fácil de lograrlo es transferir un menor número de embriones.

Con la reducción de la cantidad de embriones a transferir, disminuyó la tasa de embarazo clínico y de recién nacido vivo, por lo que surgió una nueva estrategia que fue mejorar la selección de embriones a transferir. Para ello, se comenzó a transferir en el día 5 de poscaptura, en etapa de blastocisto, en lugar de hacerlo en el día 2 o 3.

Esto es una prueba de sobrevivencia preembrionaria, en la cual, obviamente, un embrión que llega a la etapa de blastocisto en un medio artificial es un embrión de buena calidad y, por tanto, mejora la posibilidad de implantación y de un embarazo a término. Desafortunadamente, es más difícil mantener un embrión fuera de su hábitat natural, por lo que las pacientes en estos protocolos tienen un alto riesgo de quedar sin embriones a transferir.

Debido a esto, si no se considera la tasa de embarazo por transferencia sino la tasa de embarazo por ciclo, los resultados no son nada alentadores. Por este motivo aún son pocas las clínicas que realizan transferencia en etapa de blastocisto, pero sin duda es otra tendencia primordial en relación con la transferencia embrionaria.

No obstante lo anterior, no todos los autores están de acuerdo con que la transferencia en el día 5 sea superior a la del día 3, por lo que no hay consenso.

Soporte de la fase lútea

Esta etapa es la menos estudiada en los procedimientos de reproducción asistida de alta complejidad y un terreno donde hay más preguntas que respuestas.

Al inicio, el soporte de la fase lútea fue altamente criticado, primero se pensó que durante la captura de los

ovocitos, la punción de los folículos originaría un mal funcionamiento del cuerpo lúteo y éste era el motivo de iniciar un soporte. Sin embargo, hace 20 años estudios prospectivos metanalíticos descartaron esta hipótesis.26 No hay que olvidar que al inicio el procedimiento se realizaba con un ciclo natural, pero con el transcurrir de los años surgió la hiperestimulación ovárica controlada y para este fin era necesario evitar una luteinización prematura de los folículos, por lo que se agregaron agonistas y antagonistas de la GnRH para suspender la función de la hipófisis o inhibir la producción de la hormona luteinizante. También era necesario el desarrollo de múltiples folículos, por lo que se inició la administración de gonadotropinas exógenas, ocasionando una elevación de estradiol a concentraciones suprafisiológicas.

Además, algunos fármacos como los agonistas de la GnRH mantienen suprimida la hipófisis hasta dos o tres semanas después de la suspensión de los mismos, por lo cual se retomó el estudio del soporte de la fase lútea, ya que no existe una elevación de hormona luteinizante necesaria para mantener la producción de progesterona a través de los cuerpos lúteos. Estudios en donadoras de ovocitos, en quienes se evaluó la calidad endometrial, demostraron la importancia del soporte de la fase lútea en los nuevos protocolos de estimulación.27 Actualmente existen tres tipos de progestágenos administrados con este fin: progesterona, didrogesterona y crinona, aunque se cuestiona la efectividad de los mismos, la vía de administración y la bioequivalencia.

Al inicio se administró oralmente; sin embargo, el paso por el hígado disminuye su biodisponibilidad a tan sólo 10%, por lo que para las técnicas de alta complejidad se encuentra completamente descartada. La controversia está ente la vía intramuscular y la vaginal. Después de diversos estudios clínicos controlados, se demostró que no existe diferencia en la efectividad siempre y cuando se administre la dosis adecuada (intramuscular 50 mg cada 12 horas y para la vaginal 200 mg cada 8 h). En relación con las ventajas entre estas dos vías, la intramuscular cuenta con concentraciones séricas mayores, pero como desventaja es necesario que sea administrada de manera profunda. Desafortunadamente, y por lo general, la inyección la aplica la pareja de la paciente, quien no tiene experiencia en hacerlo, por lo que existe riesgo de infección; también puede desencadenarse una reacción

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

93

Kably Ambe A y Estévez González S

alérgica al medicamento. La vía vaginal tiene la ventaja de ser más cómoda, menos dolorosa y puede ser aplicada por la misma paciente; incluso algunos autores han demostrado una mayor concentración del fármaco en el endometrio a pesar de ser menor la concentración sérica en relación con la intramuscular, pero como desventaja causa una irritación importante al epitelio vaginal, lo que puede causar un ligero sangrado transvaginal.

Durante estos 30 años se ha demostrado la necesidad del soporte de la fase lútea. Actualmente se encuentran en estudio métodos de depósito para hacer más sencilla su aplicación: anillos vaginales, geles o soluciones acuosas para la aplicación de microesferas de liberación prolongada, lo que hace menos dolorosa su aplicación cada cinco a siete días en lugar de cada 12 a 24 horas.

Sin embargo, aún se encuentran en experimentación.

Otra controversia es la dosis administrada, se concluyó, después de una búsqueda extensiva en la bibliografía, que está en función de la vía de administración, las más aceptadas son de 50 mg cada 24 horas para la progesterona intramuscular y de 20 mg cada 8 h para la vía vaginal.28 Finalmente, la última controversia es la adición de otras sustancias diferentes a la progesterona. En primer lugar tenemos a la gonadotropina coriónica humana urinaria, altamente efectiva; sin embargo, ya no se administra debido al riesgo elevado de desencadenar un síndrome de hiperestimulación ovárica porque está demostrado que inicia la producción del factor de crecimiento vascular, lo que provoca porosidad vascular y, por tanto, fuga al espacio intersticial, hecho que finalmente ocasiona desde ascitis hasta anasarca.

Otro gran debate durante estos años, a partir de la creación de las técnicas de reproducción asistida de alta complejidad, es el momento de inicio del soporte de la fase lútea: hay que recordar que el embrión se implanta en el útero después de cinco o seis días de haber completado la fertilización; por otro lado, la mayor parte de los centros dedicados a estas técnicas de reproducción asistida realizan la transferencia tres a cinco días después de la captura de ovocitos, ya sean propios o donados. Por lo anterior, es indispensable el inicio del soporte de la fase lútea el día de la captura en las pacientes receptoras de ovocitos que carecen de cuerpos lúteos porque será más tardado el cambio por parte del endometrio a una

94

fase secretora. Un estudio realizado en Holanda comprobó que el inicio del soporte de la fase lútea no tiene importancia, siempre y cuando se lleve a cabo antes del día de la transferencia. Este estudio comparó tres grupos según el tiempo de inicio, uno el día de la aplicación de la hCG, otro el día de la captura y un tercer grupo que inició el día de la transferencia embrionaria.29 REFERENCIAS 1. Kably A, Estévez S, Carballo E, Monterrosas L. Análisis comparativo de la tasa de embarazo-ovocitos capturados en un programa de fertilización in vitro. Ginecol Obstet Mex 2008;76:256-60.

2. Holzer H, Casper R, Tulandi T. A new era in ovulation induction. Fertil Steril 2006;85(2):277-84.

3. Bowen SN, Norian J, Skorupski JC, Akoma UN, et al. Single ovarian measurements (length and width) are independent predictors of ovarian reserve. Fertil Steril 2005;84:S114.

4. Barreto MA, Garrido N, Alvarez C, Bellver J, et al. Antral follicle count (AFC) can be used in the prediction of ovarian response but cannot predict the oocyte/embryo quality or the in vitro fertilization outcome in an egg donation program.

Fertil Steril 2009;91:148-56.

5. Said TH, Sibai El, Rocca M, Kholif A, et al. Ovarian reserve after surgical treatment of unilateral benign ovarian cyst.

Fertil Steril 2009;91:S20.

6. Said TH, Damarawy H, Warda A. Ovarian reserve markers update. Fertil Steril 2008;89:S27.

7. Broer S, Wilem B, Hendiks D, Broekmans JM. The role of antimullerian hormone in prediction of outcome after IVF: comparison with the antral follicle count. Fertil Steril 2009;91:705-14.

8. Chen X, Qiao J, Li H, Wang L, et al. Clinical features and ovulation induction in women with idiopathic hypogonadotropic hypogonadism or Kallmann syndrome. Fertil Steril 2007;88:S177.

9. Marshall DC, Raike EA, Desilva M, Nardi RV. The bioactivities of FSH and LH are unaltered by mixing highly purified human-derived FSH (Bravelle) and HMG (HP-Repronex) together in the same diluyent and in the same syringe. Fertil Steril 2002;77:S19.

10. Chen XN, Lu GX, Yan JM, Chen ZJ, Chen XG. An open prospective, randomized, multicenter study to compare recombinant human follicle stimulating hormone (rec-FSH; follitropin b; Puregon® solution) with highly purified urinary FSH (uFSH, urofollitropin (highly purified), Metrodin® HP) in Chinese women undergoing in vitro fertilization (IVF). Fertil Steril 2004;82:S228.

11. Dahan MH, Agdi M, Shehata F, Dean N, Tan S. A comparison of in-vitro fertilization cycles using recombinant and menopausal luteinizing hormone (LH). Fertil Steril 2008;90:S407.

12. Koper N, Boostanfar R, Devroey P, Fauser B, et al. Corifollitropin alfa demonstrates similar pregnancy rates as

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Reproducción asistida: a 30 años del primer nacimiento de fertilización in vitro

13.

14.

15.

16.

17.

18.

19.

20.

compared to daily recombinant FSH treatment in a controlled ovarian stimulation regimen for IVF/ICSI. Fertil Steril 2008;90:S75.

Cai J, Lou H, Dong M, Lu X, et al. Poor ovarian response to gonadotropin stimulation is associated with low expression of follicle-stimulating hormone receptor in granulose cells.

2007;87:1350-6.

Waffa Y, Roshdy A, Gindy E, Hamshary E, et al. The role of the follicle stimulating hormone receptors genotype in the response to FSH in women undergoing controlled ovarian stimulation. Fertil Steril 2008;90:S203.

Cheng Chian R, Buckett W, Abdul A, Son W, et al. Natural cycle in vitro fertilization combined with in vitro maturation of immature oocytes is a potential approach in infertility treatment. Fertil Steril 2004;82:1675-8.

Jurema M, Nogueira D. In vitro maturation of human oocytes for assisted reproduction. Fertil Steril 2006;86:127791.

Chui DK, Pugh ND, Walker SM, Gregory L, Shaw RW. Follicular vascularity-the predictive value of transvaginal power Doppler ultrasonography in an in vitro programme. Hum Reprod 1997;12:191-6.

Kan A, Ng EH, Yeung WS, Ho PC. Perifollicular vascularity in poor ovarian responders during IVF. Hum Reprod 2006;21:1539-44.

Check JH, Bollendorf A, Wilson C, Summers-Chase D, et al.

A retrospective comparison of pregnancy outcome following conventional oocyte insemination vs intracytoplasmic sperm injection for isolated abnormalities in sperm morphology using strict criteria. J Androl 2007;4.

Kably A, Carballo E, Estévez S. Impacto de las anormalidades de la cabeza del espermatozoide como factor pronóstico en la infertilidad de causa no determinada. Ginecol Obstet

Mex 2008;76:151-5.

21. Thum M, Abdalla HI, Taylor D. Relationship between women’s age and basal follicle-stimulating hormone levels with aneuploidy risk in in vitro fertilization treatment. Fertil Steril 2008;90:315-21.

22. Catherine M, DeUgarte, Man Li, Mark Surrey, et al. Accuracy of fish analysis in predicting chromosomal status in patients undergoing preimplantation genetic diagnosis. Fertil Steril 2008;90:1049-54.

23. Serour G, Aboulghar M, Mansour R, et al. Complications of medically assisted conception in 3,500 cycles. Fertil Steril 1998;70:638-42.

24. Shevell T, Malone FD, Vidaver J, Porter TF, et al. Assisted reproductive technology and pregnancy outcome. Obstet Gynecol 2005;106:1039-45.

25. Krieg SA, Henne MB, Westphal LM. Obstetric outcomes in donor oocyte pregnancies compared with advanced maternal age in in vitro fertilization pregnancies. Fertil Steril 2008;90:65-70.

26. Daya S. Efficacy of progesterone support in the luteal phase following in vitro fertilization and embryo transfer: metaanalysis of clinical trials. Hum Reprod 1988;3:731-4.

27. Kolibianis EM, Bourgain C, Platteau P, Albano C, et al. Abnormal endometrial development occurs during the luteal phase of nonsupplemental donor cycles treated with recombinant follicle-stimulating hormone and gonadotropin-releasing hormone antagonist. Fertil Steril 2003;80:464-6.

28. Hubayter Z, Muasher S. Luteal supplementation in in vitro fertilization: more questions than answers. Fertil Steril 2008;89:749-56.

29. Mochtar M, Van Wely M, van der Veen F. Timing luteal phase support in GnRH agonist down-regulated IVF/embryo transfer cycles. Hum Reprod 2006;21:905-8.

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

95

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción 2009;1(3):96-101

Artículo original Vitrificación en cryotop, técnica de alto rendimiento para la criopreservación de ovocitos humanos Luis Arturo Ruvalcaba Castellón,* Martha Isolina García Amador,*José Medina Flores,* Edgar Quiróz Torres,* Rocío Martínez Armas* RESUMEN Introducción: la vitrificación de ovocitos asociada con la utilización de cryotop es uno de los mejores avances en la criopreservación de los últimos años.

Objetivo: describir la evolución de 1,191 ovocitos humanos propios y donados luego de vitrificación en cryotop, en un centro de reproducción asistida.

Material y método: se vitrificaron ovocitos maduros (MII) de 69 pacientes en ciclo de fertilización in vitro y de donantes en 87 ciclos de donación, de julio de 2004 a mayo de 2008 en el Instituto Mexicano de Infertilidad de Guadalajara. Los óvulos (MII) aspirados, previa separación de la acumulación, se sumergieron en la solución de equilibrio (etilenglicol al 7.5% y dimetilsulfóxido al 7.5%) durante 10 minutos y luego se trasladaron a la solución de vitrificación compuesta por etilenglicol 15%, dimetilsulfóxido 15% y sucrosa 0.5 M. Posteriormente, se depositaron sobre la superficie del cryotop cerca de la punta, y éste se sumergió directamente en nitrógeno líquido para colocar su cubierta protectora. Los ovocitos se descongelaron con solución descongelante (TS) y de lavado (WS1-2).

Los supervivientes se microinyectaron por medio de microinyección intracitoplásmica de espermatozoides (ICSI). Se transfirieron embriones el día 2 de desarrollo.

Resultados: de los 1,191 ovocitos descongelados, 453 (38%) eran propios y 738 (62%) de donantes, con una supervivencia de 86.9 y 93.9%, respectivamente. Luego de la microinyección intracitoplásmica de espermatozoides fertilizaron 90% y en el día 2 dividió en 4 células 93.7%. Se lograron embarazos en 18/69 (27%) pacientes y 50/87 (58%) receptoras. Han nacido 56 bebés saludables.

Conclusión: la vitrificación es una técnica de alto rendimiento para la criopreservación de ovocitos humanos porque proporciona altos índices de supervivencia, fertilización, división embrionaria y embarazo.

Palabras clave: ovocitos, criopreservación, vitrificación, congelación, cryotop.

ABSTRACT Background: The vitrification of oocytes associated to the use of cryotop is one of the best advances in cryopreservation in recent years.

Objective: To describe the evolution of 1,191 own and donated human oocytes after thawing by cryotop method in an assisted reproduction center.

Material and method: There were vitrified mature oocytes of 69 patients ongoing in vitro fertilization cycles and 87 donation cycles, since July 2004 to May 2008 at Instituto Mexicano de Infertilidad, IMI-Guadalajara. The aspired oocytes were separated from the cumulus and placed in equilibrating solution (ES) (ethylene glycol 7.5% and dimethyl sulfoxide 7.5%) during 10 minutes; then they were changed to vitrification solution (VS) (ethylene glycol 15%, dimethyl sulfoxide 15%, and sucrose 0.5 M). Afterwards, the oocytes were put on the surface of the cryotop, near the tip, and then submerged directly into liquid nitrogen, and the cover was fixed. They were thawed with thawing solution (TS) and washed in two steps with washing solution (WS). The surviving oocytes were microinjected (ICSI). The embryos were transferred on day 2 under ultrasound guide.

Results: There were thawed 1,191 oocytes, 453 (38%) own and 738 (62%) donated, with a survival rate of 86.9 and 93.9% respectively. After microinjection (ICSI) 90% fertilized and 93.7% divided into 4 cells on day 2. There have succeeded pregnancy in 18/69 (27%) of patients and 50/87 (58%) of recipients. There have been born 56 healthy babies.

Conclusion: Vitrification is a high performance technique for the cryopreservation of human oocytes, which provides high survival, fertilization, embryo division and pregnancy rates.

Key words: vitrification, oocyte, cryopreservation, freezing, cryotop.

*

Instituto Mexicano de Infertilidad (IMI), Centro Médico Puerta de Hierro, Guadalajara, Jalisco, México.

Correspondencia: Dr. Luis A Ruvalcaba C. Correo electrónico: drlarc@hotmail.com Recibido: septiembre, 2008. Aceptado: diciembre, 2008.

96

Este artículo debe citarse como: Ruvalcaba CLA, García AMI, Medina FJ, Quiróz TE, Martínez AR. Vitrificación en cryotop, técnica de alto rendimiento para la criopreservación de ovocitos humanos. Rev Mex Reprod 2009;1(3):96-101.

La versión completa de este artículo también está disponible en: www.revistasmedicasmexicanas.com.mx

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Vitrificación en cryotop, técnica de alto rendimiento para la criopreservación de ovocitos humanos

E

n 19861 se reportó el primer embarazo a partir de un ovocito criopreservado por medio de congelación lenta y dimetilsulfóxido como crioprotector. Sin embargo, con el tiempo la técnica de congelación lenta convencional resultó en bajas tasas de supervivencia ovocitaria y embarazo,2-5 esto impulsó múltiples ensayos, modificando el tipo de crioprotector utilizado, el volumen o sus concentraciones, 6-10 con el objetivo de alcanzar resultados verdaderamente alentadores.

La idea de vitrificar, o alcanzar un estado similar al vidrio, fue descrita por primera vez en 1860 y retomada por Luyet en 1937. Cincuenta años más tarde (1985), Rall y Fahy11 la describieron como una alternativa potencial a la congelación lenta y consiste en solidificar una solución por enfriamiento rápido, lo que forma un estado vidrioso por elevación extrema de su viscosidad.

Trounson12 fue el primero en sumergir un ovocito directamente en nitrógeno líquido, reportó supervivencia y fertilización aceptables, pero bajas tasas de clivaje.

Los procedimientos actuales de vitrificación exponen la célula a un volumen reducido de crioprotectores a elevadas concentraciones por periodos muy breves, seguidos de congelación rápida en nitrógeno líquido. La alta osmolaridad de la solución de vitrificación rápidamente deshidrata la célula. Sumergirla bruscamente en nitrógeno líquido la solidifica, de manera que el agua intracelular no tiene tiempo para formar cristales ni de provocar daño a los organelos intracelulares,13 y así se incrementa su potencial de supervivencia.

Varios autores han mencionado otros daños atribuibles a la célula derivados de las bajas temperaturas, uno de los más importantes son las alteraciones en la segregación de los cromosomas durante la meiosis II.14-16 Al respecto, la evidencia es aún insuficiente y un tanto controvertida porque otros sugieren que el huso meiótico puede sobrevivir a procesos de congelación-descongelación sin consecuencias, o al menos sin incremento en el número de aneuploidías en los embriones resultantes.17-20 Un programa efectivo de criopreservación de ovocitos resulta de gran ayuda a mujeres que, por razones médicas o personales, necesitan diferir la posibilidad de embarazo por amenaza de pérdida de la función ovárica, por padecer alguna enfermedad oncológica que requiera quimioterapia o radioterapia o por restricciones ético-

religiosas que limiten la criopreservación de embriones.

Entre sus beneficios más laxos podemos mencionar: permite preservar los ovocitos excedentes de ciclos de hiperestimulación en técnicas de reproducción asistida y facilita a los centros de reproducción la posibilidad de un banco de óvulos eficiente.

OBJETIVO A pesar de los beneficios reconocidos para la técnica de vitrificación, la evidencia reportada aún resulta insuficiente.21 Este estudio tiene por objetivo dar a conocer la evolución de más de 1,000 ovocitos humanos propios y donados luego de su vitrificación en cryotop en un centro de reproducción asistida.

MATERIAL Y MÉTODO Estudio descriptivo, observacional, realizado en el Instituto Mexicano de Infertilidad, de julio de 2004 a mayo de 2008. Se vitrificaron los ovocitos propios excedentes de 69 pacientes en 149 ciclos de fertilización in vitro y 87 ciclos de donantes.

Hiperestimulación ovárica

Se estimuló el ovario con recombinantes o menotropinas el día 2 o 3 del ciclo menstrual. Se aplicó antagonista del GnRH cuando al menos dos folículos alcanzaron 14 mm de diámetro. Se administraron 10,000 UI de hCG cuando dos o más folículos alcanzaron 18 mm de diámetro. Los ovocitos fueron aspirados 36 horas después y colocados en medio de cultivo Upgraded B2 INRA (CCD) previamente gasificado, durante 18 horas en promedio a 37 °C y 5% de CO2 donde permanecieron, en promedio, dos horas. En seguida se separaron de la acumulación. Se identificaron los ovocitos en metafase II por la extrusión del primer cuerpo polar y se vitrificaron.

Técnica de vitrificación

Una vez separados de la acumulación los ovocitos metafase II fueron: 1. Depositados en la primera gota de un plato de cultivo que contenía tres gotas de solución de 30 µL. La primera de solución de lavado y las otras de solución de equilibrio, se hicieron puentes entre

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

97

Ruvalcaba Castellón LA y col.

ellas con la pipeta Pasteur en dos ocasiones, cada tres minutos.

2. Se trasladaron a la solución de equilibrio donde permanecieron 10 minutos.

3. Después se depositaron en la solución de vitrificación durante un minuto.

4. En ésta se aspiraron, se devolvieron con pipeta unas tres veces y se depositaron sobre la superficie del cryotop (Kitazato Supply Co., Fujinomiya, Japón).

El cryotop consiste en una lámina muy delgada de polipropileno de 0.4 mm de ancho x 20 mm de largo x 0.1 mm de espesor, con una cubierta protectora, también plástica (3 cm de longitud), figura 1.

Figura 3. Colocación de la cubierta protectora.

Descongelación

Figura 1. Cryotop.

5. El cryotop se sumergió rápida y directamente en un recipiente con nitrógeno líquido para la colocación de su cubierta protectora (figuras 2 y 3).

Estos dos últimos pasos son decisivos, ya que deben efectuarse en un minuto, quien los realiza debe dominar perfectamente el volumen ideal de solución y tener la habilidad de colocar los ovocitos sobre la superficie del cryotop.

Figura 2. El cryotop se sumerge directamente en el recipiente con N2 líquido.

98

1. Los ovocitos se depositaron en solución descongelante durante un minuto.

2. Luego se sumergieron en una solución diluyente durante tres minutos.

3. Se trasladaron a la solución de lavado dos veces, cinco minutos cada vez.

4. Los ovocitos supervivientes se dejaron en el medio de cultivo de 2 a 4 horas y posteriormente fueron microinyectados mediante la técnica convencional de microinyección intracitoplásmica de espermatozoides (ICSI).

El equipo de soluciones utilizadas en la técnica es de Kitazato Supply Co., Fujinomiya, Japón.

Transferencia embrionaria

Los embriones se transfirieron a las pacientes y receptoras el día 2 de desarrollo, bajo guía ecográfica con ultrasonido marca Aloka SSD500. En el ciclo de preparación endometrial se utilizó agonista del GnRH para la supresión hipofisiaria en las mujeres con función ovárica y estradiol en dosis progresivas: se inició con 2 mg los primeros ocho días del ciclo de preparación, 2 mg cada 12 horas los días 9, 10 y 11 y 2 mg cada ocho horas a partir del día 12. Para el soporte lúteo se administró progesterona en perlas de 200 mg el día de la descongelación de los ovocitos en horas de la tarde y se administró cada 12 horas hasta el día de la transferencia de los embriones. El día de la transferencia embrionaria se incrementó la dosis a 200 mg por vía oral cada ocho

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Vitrificación en cryotop, técnica de alto rendimiento para la criopreservación de ovocitos humanos

horas, y se incluyó progesterona en ampolletas de 50 mg, una dosis diaria por vía intramuscular. En promedio, el estrógeno y la progesterona se mantuvieron hasta la semana 8 de gestación.

Análisis: Utilizamos estadística descriptiva, cuadros de frecuencia y porcentaje, medidas de tendencia central y dispersión.

RESULTADOS Se descongelaron 1,191 ovocitos obtenidos de 69 pacientes en 149 ciclos de fertilización in vitro (ovocitos propios) y 87 ciclos de donación. Se descongelaron 453 ovocitos propios y 738 donados con una supervivencia de 87 y 94%, respectivamente. Fertilizaron después de la microinyección intracitoplásmica de espermatozoides 341/390 (87.4%) propios y 638/689 (92.6%) donados.

Dividieron en cuatro células el día 2 de desarrollo 921 embriones (93.7%), cuadro 1.

Cuadro 1. Evolución de los ovocitos vitrificados según su origen Ovocitos

Propios n (%)

Donados n (%)

Global n (%)

Descongelados

453 (38)

738 (62.0)

1,191 (100)

Supervivientes

390 (86.9)

689 (93.9)

1,079 (90.4)

Fertilizados

341 (87.4)

638 (92.6)

979 (90.0)

Divididos

316 (92.6)

605 (94.8)

921 (93.7)

Instituto Mexicano de Infertilidad, 2004-2008.

La edad promedio fue de 34 ± 3.8 años en las pacientes y de 40 ± 5.3 años en las receptoras. Se transfirieron 316 embriones a 69 pacientes en 87 ciclos y 605 a 87 receptoras en 149 ciclos; se obtuvieron 18/69 (26.1%) y 50/87 (57.5%) embarazos, respectivamente (cuadro 2).

Han nacido 56 bebés, producto de 36 gestaciones únicas y 10 dobles. Todos saludables a excepción de una niña, hija de madre diabética de 42 años de edad que sufrió una comunicación interventricular. De los nacidos vivos, 15/56 (27%) pertenecen al grupo de los ovocitos propios y 41/56 (73%) al de los ovocitos donados.

Trece embarazos no llegaron a término, entre ellos un embarazo ectópico cornual. No hubo ninguna pérdida

Cuadro 2. Generalidades y proporción de embarazo en pacientes y receptoras, ovocitos propios y donados

Pacientes Ciclos Edad promedio Embriones transferidos Embarazos/ciclos Embarazos/paciente Nacidos vivos Abortos

Propios n

Donados n

69 87 34 ± 3.8 316 18/87 (20.6%) 18/69 (26.1%) 15 -

87 149 40 ± 5.3 605 50/149 (33.5%) 50/87 (57.5%) 41 13 (19%)*

Instituto Mexicano de Infertilidad, 2004-2008. * Un embarazo ectópico cornual.

en el grupo de las pacientes embarazadas a partir de ovocitos propios.

DISCUSIÓN La vitrificación conjuga altas concentraciones de crioprotectores en mínimo volumen y elevadas velocidades de congelación (15,000-30,000 °C/min),22 lo que impide la formación de cristales de hielo durante los procesos de congelación-descongelación,23 permite una mejor conservación de la ultraestructura y menor daño en la fisiología ovocitaria.24 Boriniy col. han señalado que protocolos subóptimos para la criopreservación de ovocitos pueden causar daño subletal asociado con habilidad limitada para la fertilización;25 nosotros observamos que, en forma proporcional, la mejor supervivencia corresponde con mejores tasas de fertilización y clivaje.

En este estudio reportamos tasas de supervivencia, fertilización y clivaje comparables con las reportadas por otros autores para la vitrificación de ovocitos humanos, independientemente del dispositivo utilizado para el depósito final de los ovocitos: cryotop, cryotip, cryoloop, cryoleaf, etc.26-30 La proporción de embarazo es similar a la reportada para ciclos en fresco, de forma indistinta para cuando transferimos embriones obtenidos a partir de ovocitos propios o donados vitrificados. Hasta ahora, los nacidos reportados para la vitrificación de ovocitos parecieran tener una incidencia de anomalías congénitas (2.5%)31 no mayor a la reportada para los nacidos de embarazos espontáneos en mujeres fértiles, o en mujeres infértiles

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

99

Ruvalcaba Castellón LA y col.

en ciclos frescos de fertilización in vitro.32 En nuestra serie de nacidos vivos (56), reportamos una comunicación interventricular en una bebé hija de madre diabética, dato que corresponde a 1.78% de los casos y que muy probablemente no tenga relación con la técnica.

No hemos realizado diagnóstico genético preimplantatorio en nuestros embriones; sin embargo, consideramos que la proporción de nacidos saludables reportada sustenta la inocuidad de la técnica.

12.

13.

14.

CONCLUSIÓN La vitrificación de ovocitos humanos en cryotop es una técnica de congelación que proporciona elevada supervivencia ovocitaria, fertilización, clivaje y embarazo.

Es una técnica sencilla y altamente reproducible, que al momento ha reportado una proporción de nacidos vivos saludables capaz de sustentar sus ventajas e inocuidad.

REFERENCIAS

15.

16.

17.

18.

1. Chen C. Pregnancy after human oocytes cryopreservation.

Lancet 1986;11:884-6.

2. Oktay K, Cil AP, Bang H. Efficiency of oocyte cryopreservation: a meta-analysis. Fertil Steril 2006;86:78-80.

3. Al-Hasani S, Diedrich K, van der ven H, Reinecke A, et al. Cryopreservation of human oocyte. Hum Reprod 1987;2:695-700.

4. Tucker MJ, Morton PC, Wright G, Sweitzer CL, Massey JB. Clinical application of human eggs cryopreservation. Hum Reprod 1998;13:3156-9.

5. Fabbri R, Porcu E, Marsella T, Rocchetta G, et al. Human oocyte cryopreservation: new perspective regarding oocyte survival. Hum Reprod 2001;16:411-6.

6. Stachecki JJ, Cohen J, Willadsen SM. Cryopreservation of unfertilized mouse oocytes: the effect of replacing sodium with choline in the freezing medium. Cryobiology 1998;37:346-54.

7. Quintans CJ, Donaldson MJ, Bertolino MV, Pasqualini RS. Birth of two babies using oocytes that were cryopreserved in a choline-based freezing medium. Hum Reprod 2002;17:3149-52.

8. Porcu E, Fabbri R, Damiano G, Giunchi S, et al. Clinical experience and applications of oocyte cryopreservation.

Mol Cell Endocrinol 2000;169:33-37.

9. Borini A, Sciajno R, Bianchi V. Sereni E, et al. Clinical outcome of oocyte cryopreservation after slow cooling with a protocol utilizing a high sucrose concentration. Hum Reprod 2006;21(2):512-7.

10. Shee-Huan Chen, Yih-Ron Lien, Hsin-Fu Chen, Li-Jung Yang, et al. Observational clinical follow-up of oocyte

100

11.

19.

20.

21.

22.

23.

24.

25.

26.

cryopreservation using a slow-freezing method with 1,2 propanediol pus sucrose followed by ICSI. Hum Reprod 2005; 20(7):1975-80.

Rall WF, Fahy GM. Ice free cryopreservation of mouse embryos at -196 degrees C by vitrification. Nature 1985;313:573-5.

Trounson A. Freezing human eggs and embryos. Fertil Steril 1986;46:1-12.

Bianchi V, Coticchio G, Fava L, Flamigni C, Borini A. Meiotic spindle imaging in human oocytes frozen with a slow freezing procedure involving high sucrose concentration. Hum Reprod 2005;20(4):1078-83.

Pickering SJ, Johnson MH. The influence of cooling on the organization of the meiotic spindle of the mouse oocyte.

Hum Reprod 2007;2:207-16.

Pickering SJ, Braude PR, Johnson MH, Cant A, Currie J. Transient cooling to room temperature can cause irreversible disruption of the meiotic spindle in the human oocyte. Fertil Steril 1990;54:102-8.

Zenses MT, Bielecki R, Casper RF, Leibo SP. Effect of chilling to 0 degrees C on the morphology of meiotic spindle in human metaphase II oocytes. Fertil Steril 2001;75:76977.

Boiso I, Marti M, Santalo J, Ponsa M, et al. A confocal microscopy analysis of the spindle and chromosome configuration of human oocytes cryopreserved at the germinal vesicle and metaphase II stage. Hum Reprod 2002;17:1885-91.

Rienzi L, Martínez F, Iacobelli M, Minasi MG, et al. Polscope analysis of meiotic spindle changes in living metaphase II human oocytes during the freezing and thawing procedures.

Hum Reprod 2004;19:655-9.

Cobo A, Rubio C, Gerli S, et al. Use of fluorescence in situ hibridyzation to assess the chromosomal status of embryos obtained from cryopreserved oocytes. Fertil Steril 2001;75:354-60.

Cobo A, Pérez S, de los Santos MJ, Zulategui J, et al.

Effect of different cryopreservation protocols on the metaphase II spindle in human oocytes. Reprod BioMed Online 2008;1(3):350-9.

Hong SW, Chung HM, Lim JM, Ko JJ, et al. Improved human oocyte development after vitrification: a comparison of thawing methods. Fertil Steril 1999;72:142-6.

Lieberman J, Tucker MJ. Effect of carrier system on the yield of human oocytes and embryos as assessed by survival and developmental potential after vitrification. Reproduction 2002;124:483-9.

Lieberman J, Tucker MJ, Sills ES. Cryoloop vitrification in assisted reproduction: analysis of survival rates in > 1000 human oocytes after ultra-rapid cooling with polymer augmented cryoprotectants. Clin Exp Obstet Gynecol 2003;30:125-9.

Gardner DK, Sheehan CB, Rienzi L, et al. Analysis of oocyte physiology to improve cryopreservation procedures.

Theriogenology 2007;67:64-72.

Borini A, Antonietta Bonu M, Coticchio G, Bianchi V, et al.

Pregnancies and births after oocyte cryopreservation. Fertil Steril 2004;82:601-5.

Katayama, Stehlik J, Kuwayama M, Kato O, Stehlik E. High

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Vitrificación en cryotop, técnica de alto rendimiento para la criopreservación de ovocitos humanos

survival rate of vitrified human oocytes results in clinical pregnancy. Fertil Steril 2003;80(1):223-4.

27. Mukaida T, Nakamura S, Tomiyama T, Wada S, et al. Vitrification of human blastocysts using cryoloops: clinical outcome of 223 cycles. Hum Reprod 2003;18(2):384-91.

28. Kuwayama M, Vajta G, Kato O, et al. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes. Reprod BioMed Online 2005;11:300-8.

29. Lucena E, Bernal DP, Lucena C, Rojas A, et al. Successful ongoing pregnancies after vitrification of oocytes. Fertil Steril

2006;85:108-11.

30. Kim TJ, Hong S, Cha KY. Vitrified oocytes produce excellent pregnancy rate. Fertil Steril 2006;86(2):126-7.

31. Chian RC, Huang JY, Tan SL, Lucena E, et al. Obstetric and perinatal outcome in 200 infants conceived from vitrified oocytes. Reprod BioMed Online 2008;16(5):608-10.

32. Tan SL, Doyle P, Campbell S, Beral V, et al. Obstetric outcome of in vitro fertilization pregnancies compared with normally conceived pregnancies. Am J Obstet Gynecol 1992;167:778-84.

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

101

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción 2009;1(3):102-8

Artículo original Sensibilidad de los canales de calcio dependientes de voltaje al pH intracelular en el espermatozoide humano capacitado. Efecto modulador del AMPc Paloma del Carmen Neri Vidaurri,* Víctor Torres Flores,** †Marco Tulio González Martínez**

RESUMEN Antecedentes: durante su camino hacia el ovocito, el espermatozoide aumenta su motilidad, hiperactivándola e iniciando la capacitación espermática que implica la vía AC/AMPc/PKA y, por medio de la zona pelúcida 3 del óvulo, sobreviene la reacción acrosómica.

Estos fenómenos requieren mecanismos dependientes de transporte de calcio. A través de técnicas ópticas se han detectado canales de calcio dependientes de voltaje que se estimulan durante la capacitación espermática y por la acción de la progesterona, además de que su actividad se incrementa con la alcalinización del pH intracelular.

Objetivos: examinar el efecto de incrementar el AMPc intracelular con el inhibidor de fosfodiesterasas papaverina, y cuantificar el aumento de la concentración del calcio intracelular inducido con progesterona.

Material y métodos: se realizó un estudio prospectivo con muestras de semen de sujetos normoespérmicos. Se investigó el efecto del AMPc sobre los canales de calcio dependientes de voltaje y su sensibilidad al pH intracelular en el espermatozoide humano bajo dos enfoques: 1) el uso de espermatozoides no capacitados a los que se les elevó el AMPc in vitro y 2) espermatozoides capacitados que de por sí tienen el AMPc elevado. Las muestras capacitadas y no capacitadas se trataron con fura-ff (detector de calcio) o con BCECF (detector de pH intracelular). Para elevar el AMPc en espermatozoides no capacitados se usó papaverina, 0.5 mM cinco minutos.

Resultados:la cantidad de AMPc se duplicó durante la capacitación y la exposición con papaverina cuadriplicó los valores (de 1.1 ± 0.4 a 5.2 ± 0.7 pmol/107) con respecto de los espermatozoides no capacitados y por arriba de la pentoxifilina. En el espermatozoide capacitado la sensibilidad aumentó alrededor de siete veces.

Conclusiones: los canales de calcio dependientes de voltaje en el espermatozoide humano son sensibles a factores asociados con la capacitación, como el pH intracelular y el AMPc, favoreciendo la permeación a calcio. Este mecanismo explica por qué sólo los espermatozoides capacitados contactan la zona pelúcida del óvulo y muestran reacción acrosomal, evento en el que los canales de calcio dependientes de voltaje juegan un papel central como mecanismo de entrada de calcio.

Palabras clave: AMPc, canales de calcio dependientes de voltaje, papaverina, pentoxifilina.

ABSTRACT Background: During their journey through the uterine tract, mammalian sperm increases its motility, beginning sperm capacitation, that involves the activation of the AC/cAMP/PKA pathway, and the acrosome reaction induced by egg-pellucid zone. These phenomena require calcium transport mechanisms among them; voltage-dependent calcium channels (VDCC) have been involved as calcium entry mechanism. These channels are highly stimulated during the sperm capacitation progesterone and by intracellular pH alkalization.

Objective: To investigate the effect of increasing intracellular AMPc with phosphodiesterase inhibitor papaverin, and to quantify the increased intracellular calcium level induced by progesterone.

Material and methods: A prospective study was done with semen samples from normosperm subjects. The effect of cAMP on VDCC was investigated, as well as their sensitivity to intracellular pH in human spermatozoid under two approaches: 1) the induction of cAMP increase in non capacitated sperm and 2) the use of capacitated sperm which naturally produces increased levels of cAMP as compared with non capacitated cells. Samples were loaded with fura ff or with BCECF (a intracellular pH detector). To increase the intracellular AMPc content in non-capacitated sperm, papaverine was used, 0.5 mM incubated 5 minutes.

Results: cAMP content increased 2-fold during capacitation and papaverin exposure increased 4-fold (from 1.1 ± 0.4 to 5.2 ± 0.7 pmol/107) with regard to non-capacitated and was higher than pentoxifiline’s. In capacitated sperm sensitivity increased near 7-fold.

Conclusions: Human sperm voltage-dependent calcium channels are sensitive to regulators associated to sperm capacitation, that is, the intracellular pH alkalization and AMPc content, favoring the calcium influx. These phenomena may be physiologically relevant since only capacitated sperm is capable to undergo the acrosome reaction induced by pellucid zone 3, an event that requires the activation of voltage-dependent calcium channels as a major mechanism of calcium entry.

Key words: cAMP, voltage-dependent calcium channels, papaverine, pentoxifiline.

102

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Sensibilidad de los canales de calcio dependientes de voltaje al pH intracelular en el espermatozoide humano capacitado

E

n el espermatozoide humano, la modulación de la concentración del calcio intracelular es fundamental para entender los mecanismos relacionados con aspectos específicos de la fisiología del espermatozoide, como la capacitación espermática y la reacción acrosomal.1 La capacitación espermática es un proceso dependiente de calcio que, en condiciones normales, ocurre en el aparato genital femenino y está relacionado con una cascada de cambios bioquímicos.2 Estos cambios comprenden un incremento en la concentración de AMPc intracelular, el cual desencadena la activación de la enzima proteína-cinasa-A (PKA),3 y un incremento en la actividad de la proteína-tirosina-cinasa (PTK).4 Durante el proceso también hay una ligera pero consistente alcalinización del pH intracelular de aproximadamente 0.14 unidades5 (figura 1).

Una vez que está capacitado el espermatozoide es capaz de responder a los receptores de la zona pelúcida, incrementar la concentración de calcio intracelular

Figura 1. Principales eventos de transducción de señales durante la capacitación in vitro del espermatozoide de ratón (modificado de Baldi, 1996). *

Centro Especializado en Esterilidad y Reproducción Humana, Hospital Ángeles, México. ** Laboratorio de Biomembranas del Departamento de Far macología, Facultad de Medicina, Ciudad Universitaria,

México, DF. Correspondencia: Dra. Paloma del Carmen Neri Vidaurri. Centro Especializado en Esterilidad y Reproducción Humana. Hospital Ángeles, México. Agrarismo 208, 1er piso, Torre A, int. 102, cononia Escandón, CP 11800, México, DF. Correo electrónico:

y, por tanto, inducir la reacción acrosomal, un proceso que permite al espermatozoide cruzar la zona pelúcida y fusionarse con el oolema del ovocito.

Los mecanismos de entrada de calcio inducidos por la fusión del espermatozoide con los receptores de la zona pelúcida son muy estudiados en esperma de ratón, en donde se ha demostrado que se produce un flujo iónico que origina una despolarización y un pico de calcio en milisegundos en espermatozoides capacitados y, consecuentemente, la apertura de canales de calcio dependientes de voltaje tipo T.6,7 A través de estudios realizados en el espermatozoide humano, nuestro laboratorio ha detectado la apertura de canales de calcio dependientes de voltaje que podrían tener un papel muy similar al encontrado en el espermatozoide de ratón.8 Dichos canales se detectaron en espermatozoides no capacitados incubados con el marcador fluorescente fura-2, en los cuales se observó: incremento en el influjo de calcio intracelular inducido por una despolarización con potasio,7 una inactivación en 90 seg en medio libre de calcio y una hiperestimulación de su actividad al alcalinizar el pH intracelular y al llevar a cabo la capacitación espermática.7-9 De manera que los canales de calcio dependientes de voltaje se estimulan durante la capacitación espermática y al alcalinizar el pH intracelular.

De acuerdo con la sensibilidad que muestran los canales de calcio dependientes de voltaje al pH en el espermatozoide humano capacitado, éstos podrían contribuir en alrededor de 30% de la estimulación total observada en este proceso.10 Esto sugiere que, además de la alcalinización del pH intracelular, existen otros reguladores bioquímicos que se activan durante la capacitación espermática, los cuales modifican los canales al incrementar aún más la permeación al calcio. palnevi@ceerh.com Recibido: enero, 2009. Aceptado: febrero, 2009.

Este artículo debe citarse como: Neri VPC, Torres FV, González MMT. Sensibilidad de los canales de calcio dependientes del voltaje al pH intracelular en el espermatozoide humano capacitado. Efecto modulador del AMPc. Rev Mex Reprod 2009;1(3):102-8.

La versión completa de este artículo también está disponible en: www.revistasmedicasmexicanas.com.mx

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

103

Neri Vidaurri PC y col.

OBJETIVO Al considerar lo anterior, examinamos el efecto de incrementar el AMPc intracelular con el inhibidor de fosfodiesterasas papaverina durante 5 min en espermatozoides no capacitados a una concentración de 0.5 mM (concentración seleccionada con un bioensayo) y se cuantificó el aumento del calcio intracelular inducido con progesterona, una hormona que se encuentra de manera natural en el aparato femenino y que participa en la capacitación espermática y la reacción acrosomal.

del marcador mediante lavado y cada muestra se dividió en tres grupos experimentales con aproximadamente 100x106 espermatozoides/mL: a) espermatozoides incubados con 0.5 mM de papaverina, b) espermatozoides sin papaverina y c) espermatozoides capacitados sin papaverina. Todos incubados a 37 °C (figura 3). Para la alcalinización progresiva del medio de cultivo se utilizaron diferentes concentraciones de NH4Cl y al mismo tiempo se registró su efecto en los tres grupos experimentales de espermatozoides.

MATERIAL Y METODO

Carga (5 μM)

Se realizó un estudio prospectivo con muestras de semen de pacientes normoespérmicos (previa autorización del consentimiento informado), obtenidas en el laboratorio de andrología del Centro Especializado en Esterilidad y Reproducción Humana del Hospital Ángeles, México, DF. Se utilizó el marcador fluorescente fura ff-AM (Molecular Probes) que permite la detección de calcio intracelular y BCECF (Sigma Aldrich) para la medición del pH intracelular, y un medio para esperma humano con buffer de HEPES (H-HSM) diseñado por Suárez y col.7 El medio de capacitación fue el mismo, a excepción que el HEPES se sustituyó por 25 mM de NaHCO3 y 3 mg/mL de HSA (Sigma, fraction V) [figura 2].

Para medir el aumento del AMPc, los espermatozoides se obtuvieron previa centrifugación en gradientes de percoll y se incubaron 40 min con 5 µM de fura ff-AM. Al término de la incubación se retiró el exceso

Carga (5 μM) Fura ff-AM

40 min 37 ºC, en 1 mL HSM-H

Lavado por centrifugación

Capacitados

No capacitados

30 min 1μM BCECF-AM

Fluorometría 30K

30K 1.25 NH

30K 30K 5NH 10NH

Figura 2. Diseño experimental para la detección de calcio.

104

1000g 20ºC 20 min

Fura ff-AM

40 min 37 ºC, en 1 mL HSM-H

Papaverina 0.5 mM 5 min en HSM-H

5 min en HSM-H

Lavado por centrifugación

Capacitados

Fluorometría 4μM P4 Figura 3. Diseño experimental para la medición del AMPc.

Para corroborar el efecto de la papaverina sobre el aumento del AMPc, éste se midió con el equipo de inmunoensayo para AMPc EIA (Zymed Laboratories) [figura 4].

RESULTADOS La fluorescencia se detectó a 488 nm, los valores se convirtieron a valores de calcio intracelular con la ecuación de Grynkiewicz. Los resultados se reportaron como el promedio ± desviación estándar. Los grupos se compararon por ANOVA o t pareada. Los resultados p < 0.05 se consideraron estadísticamente significativos.

La figura 5 muestra el efecto del pH intracelular sobre la apertura de los canales de calcio dependientes de voltaje de espermatozoides capacitados y no capacitados, en la capacitación espermática produce una estimulación de la entrada de calcio dependiente del voltaje que dependió de la concentración de NH4Cl, se duplicó aproximadamente con 10 mM de NH4Cl. La capacitación de las mismas células produjo una estimulación notable de los canales de calcio dependientes de voltaje y una potenciación alrededor de

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Sensibilidad de los canales de calcio dependientes de voltaje al pH intracelular en el espermatozoide humano capacitado

Semen 50% 75%

HCI 0.05M 1000Xg 20 ºC 20 min

Hervir 3’ Hielo

Centrifugar

Sobrenadante 1:1 Buffer de acetatos

spz AMPc- -PNP FA

AMPc

Ac-AMPc Figura 4. Métodología del equipo de inmunoensayo para AMPc EIA (Zymed Laboratories).

Figura 5. Efecto del NH4Cl en el influjo de calcio: indujo una despolarización en espermatozoides no capacitados y en capacitados. En ambas condiciones fisiológicas la estimulación del influjo de calcio dependió de la cantidad de NH4Cl adicionada.

10 veces en su respuesta al NH4Cl. Por ejemplo, en el no capacitado, la despolarización con 10 mM NH4Cl produjo un Δ[Ca2+]i de 1.35 ± 1 µM, en tanto que en el espermatozoide capacitado el resultado fue de 8 ± 2 µM. La figura 6 muestra el registro temporal de pH intracelular en células no capacitadas y capacitadas y sus respuestas a las diferentes concentraciones de NH4Cl utilizadas. Como era de esperarse, el valor de pH intracelular en los espermatozoides capacitados fue más alcalino (6.80) respecto a los no capacitados (6.65). El NH4Cl indujo en ambos grupos elevaciones cuasi instantáneas del pH intracelular; pero en el caso de los espermatozoides capacitados, éstas fueron más alcalinas.

El NH4Cl produce una mayor alcalinización en los espermatozoides capacitados que en los no capacitados.

El pH intracelular de reposo en espermatozoides capacitados (6.80 ± 0.02) fue 0.15 unidades más alcalino que el de los espermatozoides no capacitados (6.65 ± 0.03).

En la figura 7 se observa que, aun cuando la alcalinización del pH intracelular (pHi) en células capacitadas fue mayor, el influjo de calcio a través de los canales de calcio dependientes de voltaje es mucho mayor en las células capacitadas, con una tasa de incremento de 49 μM/pHi, mientras que para los espermatozoides no capacitados fue de 6.7 μM/pHi; esto es, la sensibilidad de los canales de calcio dependientes de voltaje al pH intracelular se incrementó alrededor de siete veces en condiciones de capacitación. Este resultado sugiere que cuando el espermatozoide se capacita, el pH intracelular modula de manera cualitativamente diferente los canales de calcio dependientes de voltaje e indica la posibilidad de que exista un modulador central en la capacitación; en este caso el AMPc pudiera intervenir en dicha estimulación.

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

105

Neri Vidaurri PC y col.

Calcio intracelular (μM)

Figura 7. Influjo de calcio dependiente del voltaje en función del pH intracelular en espermatozoides humanos no capacitados y capacitados.

9 8 7 6 5 4 3 2 1 0

No capacitados

No capacitados + papaverina

Capacitados

Figura 6. Efecto del NH4Cl en el pH intracelular de espermatozoides no capacitados y capacitados. Se comparan los pH intracelulares alcanzados con las adiciones de NH4Cl-KCl en espermatozoides no capacitados y capacitados.

Figura 8. Efecto de la papaverina en el incremento del calcio intracelular inducido por progesterona. Los 5 min de incubación con papaverina aumentaron cinco veces el calcio en espermatozoides no capacitados (control), no capacitados + papaverina y capacitados.

Para corroborar la participación del AMPc sobre los canales de calcio dependientes de voltaje (CCDV), en la figura 8 se observa el efecto de la exposición a papaverina en el influjo de calcio a través de los CCDV en: a) espermatozoides no capacitados, b) espermatozoides no capacitados + papaverina y c) espermatozoides capacitados. Se observó que la papaverina produce una notable estimulación en la entrada de calcio inducida por despolarización (adición de NH4Cl).

La estimulación con papaverina aumentó significativamente el calcio intracelular en espermatozoides no

capacitados; sin embargo, el influjo de calcio observado en los espermatozoides con papaverina capacitados es aún mayor.

El efecto de la papaverina se comparó con el de la pentoxifilina, un inhibidor ampliamente usado en la clínica. Fue interesante que la preincubación con pentoxifilina no incrementó el calcio tanto como la papaverina (figura 9).

Debido a estos hallazgos se cuantificó el contenido de AMPc en: a) espermatozoides no capacitados, b) espermatozoides no capacitados + papaverina, c)

106

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Sensibilidad de los canales de calcio dependientes de voltaje al pH intracelular en el espermatozoide humano capacitado

Calcio intracelular (μM)

7 6 5 4 3 2 1 0

a

b

Control

c

d

Papaverina

e

f

g

h

i

Pentoxifilina

Figura 9. Efecto comparativo de la papaverina y la pentoxifilina en el aumento de calcio intracelular inducido por progesterona.

Espermatozoides no capacitados se incubaron con pentoxifilina o papaverina. a: control; b,f: 0.25 mM; c,g: 0.5 mM; d,h: 1.0 mM; e,i: 2.0 mM de papaverina y pentoxifilina.

AMPc pmol/107 células

espermatozoides no capacitados + pentoxifilina y d) espermatozoides capacitados.

Con base en los resultados anteriores, la cantidad de AMPc se duplicó durante la capacitación y la exposición con papaverina cuadriplicó los valores (de 1.1 ± 0.4 a 5.2 ± 0.7 pmol/107) con respecto de los espermatozoides no capacitados y por arriba de la pentoxifilina (figura 10).

5 4.5 4 3.5 3 2.5 2 1.5 1 0.5 0

Control

Papaverina Pentoxifilina Capacitados

Figura 10. Cuantificación del la concentración de AMPc en espermatozoides no capacitados (control), expuestos a papaverina, a pentoxifilina y capacitados.

CONCLUSIONES Aunque los canales de calcio dependientes de voltaje (CCDV) se han identificado sólo en espermatozoides de ratón, las evidencias sugieren la existencia de CCDV

tipo T en el espermatozoide humano.8 Estudios recientes mencionan que el espermatozoide de mamífero (ratón) tiene un canal llamado Catsper 1, una forma de canales de calcio dependientes de voltaje requerido para adquirir la motilidad9 y también se ha relacionado con astenozoospermia en el espermatozoide humano.10 Se ha sugerido que reguladores bioquímicos tales como AMPc, proteína-cinasa-A (PKA) o proteína-tirosina-cinasa (PTK), los cuales incrementan su actividad durante la capacitación espermática,3 podrían producir cambios en los canales de calcio dependientes de voltaje (CCDV) como resultado del incremento observado en la sensibilidad al pH intracelular. Dada la participación de los CCDV en la reacción acrosomal inducida, principalmente por la zona pelúcida,5 consideramos que el incremento de la sensibilidad al pH intracelular de los CCDV, reportado en este trabajo, puede ser el mecanismo por el cual la zona pelúcida induce la reacción acrosomal sólo en espermatozoides capacitados. Se observó que una ligera alcalinización del pH intracelular estimula de manera potencial la apertura de los CCDV en espermatozoides humanos capacitados alrededor de siete veces, es decir, la sensibilidad de los CCDV al pH intracelular depende de las condiciones fisiológicas de la célula.

En este trabajo también demostramos que una ligera exposición (5 min) de los espermatozoides humanos no capacitados con 0.5 mM de papaverina incrementó el contenido de AMPc, observado en el aumento de calcio intracelular, con concentraciones más altas que las obtenidas con pentoxifilina.

Consideramos realizar a futuro bioensayos con espermatozoides no capacitados incubados con papaverina para la inseminación de ovocitos de mamíferos inferiores, para que posteriormente se use también la papaverina en pacientes con astenozoospermia o biopsia testicular con fines de reproducción asistida, en donde generalmente se usa pentoxifilina con tiempos más largos de incubación; para así no sólo disminuir ese tiempo, sino también incrementar con mayor efectividad su movilidad aumentando con certeza las concentraciones de calcio intracelular, que en el espermatozoide humano es fundamental en los mecanismos implicados en la capacitación espermática, y sobre todo en la reacción acrosomal.

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

107

Neri Vidaurri PC y col.

REFERENCIAS 1. Darszon A, Nishigaki T, Wood C, Treviño CL, et al. Calcium channels and Ca2+ fluctuations in sperm physiology. Int Rev Cytol 2005;243:79-172.

2. Baldi E, Luconi M, Bonaccorsi L, Forti G. Signal transduction pathways in human spermatozoa. J Reprod Immunol 2002;53:121-31.

3. Luconi M, Porazzi I, Ferruzzi P, Marchiani S, et al. Tyrosine phosphorylation of the a kinase anchoring protein 3 (AKAP3) and soluble adenylate cyclase are involved in the increase of human sperm motility by bicarbonate. Biol Reprod 2005;72:22-32.

5. Cross N, Razy-Faulkner P. Control of human sperm intracellular pH by cholesterol and its relationship to the response of the acrosome to progesterone. Biol Reprod 1997;56:116974.

108

6. Arnoult C, Kazam IG, Visconti PE, Kopf GS, et al. Control of the low voltage-activated calcium channel of mouse sperm by egg ZP3 and by membrane hyperpolarization during capacitation. Proc Natl Acad Sci (USA) 1999;96:6757-62.

7. Suarez SS, Wolf DP, Meizel S. Induction of the acrosome reaction in human spermatozoa by a fraction of human follicular fluid. Gamete Res 1986;14:107-21.

8. Carlson AE, Westenbroek RE, Quill T, Ren D, et al. CatSper1 required for evoked Ca2+ entry and control of flagellar function in sperm. Proc Natl Acad Sci USA 2003;100:14864-8.

9. Schuhmann K, Voelker C, Höfer GF, Pflügelmeier H, et al. Essential role of the beta subunit in modulation of Cclass L-type Ca2+ channels by intracellular pH. FEBS Lett 1997;408:75-80.

10. Fraire-Zamora JJ, González-Martínez MT. Effect of intracellular pH on depolarization-evoked calcium influx in human sperm. Am J Physiol (Cell Physiol) 2004;287:1688-96.

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción 2009;1(3):109-12

Caso clínico Primer nacido vivo en México luego de transferencia de embrión único obtenido a partir de cigotos vitrificados. Comunicación del caso

Martha Isolina García Amador,* Alejandro Chávez Badiola,* José Medina Flores,* Edgar Quiróz Torres,* Rocío Martínez Armas,* Luis Arturo Ruvalcaba Castellón* RESUMEN Paciente de 29 años de edad, con esterilidad primaria de cinco años de evolución, con índice de masa corporal de 18.7 kg/m2, en primer ciclo de FIVTE. La estimulación ovárica se realizó con 2,450 UI de menotropinas. Se administró el antagonista del GnRh en el día 9 del ciclo. Se efectuó la inducción final de la maduración ovocitaria con 10,000 UI de hCG el día 12 del ciclo y la aspiración de los ovocitos 36 horas después. Se obtuvieron 26 ovocitos, 23 en metafase II. No se transfirieron en fresco por datos de hiperestimulación. Se vitrificaron 13 óvulos y se microinyectaron 10. De los ovocitos microinyectados fertilizaron 7, y se vitrificaron en cryotops distintos 3 cigotos y 3 embriones en cuatro células. Los tres cigotos se desvitrificaron dos meses después. Sobrevivió uno. Se realizó la transferencia del embrión a la cavidad uterina el día 2 de desarrollo (4 células, 5% de fragmentos, 2 de simetría), bajo guía ecográfica transvaginal. Dos semanas después se reportó una prueba de gonadotropina coriónica (hCG) en sangre positiva. Se confirmó el embarazo en la sexta semana de gestación por la presencia de latido cardiaco. En mayo de 2007, a las 37.5 semanas de gestación, nació por cesárea una bebé saludable de 3,300 gramos de peso, Apgar 8/9 a uno y cinco minutos del nacimiento, respectivamente.

La vitrificación de cigotos es un estado alternativo de criopreservación que en algunos casos puede resultar conveniente. Deberán realizarse estudios prospectivos para sustentar sus beneficios.

Palabras clave: cigotos, vitrificación, criopreservación.

ABSTRACT A 29-year-old patient diagnosed with primary infertility and a body mass index (BMI) of 18.7 kg/m2 underwent her first in vitro fertilization cycle. Ovarian stimulation was achieved with a total FSH dose of 2,450 IU. GnRh antagonist was started on day 9. Ovum pick-up was performed 36 hours following ovulation induction with hCG 10,000 IU, on day 12 of the cycle. A total of 26 oocytes were retrieved, from which 23 were mature (metaphase II). A total of 13 oocytes were vitrified and 10 underwent ICSI, from which seven were fertilized.

Embryo transfer was delayed due to signs of ovarian hyperstimulation syndrome and fertilized embryos were vitrified in different stages (3 zygotes and 3 four-stage cell embryos). Vitrification was performed with the cryotop method. Two months following initial stimulation, zygotes were thawed, but only one survived. A single embryo transfer was performed under transvaginal ultrasound guidance on day two of embryo development (four cell, 5% fragments). A positive pregnancy test in blood was confirmed two weeks following embryo transfer and a single sac and fetal heartbeat identified on week six. On May 2007, a healthy female baby was born following cesarean section at 37.5 weeks. Birth weight was 3,300 grams, one and five minute Apgar 8/9, respectively. Zygote vitrification is an alternative stage for embryo cryopreservation, which in some cases might be the best option in cryopreservation. Still, prospective studies should be started in order to fully assess its potential benefits.

Key words: zygotes, vitrification, cryopreservation.

*

Instituto Mexicano de Infertilidad (IMI). Guadalajara, Jalisco, México.

Correspondencia: Dra. Martha I García A. Correo electrónico: mgarciaamador@yahoo.com Recibido: octubre, 2008. Aceptado: diciembre, 2008.

Este artículo debe citarse como: García AMI, Chávez BA, Medina FJ, Quiróz TE y col. Primer nacido vivo en México luego de transferencia de embrión único obtenido a partir de cigotos vitrificados.

Comunicación del caso. Rev Mex Reprod 2009;1(3):109-12.

La versión completa de este artículo también está disponible en: www.revistasmedicasmexicanas.com.mx

L

a vitrificación es una técnica útil para la criopreservación de tejidos, ovocitos, cigotos y blastocistos, entre otros, con tasas de recuperación exitosas. La vitrificación en pronúcleos es uno de los mejores estados para la criopreservación al comparar los resultados. Se reporta la recuperación de 100%1 con alentadoras tasas de clivaje, implantación y embarazo.2,3 Es un estado alternativo de criopreservación para los países donde la regulación prohíbe la congelación de embriones en estado de clivaje.4

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

109

García Amador MI y col.

CASO CLÍNICO Paciente de 29 años de edad, con esterilidad primaria de cinco años, peso: 56 kg, talla: 1.73 m, IMC de 18.7; en primer ciclo de fertilización in vitro. Fue estimulada con 2,450 UI de FSHu. Se inició el antagonista el día 9 del ciclo. Se administraron 10,000 UI de hCG el día 12 del ciclo. La aspiración ovular se realizó 36 horas después. Se obtuvieron 26 ovocitos. Los ovocitos capturados se colocaron en medio de cultivo Upgraded B2 INRA (CCD) previamente gasificado (por 18 horas en promedio a 37 °C y 5% de CO2), durante un periodo de 2 horas. Luego de decumulados, se identificaron 23 ovocitos maduros. No se realizó transferencia en fresco por datos clínicos de hiperestimulación; así pues, 10 ovocitos se microinyectaron en fresco y 13 se destinaron a vitrificación. De los ovocitos microinyectados en fresco fertilizaron 7, y se vitrificaron 3 en estado de dos pronúcleos en un cryotop, y 3 embriones en 4 células (día 2) en otro (figura 1).

Captura

El proceso de vitrificación para todos los estadios (ovocitos, cigotos y embriones) se llevó a cabo de la siguiente forma: 1) Se depositaron en la solución de equilibrio compuesta por etilenglicol y dimetilsulfóxido, ambos al 7.5%. 2) Se trasladaron a la solución de vitrificación compuesta por etilenglicol, 15%; dimetilsulfóxido, 15%; y sucrosa, 0.5 M; en ésta se aspiraron y se devolvieron con pipeta unas tres veces en un minuto.

3) Se colocaron en la superficie del cryotop (Kitazato Supply Co., Fujinomiya, Japón). 4) El cryotop se sumergió bruscamente en un recipiente con nitrógeno líquido para la colocación de su cubierta protectora. 5) Se depositó en el tanque de almacenamiento.

Para la descongelación de los cigotos, se utilizó solución descongelante (TS-sucrosa 1 M), solución diluyente (DS-sucrosa 0.5 M) y solución de lavado en dos pasos (WS1, WS2, Kit vitrificación-Kitazato). Una vez descongelados, los cigotos se colocaron en medio de cultivo Upgraded B2 INRA (CCD), previamente gasificado, donde evolucionaron al estado de cuatro células. El estado de los cigotos, antes y después del procedimiento de vitrificación, puede observarse en las figuras 2 y 3.

Vitrificación de 13 ovocitos 23 ovocitos en metafase II

No transferencia en fresco

Microinyección intracitoplásmica de espermatozoides a 10 ovocitos

Fertilización de 7

Figura 2. Cigotos en fresco.

Vitrificación de 3 cigotos (2 pronúcleos) y 3 embriones (día 2)

Figura 1. Descripción del flujo ovocitario posterior a la aspiración de los folículos.

110

Tres cigotos se descongelaron dos meses después de su vitrificación. Sobrevivió uno. Dos días después se transfirió a la cavidad un embrión (4 células, 5% de fragmentos, 2 de simetría), bajo guía ecográfica transvaginal con cánula de Kitazato.

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Primer nacido vivo en México luego de transferencia de embrión único obtenido a partir de cigotos vitrificados

Figura 3. Cigotos postvitrificación.

La transferencia embrionaria se realizó en el ciclo posterior de preparación endometrial con estradiol vía oral, 2 mg diarios los primeros ocho días; cada 12 horas los días 9, 10 y 11; y cada 8 horas a partir del día 12. Se administró progesterona en perlas de 200 mg, 24 horas antes de la descongelación de los cigotos; y 50 mg diarios por vía intramuscular a partir del día de la transferencia embrionaria. El resultado de la subunidad beta de hCG en el día 14 posterior a la transferencia embrionaria fue de 129 mUI/mL y de 320 mUI/mL a las 48 horas.

RESULTADOS Se confirmó la presencia de un saco gestacional en la semana 5 y latido cardiaco a las 6.3 semanas de gestación. En la semana 37.5 de gestación nació por cesárea una bebé saludable, con peso de 3,300 gramos y Apgar 8/9; sin malformaciones congénitas.

DISCUSIÓN El proceso de fecundación comprende una serie de eventos que comienzan por la fusión del ovocito con el espermatozoide, que lleva a la aparición de dos pronúcleos situados juntos, 12 y 16 horas después de la inseminación y que tienden a desaparecer a las 20-22 horas después de la misma.

La vitrificación se basa en la congelación de una mezcla de crioprotectores que, a bajas temperaturas, aumentan su viscosidad y forman un vidrio “sin formación de hielo”.5

Vitrificar en estado de pronúcleos permite la fecundación del ovocito en fresco, obviando así la posibilidad potencial de daño al huso meiótico por efecto de las bajas temperaturas, ya que cada vez más estudios sustentan que el riesgo de daño es bajo porque el huso normalmente desparece durante la congelación y se reestructura después de la descongelación y el cultivo.6-8 Cuando hay cigotos excedentes conviene seleccionar el o los cigotos a vitrificar o a evolucionar. La selección puede llevarse a cabo siguiendo los parámetros de calidad establecidos,9-11 cuya aplicación ha demostrado una buena correlación entre calidad del cigoto y posibilidad de implantación; sin embargo, para el caso que se comunica no tuvimos la posibilidad de seleccionar los cigotos a vitrificar. La indicación para el procedimiento no fue solamente el excedente en fresco, sino la existencia de datos de hiperestimulación que hacían inconveniente la transferencia embrionaria en fresco.

CONCLUSIÓN El reporte del primer embarazo en México a partir de cigotos vitrificados refuerza la utilidad de la técnica de vitrificación para la criopreservación exitosa de diferentes estructuras biológicas.

Vitrificar en estado de pronúcleos es una forma alternativa de criopreservación embrionaria, que en casos específicos puede resultar conveniente.

REFERENCIAS 1. Kuwayama M, Teramoto S, Osada H, Hata K, Kato O. Clinical efficiency of vitrification of human embryos. Abstract (P399) of the 20th Annual Meeting of the ESHRE 2004. Berlín, Alemania.

2. Selman HA, El-Danasouri I. Pregnancies derived from vitrified human zygotes. Fertil Steril 2002;77:422-3.

3. Park SP, Kim EY, Oh JH, Nam HK, et al. Ultra-rapid freezing of human multipronuclear zygotes using electron microscope grids. Hum Reprod 2000;15:1787-90.

4. Oriefa Y, Nikolettosb N, AL-Hassanic S. Cryopreservation of two pronuclear stage zygotes. Reviews in Gynaecological Practice 2005;5:39-44.

5. Fahy GM, MacFarlane DR, Angell CA, Meryman HT. Vitrification as an approach to cryopreservation. Cryobiology 1984;21:407-26.

6. Gook DA, Osborn SM, Bourne H, Johnston WI. Fertilization of human oocytes following cryopreservation; normal karyotypes and absence of stray chromosomes. Hum Reprod

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

111

García Amador MI y col.

1994;9:684-91.

7. Rienzi L, Martínez F, Ubaldi F, Minasi MG, et al. Polscope analysis of meiotic spindle changes in living metaphase II human oocytes during the freezing and thawing procedures.

Hum Reprod 2004;19:655-9.

8. Bianchi V, Coticchio G, Fava L, Flamigni C, Borini A. Meiotic spindle imaging in human oocytes frozen with slow freezing procedure involving high sucrose concentration. Hum Reprod 2005;20(4);1078-83.

9. Scott LA, Smith S. The successful use of pronuclear embryo

112

transfers the day following oocyte retrieval. Hum Reprod 1998;13:1003-13.

10. Tesarik J, Greco E. The probability of abnormal preimplantation development can be predicted by a single static observation on pronuclear stage morphology. Hum Reprod 1999;14:1318-23.

11. Kattera S, Chen C. Developmental potential of human pronuclear zygotes in relation to their pronuclear orientation.

Hum Reprod 2004;19:294-9.

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción Volumen 1, núm. 3, enero-marzo, 2009

Normas para autores Los manuscritos deben elaborarse siguiendo las recomendaciones del Comité Internacional de Editores de Revistas Médicas (N Engl J Med 1997;336:309-15) y se ajustan a las siguientes normas: 1. El texto deberá entregarse impreso, por cuadruplicado, en hojas tamaño carta (21 × 27 cm), a doble espacio, acompañado del disquete con la captura correspondiente e indicando en la etiqueta el título del artículo, el nombre del autor principal y el programa de cómputo con el número de versión. (Ejemplo: Estrógenos en el climaterio. Guillermo Martínez. Word 6.0).

2. Las secciones se ordenan de la siguiente manera: página del título, resumen estructurado, abstract, introducción, material y método, resultados, discusión, referencias, cuadros, pies de figuras.

3. La extensión máxima de los originales será de 15 hojas, de los casos clínicos 8 hojas y cuatro figuras o cuadros. Las revisiones no excede­rán de 15 hojas.

En la primera página figurará el título completo del trabajo, sin superar los 85 caracteres, los nombres de los autores, servicios o departamentos e institución (es) a que pertenece (n) y la dirección del primer autor. Si todos los autores pertenecen a servicios diferentes pero a una misma institución el nombre de ésta se pondrá una sola vez y al final. La identificación de los autores deberá hacerse con uno hasta cuatro asteriscos (*,**,***,****); si son más autores utilice números en super­índice.

4. Para fines de identificación cada hoja del manuscrito deberá llevar, en el ángulo superior izquierdo, la inicial del nombre y el apellido paterno del primer autor y en el ángulo derecho el número progresivo de hojas.

5. Todo material gráfico deberá enviarse en diapositivas, en color o blanco y negro, nítidas y bien definidas. En el marco de cada diapositiva se anotará, con tinta, la palabra clave que identifique el trabajo, el número de la ilustración, apellido del primer autor y con una flecha se indicará cuál es la parte superior de la figura. Si la diapositiva incluyera material previamente publicado, deberá acompañarse de la autorización escrita del titular de los derechos de autor.

6. Las gráficas, dibujos y otras ilustraciones deben dibujarse profe­sionalmente o elaborarse con un programa de cómputo y adjuntarlas al mismo disquete del texto señalando en la etiqueta el programa utilizado.

7. Los cuadros (y no tablas) deberán numerarse con caracteres arábigos. Cada uno deberá tener un título breve; al pie del mismo se incluirán las notas explicativas que aclaren las abreviaturas poco conocidas. No se usarán líneas horizontales o verticales internas. Todos los cuadros deberán citarse en el texto.

8. Tipo de artículos: la revista publica artículos originales en el área de investigación clínica o de laboratorio, editoriales, artículos de revisión, biotecnología, comunicación de casos y cartas al editor. Se reciben artículos en los idiomas español e inglés.

9. Resumen. La segunda hoja incluirá el resumen, de no más de 250 palabras y deberá estar estructurado en antecedentes, material y método, resultados y conclusiones. Con esta estructura se deberán enunciar claramente los propósitos, procedimientos básicos, metodología, principales hallazgos (datos concretos y su relevancia estadística), así como las conclusiones más relevantes. Al final del resumen proporcionará de 3 a 10 palabras o frases clave. Enseguida se incluirá un resumen (abstract) en inglés.

10. Abstract. Es una traducción correcta del resumen al inglés.

11. Texto. Deberá contener introducción, material y métodos, resultados y discusión, si se tratara de un artículo experimental o de observación. Otro tipo de artículos, como comunicación de casos, artículos de revisión y editoriales no utilizarán este formato. a) Introducción. Exprese brevemente el propósito del artículo. Resuma el fundamento lógico del estudio u observación. Mencione las referencias estrictamente pertinentes, sin hacer una revisión extensa del tema. No incluya datos ni conclusiones del trabajo que está dando a conocer. b) Material y método. Describa claramente la forma de selección de los sujetos observados o que participaron en los experimentos (pacientes

o animales de laboratorio, incluidos los testigos). Identifique los métodos, aparatos (nombre y dirección del fabricante entre paréntesis) y procedimientos con detalles suficientes para que otros investigadores puedan reproducir los resultados. Explique brevemente los métodos ya publicados pero que no son bien conocidos, describa los métodos nuevos o sustancialmente modificados, manifestando las razones por las cuales se usaron y evaluando sus limitaciones. Identifique exactamente todos los medicamentos y productos químicos utilizados, con nombres genéricos, dosis y vías de administración. c) Resultados. Preséntelos siguiendo una secuencia lógica. No repita en el texto los datos de los cuadros o figuras; sólo destaque o resuma las observaciones importantes. d) Discusión. Insista en los aspectos nuevos e importantes del estudio. No repita pormenores de los datos u otra información ya presentados en las secciones previas. Explique el significado de los resultados y sus limitaciones, incluidas sus consecuencias para la investigación futura. Establezca el nexo de las conclusiones con los objetivos del estudio y absténgase de hacer afirmaciones generales y extraer conclusiones que carezcan de respaldo. Proponga nueva hipótesis cuando haya justificación para ello. e) Referencias. Numere las referencias consecutivamente siguiendo el orden de aparición en el texto (identifique las referencias en el texto colocando los números en superíndice y sin paréntesis). Cuando la redacción del texto requiera puntuación, la referencia será anotada después de los signos pertinentes. Para referir el nombre de la revista utilizará las abreviaturas que aparecen enlistadas en el número de enero de cada año del Index Medicus. No debe utilizarse el término “comunicación personal”. Sí se permite, en cambio, la expresión “en prensa” cuando se trata de un texto ya aceptado por alguna revista, pero cuando la información provenga de textos enviados a una revista que no los haya aceptado aún, citarse como “observaciones no publicadas”. Se mencionarán todos los autores cuando éstos sean seis o menos, cuando sean más se añadirán las palabras y col. (en caso de autores nacionales) o et al.(si son extranjeros). Si el artículo referido se encuentra en un suplemento, agregará Suppl X entre el volumen y la página inicial.

La cita bibliográfica se ordenará de la siguiente forma en caso de revista:

Torres BG, García RE, Robles DG y col. Complicaciones tardías de la diabetes mellitus de origen pancreático. Rev Gastroenterol Mex 1992;57:226-9.

Si se trata de libros o monografías se referirá de la siguiente forma:

Hernández RF. Manual de anatomía. 2ª ed. México: Méndez Cervantes, 1991;pp:120-9.

Si se tratara del capítulo de un libro se indicarán el o los autores del capítulo, nombre del mismo, ciudad de la casa editorial, editor del libro, año y páginas.

12. Transmisión de los derechos de autor. Se incluirá con el manuscrito una carta firmada por todos los autores, conteniendo el siguiente párrafo: “El/ los abajo firmante/s transfiere/n todos los derechos de autor a la revista, que será propietaria de todo el material remitido para publicación”. Esta cesión tendrá validez sólo en el caso de que el trabajo sea publicado por la revista. No se podrá reproducir ningún material publicado en la revista sin autorización.

Revista Mexicana de Reproducción se reserva el derecho de realizar cambios o introducir modificaciones en el estudio en aras de una mejor comprensión del mismo, sin que ello derive en un cambio de su contenido. Los artículos y toda correspondencia relacionada con esta publicación pueden dirigirse a la siguiente dirección: WTC Montecito 38, piso 15, oficina 29, colonia Nápoles, CP 03810, México, DF. Tel.: 9000-2863. E-mail: ammr@wtcmexico.com.mx