Yacouba KEMENANY by Ecole Inter-Etats des Sciences et Médecine Vétérinaires (EISMV Dakar)

UNIVERSITE CHEIKH ANTA DIOP DE DAKAR ECOLE INTER-ETATS DES SCIENCES ET MEDECINE VETERINAIRES (EISMV)

Anneé 2015

N° 18

Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali THESE Présentée et soutenue publiquement le 24 Juin 2015 à 9 heures, devant la Faculté de Médecine, de Pharmacie et d’Odontologie de Dakar pour obtenir le grade de : DOCTEUR VETERINAIRE (DIPLOME D’ETAT) Par

Yacouba KEMENANY Né le 06 Juillet 1975 à Bamako (MALI) JURY Président :

Directeur et rapporteur de thèse : Membre :

Co-directeur de thèse :

Madame Sylvie Seck GASSAMA Professeur à la Faculté de Médecine, de Pharmacie et d’Odontologie de Dakar Monsieur Germain J. SAWADOGO Professeur à l’EISMV de Dakar Monsieur Alain Richi KAMGA WALADJO Maître de conférences Agrégé à l’EISMV de Dakar Dr Adama SOW Maître-assistant à l’EISMV

ECOLE INTER-ETATS DES SCIENCES ET MEDECINE VETERINAIRES DE DAKAR BP : 5077-DAKAR (Sénégal) Tel : (00221) 33 865 10 08 Télécopie (221) 825 42 83 COMITE DE DIRECTION LE DIRECTEUR GENERAL Professeur Louis Joseph PANGUI LES COORDONNATEURS Professeur Germain Jérôme SAWADOGO Coordonnateur des Stages et des Formations PostUniversitaires Professeur Yalacé Yamba KABORET Coordonnateur de la Coopération Internationale Professeur Serge Niangoran BAKOU Coordonnateur des Etudes et de la Vie Estudiantine Professeur Yaghouba KANE Coordonnateur de la Recherche/Développement Année Universitaire 2014 – 2015

LISTE DES MEMBRES DU CORPS ENSEIGNANT DEPARTEMENT DES SCIENCES BIOLOGIQUES ET PRODUCTIONS ANIMALES Chef de département: Papa El Hassane DIOP, Professeur ANATOMIE–HISTOLOGIE–EMBRYOLOGIE M. Serge Niangoran BAKOU, Maître de Conférences Agrégé M. Gualbert Simon NTEME ELLA, Maître Assistant M. Felix NIMBONA, Moniteur CHIRURGIE-REPRODUTION M. Papa El HASSANE DIOP, Professeur M. Alain Richi KAMGA WALADJO, Maître de conférences agrégé M. Moussa WANE, Moniteur ECONOMIE RURALE ET GESTION M. Walter OSSEBI, Assistant M. Sidwatta Guy ILBOUDO, Moniteur

PHYSIOLOGIE-PHARMACODYNAMIETHERAPEUTIQUE M. Moussa ASSANE, Professeur M. Rock Allister LAPO, Maître de conférences agrégé M. Wilfried OYETOLA, Moniteur PHYSIQUE ET CHIMIE BIOLOGIQUES ET MEDICALES M. Germain Jêrome SAWADOGO, Professeur M. Adama SOW, Maître Assistant M. Kalandi MIGUIRI, ATER M. Sandaogo OUANDAOGO, Moniteur M. Grégorie BAZIMO, Moniteur ZOOTECHNIE – ALIMENTATION M. Ayao MISSOHOU, Professeur M. Simplice AYSSIWEDE, Maître Assistant M. Ngbocho Bernard N’GUESSAN, Moniteur M. Raoul ATIKPAKPE, Moniteur

DEPARTEMENT DE SANTE PUBLIQUE ET ENVIRONNEMENT Chef de département: Rianatou BADA ALAMBEDJI, Professeur HYGIENE ET INDUSTRIE DES DENREES ALIMENTAIRES D’ORIGINE ANIMALES (HIDAOA) M. Serigne Khalifa Babacar SYLLA, Maître Assistant Mlle Bellancille MUSABYEMARIYA, Maître Assistante M. Anicet ZOBO, Moniteur MICROBIOLOGIE-IMMUNOLOGIE-PATHOLOGIE INFECTIEUSE Mme Rianatou BADA ALAMBEDJI, Professeur M. Philippe KONE, Maître de conférences agrégé M. Zé Albert TRAORE, Docteur Vétérinaire Vacataire M. Stanislas ZEBA, Moniteur PARASITOLOGIE-MALADIES PARASITAIRESZOOLOGIE APPLIQUEE M. Louis Joseph PANGUI, Professeur M. Oubri Bassa GBATI, Maître de conférences agrégé M. Dieudonné DAHOUROU, ATER

PATHOLOGIE MEDICALE-ANATOMIE PATHOLOGIQUE-CLINIQUE AMBULANTE M. Yalacé Yamba KABORET, Professeur M. Yaghouba KANE, Maître de Conférences Agrégé Mme Mireille KADJA WONOU, Maître Assistante M. Djidjiho Géoffroy DJOSSA, Moniteur M. Nzi Kablan Roger, Moniteur M. Omar FALL, Docteur Vétérinaire Vacataire M. Alpha SOW, Docteur Vétérinaire Vacataire M. Abdoulaye SOW, Docteur Vétérinaire Vacataire M. Ibrahima WADE, Docteur Vétérinaire Vacataire M. Charles Benoît DIENG, Docteur Vétérinaire Vacataire PHARMACIE-TOXICOLOGIE M. Assionbon TEKO AGBO, Chargé de recherche M. Gilbert Komlan AKODA, Maître Assistant M. Abdou Moumouni ASSOUMY, Maître Assistant M. Pierre Claver NININAHAZWE, Moniteur

DEPARTEMENT COMMUNICATION Chef de département: Yalacé Yamba KABORET, Professeur BIBLIOTHEQUE OBSERVATOIRE DES METIERS DE L’ELEVAGE Mme Mariam DIOUF, Ingénieur Documentaliste (O.M.E.) (Vacataire) Mlle Ndella FALL, Documentaliste SERVICE AUDIO-VISUEL M. Bouré SARR, Technicien

SERVICE SCOLARITE

M. Théophraste LAFIA, Chef de Scolarité M. Mohamed Makhtar NDIAYE, Stagiaire Mlle Astou BATHILY, Stagiaire

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DEDICACES

JE RENDS GRÂCE A ALLAH LE TOUT PUISSANT ET A SON PROPHETE MOUHAMMAD, « PAIX ET SALUT SUR LUI » POUR M’AVOIR ASSISTE, PROTEGE, GUIDE TOUT AU LONG DE CES ANNEES. Je dédie ce travail : A MON GRAND PERE MAMOUTOU HAIDARA J’aurais bien voulu que tu sois là aujourd’hui à mes côtés en cette journée, mais vu l’âge et le déplacement qui est un peu difficile pour toi en ces jours-ci je t’en excuse. Ce travail est le fruit de tes encouragements. A MON PAPA ALY Tu nous as quitté il y a quinze ans de cela, que la terre te soit légère, qu’Allah t’accorde sa miséricorde et le paradis, Amen. J’aurais bien voulu que tu sois à mes côtés pendant ma prestation de serment, mais Dieu l’a voulu autrement. Notre relation sera éternelle, tu resteras toujours présent dans mon cœur et un modèle pour la vie. A MA MAMAN FATOUMATA HAIDARA Femme courageuse et forte, tu nous as inculqué une éducation qui force aujourd’hui l’admiration de tous. Les mots me manquent pour t’exprimer mon amour et te dire merci. Qu’Allah te comble de bénédictions et t’accorde longue vie afin que je puisse te servir autant que possible. A MA TANTE ASSETOU SIDIBE Dame de fer au grand cœur, femme de volonté et de dévouement, tu n’as jamais baissé les bras dans les moments les plus difficiles. Tu nous as quitté il y a cinq ans de cela, que la terre te soit légère, qu’Allah t’accorde sa miséricorde, Amen. Merci pour ton amour, ton attention et ta patience.

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A MES ONCLES Mamadou HAIDARA, Seydou HAIDARA, Abdoulkadri HAIDARA, Ibrahim HAIDARA. A MES TANTES Fatoumata HAIDARA, Maimouna HAIDARA, Awa KONE A MON EPOUSE FATOUMATA DOUMBIA Ta contribution dans ce parcours de combattant a été totale, je ne saurais trouver les mots pour te dire ce que tu représentes pour moi. Soyons unis pour toujours. Je t’aime. A MES FRERS ET SOEURS Mes frères Mohamed, Sidi Mamane, Yorodjan, Lamine, et Hama le benjamin ainsi que mes sœurs Awa, Binta, Mariétou et Maimouna la benjamine de la famille, que ce travail puisse vous stimuler dans toutes vos entreprises, je vous aime. A MES FILS, NEVEUX ET NIECES Abdoul Karim, Zoumana, Aly, Yacouba, Marama, Fily, Zenabou, Drissa, Fatoumata et Assetou ; inspirez-vous de ce travail pour faire mieux. A MES BEAUX PARENTS Vous êtes ma seconde famille, toute ma considération et ma sympathie. Acceptez ce travail comme le vôtre. A MES COLLEGUES MALIENS DE LA PROMOTION Kalifa TOURE, Mama TRAORE, Oumarou DOLO, Moussa COULIBALY, Ahmadou Nouh SOW, Karim COULIBALY, Ibrahim KONE, Ousmane BAGAYOGO, Boundiala SISSOKO, Hamidou KASSAMBARA, Broulaye KONE, Amadou dit Baba TRAORE, Diarha SANOGO, Mme COULIBALI Diahara HIMEIDOU.

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A MES AMIS Paul Ismael Nana BORO, Bounafou SYLLA, Adama DIALLO, Sory Ibrahim TOURE, Adama DIAWARA, Alou HAIDARA, Bassidiki TOURE. A mes frères de la communauté Malienne de l’EISMV, A la 42ème promotion de l’EISMV, A Adama SACKO pour son soutien inoubliable, A Dr Kadiali FOFANA pour tous les renseignements, Au Ministère du Développement Rural du Mali, Au Projet d’Accroissement de la Productivité Agricole au Mali (PAPAM), A ma chère Patrie le Mali, Au Sénégal, mon pays d’accueil

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REMERCIEMENTS

Mes sincères remerciements : A monsieur le Directeur Général de L’EISMV, Professeur Louis Joseph PANGUI A l’UEMOA, pour avoir financé cette étude à travers le Projet d’Appui à l’Enseignement Supérieur (PAES) A mon Directeur de thèse Professeur Germain J. SAWADOGO A mon Co-directeur de thèse Docteur Adama SOW A tous le personnel du service de Physique et Chimie Biologiques et Médicales : Dr Miguiri KALANDI, Mlle Aissatou BATHILY A tout le personnel de l’EISMV A tous les professeurs de l’IPR/IFRA de Katibougou du Mali A Dr Amadou DOUMBIA, Mohamed Lamine KOITA et toute l’équipe de la SPANA Bamako, Mali pour leur inestimable contribution lors des enquêtes de terrain. A toute ma famille Au Professeur François ADEBAYO ABIOLA notre parrain Au Dr Constant Rakiswendé ROAMBA A la 42ème promotion de l’EISMV A Mlle Raisha KASSIME A l’Amicale des Etudiants Vétérinaires de Dakar (AEVD) A l’Amicale des Etudiants Vétérinaires Maliens de Dakar (AEVMD) Au Ministère du Développement Rural du Mali A tous ceux qui de loin ou de près ont contribué à la réalisation de ce document.

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A NOS MAITRES ET JUGES

A notre Maître et président de Jury, Madame GASSAMA Sylvie Seck, Professeur à la Faculté de Médecine, de Pharmacie et d’Odontologie de Dakar : Vous avez fait un grand honneur en acceptant de présider ce jury, malgré votre programme très chargé. Veuillez trouver ici, l’expression de notre profonde gratitude et nos sincères remerciements. Hommage respectueux. A notre Maître, directeur et rapporteur de thèse, Monsieur Germain J. SAWADOGO, Professeur à l’EISMV de Dakar : En acceptant de rapporter ce travail, vous nous faites un grand honneur. C’est l’occasion pour nous de vous exprimer toute notre reconnaissance, pour le savoir reçu de vous. Veuillez accepter ici, cher maître, notre sincère remerciement. Hommage respectueux. A notre Maître et juge, Monsieur Alain Richi KAMGA WALADJO, Maître de conférences agrégé à l’EISMV de Dakar : Nous sommes très sensibles à l’honneur que vous nous faites en acceptant spontanément de juger ce travail. Votre dynamisme et votre amour du travail bien fait forcent admiration et respect. Veuillez accepter nos sincères remerciements. Hommage respectueux. A notre Maître et co-directeur de thèse, Monsieur Adama SOW, Maître assistant à l’EISMV de Dakar : Vous nous avez inspiré, aidé, et encouragé dans notre travail. Les moments passés ensemble nous ont permis de découvrir en vous l’exemple même de la bienveillance et de l’amour pour le travail bien fait. Vos conseils nous ont servi et continueront toujours à nous orienter. Hommage respectueux. Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

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« Par délibération, la Faculté de Médecine, de Pharmacie et d’Odontologie et l’Ecole Inter – Etats des Sciences et Médecine Vétérinaires de Dakar ont décidé que les opinions émises dans les dissertations qui leurs sont présentées, doivent être considérées comme propres à leurs auteurs et qu’elles n’entendent leur donner aucune approbation ni improbation. »

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LISTE DES SIGLES ET ABREVIATIONS

ADN : Acide désoxyribonucléique ALAT/TGP: Alanine aminotransférase / Transaminase Glutamopyruvique ASAT/TGO: Aspartate aminotransférase / Transaminase Glutamo Oxaloacétique ATP : Adénosine triphosphate DNPIA : Direction Nationale des Productions et Industries Animales EISMV : Ecole Inter-états des Sciences et Médecine Vétérinaires GIE : Groupement d’Intérêt Economique NEC : Note d’Etat Corporel ONG : Organisation Non Gouvernementale PAES : Projet d’Appui à l’Enseignement Supérieur PANA : Programme d’Action National d’Adaptation PDA-SA : Politique de Développement Agricole du Mali Stratégie Agricole PIB: Produit Intérieur Brut PROMISAM: Projet de Mobilisation des Initiatives en matière de Sécurité Alimentaire au Mali SPANA: Society for the Protection of Animal Abroad SNDR: Stratégie Nationale de Développement de la Riziculture UEMOA : Union Economique et Monétaire Ouest Africaine

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LISTES DES FIGURES

Figure 1: Diversité des robes rencontrées chez les ânes en Afrique de l’Ouest, A : Robe gris clair, B : Robe brun foncé, C : Robe noire, D : Robe gris zébrée ; E : Robe grise, F : Robe brun avec rayure, G : Tête et extrémité blanche, H : Robe pie-gris ............................................. 7 Figure 2: Quelques lésions traumatiques chez les ânes. ............................................................ 19 Figure 3: Rôle de l’âne en milieu rural : A : Transport de céréale, B : Transport du personnel, C : Transport du bois de chauffe, D : Transport de paille pour les réserves d’aliments. ......... 20 Figure 4: Rôle de l’âne en milieu urbain : A: Transport des ordures, 1B et 2B: Transport de matériaux de construction, C: Transport d’eau, D:Transport de bois de chauffe. .................... 22 Figure 5: Localisation et présentation du site de l’étude. ............................................................ 30 Figure 6: Prélèvement de sang chez un âne................................................................................. 34

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LISTE DES TABLEAUX

Tableau I: Effectif du cheptel asin du Mali par région .................................................................. 17 Tableau II: Effectif des ânes échantillonnés par village au Mali ................................................. 35 Tableau III : Caractérisation de la population d’étude selon l’âge, le sexe, le poids vif et la NEC. ..................................................................................................................................................... 41 Tableau IV: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali ................... 42 Tableau V: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali en fonction du sexe ................................................................................................................................................. 43 Tableau VI: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali en fonction des groupes d’âge .............................................................................................................................. 44 Tableau VII: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali en fonction de la note d’état corporel (NEC). ...................................................................................................... 46 Tableau VIII: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali en fonction des régions .......................................................................................................................................... 48

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TABLE DES MATIERES

INTRODUCTION .................................................................................................................................. 1 PREMIERE PARTIE : .......................................................................................................................... 4 CHAPITRE I : GENERALITES SUR LES ANES ............................................................................. 5 1.1. Historique ................................................................................................................................. 5 1.2. Classification des équidés ................................................................................................... 8 1.3. Races d’ânes en Afrique de l’Ouest .................................................................................. 8 1.4. Identification des ânes .......................................................................................................... 9 1.4.1. Signalement codifié .......................................................................................................... 10 1.4.2. Signalement graphique .................................................................................................... 10 1.4.3. Dentition et détermination de l’âge .............................................................................. 10 1.4.4. Note d’état corporel .......................................................................................................... 11 1.5. Physiologie de la reproduction ......................................................................................... 11 CHAPITRE II : ELEVAGE DES ASINS AU MALI .......................................................................... 14 2.1. Aperçu sur le Mali ................................................................................................................. 14 2.1.1. Démographie ...................................................................................................................... 14 2.1.2. Relief ..................................................................................................................................... 14 2.1.3. Hydrographie ...................................................................................................................... 15 2.1.4. Elevage au Mali .................................................................................................................. 15 2.2. Répartition des ânes au Mali : ........................................................................................... 16 2.3. Elevage de l’âne au Mali ..................................................................................................... 17 2.3.1. Habitat .................................................................................................................................. 17 2.3.2. Alimentation........................................................................................................................ 18 2.3.4. Contraintes liées à l’élevage des ânes ........................................................................ 18 2.4. Importance socio-économique des asins au Mali ....................................................... 19 2.4.1. En milieu rural .................................................................................................................... 19 2.4.1.1. Transport de charge ...................................................................................................... 19 2.4.1.2. Culture attelée ................................................................................................................. 20 2.4.3. Autres utilisations ............................................................................................................. 21 CHAPITRE III: BIOCHIMIE CLINIQUE DES ANES ...................................................................... 23

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3.1. Exploration des paramètres biochimiques .................................................................... 23 3.1.1. Exploration hépatique ...................................................................................................... 23 3.1.1.1. Protéines totales ............................................................................................................ 23 3.1.1.2. Transaminases ............................................................................................................... 24 3.1.2. Exploration rénale ............................................................................................................. 25 3.1.2.1. Créatinine ......................................................................................................................... 25 3.1.2.2. Urée.................................................................................................................................... 25 3.1.3. Paramètres énergétiques et de l’équilibre minéral................................................... 25 3.1.3.1. Cholestérol....................................................................................................................... 25 3.1.3.2. Calcium ............................................................................................................................. 26 3.1.3.3. Phosphore........................................................................................................................ 26 3.1.3.4. Magnésium....................................................................................................................... 27 3.1.3.5. Glucose ............................................................................................................................. 28 DEUXIEME PARTIE : ........................................................................................................................ 29 CHAPITRE I: MATERIEL ET METHODES .................................................................................... 30 1.1. Site de l’étude ........................................................................................................................ 30 1.2. Matériel .................................................................................................................................... 32 1.2.1. Matériel de terrain ............................................................................................................. 32 1.2.2. Matériel de laboratoire ..................................................................................................... 33 1.3. Echantillonnage .................................................................................................................... 33 1.4. Analyses biochimiques ....................................................................................................... 35 1.4.1. Principe du dosage des protéines totales .................................................................. 36 1.4.2. Principe du dosage de l’albumine ................................................................................ 36 1.4.3. Principe du dosage de l’urée.......................................................................................... 36 1.4.4. Principe du dosage du glucose ..................................................................................... 36 1.4.5. Principe du dosage de la créatinine ............................................................................. 37 1.4.5. Principe du dosage du calcium ..................................................................................... 37 1.4.6. Principe du dosage du phosphore ............................................................................... 37 1.4.7. Principe du dosage du magnésium .............................................................................. 38 1.4.8. Principe du dosage du cholestérol ............................................................................... 38 1.4.9. Principe du dosage de l’ASAT/TGO ............................................................................. 38 1.4.10. Principe du dosage de l’ALAT/TGP ............................................................................ 39 1.4.11. Electrophorèse des protéines sériques sur gel d’agarose .................................. 39 1.5. Analyse statistique ............................................................................................................... 40 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

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CHAPITRE II: RESULTATS ET DISCUSSION.............................................................................. 41 2.1. Résultats ................................................................................................................................. 41 2.1.1. Caractérisation de la population d’étude .................................................................... 41 2.1.2. Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali .................. 41 2.1.3. Variation des paramètres biochimiques selon le sexe ........................................... 42 2.1.4. Variation des paramètres biochimiques selon les classes d’âges ...................... 43 2.1.5. Variation des paramètres biochimiques en fonction de la NEC ........................... 45 2.2. Discussion .............................................................................................................................. 49 2.2.1. Caractérisation de la population d’étude .................................................................... 49 2.2.2. Valeurs moyennes des paramètres biochimiques et leurs variations ................ 50 CHAPITRE III: RECOMMANDATIONS ET PERSPECTIVES ..................................................... 56 3.1. Recommandations ............................................................................................................... 56 3.1.1. Aux propriétaires d’ânes ................................................................................................. 56 3.1.2. Aux vétérinaires ................................................................................................................. 57 3.1.3. Aux chercheurs .................................................................................................................. 57 3.1.4. A l’Etat Malien..................................................................................................................... 58 3.2. Perspectives........................................................................................................................... 58 CONCLUSION GENERALE ............................................................................................................. 59

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INTRODUCTION

Le Mali est un pays à vocation agropastorale. L’agriculture est pratiquée par près de 75 % de la population (Mali SNDR, 2009). Elle occupe la première place dans l’économie nationale devant l’industrie extractive et minière dominée par la production d’or. Cependant, elle est toujours non motorisée et repose sur la traction animale et la force des bras des paysans laborieux. Les animaux utilisés pour la traction au Mali sont : les bovins et les équidés (cheval, âne, bardot et mulet). Mais l’animal le plus utilisé pour la traction et pendant toute l’année demeure l’âne. De tous les temps, l’âne a été un animal indispensable pour l’homme au regard du travail quotidien qu’il assure à travers le transport des personnes, des biens, des ordures, les corvées ménagères et champêtres (attelage, exhaure d’eau, etc.). Malgré les énormes potentialités que regorge la traction animale asine, l’âne est le plus mal traité de tous les autres animaux domestiques par ses usagers et délaissé par la recherche vétérinaire. L’effectif du cheptel asin du Mali est estimé à 939 835 têtes (Mali DNPIA, 2013). Ce chiffre ne semble pas être proche de la réalité notamment par manque de statistique réelle. Ce manque de considération serait vraisemblablement dû à la négligence de l’espèce par les services chargés des productions et de la santé animale tant du public que du privé.

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Du fait de sa rusticité et de son endurance, l’âne est un animal à tout faire, mais négligé par ses utilisateurs et ignoré par la médecine animale et la recherche. Très peu d’études ont été menées sur les ânes en Afrique de l’ouest. La seule étude sur la classification ethnologique des ânes remonte de la période coloniale par DOUTRESSOULE (1947) qui avait décrit 6 races d’ânes dans les pays sahéliens de l’Afrique de l’ouest et 4 races au Mali. Parmi les quelques écrits existants sur les ânes aucune n’a trait à la caractérisation génétique. En ce qui concerne les paramètres biochimiques sériques des études ont été menées au Burkina Faso et au Sénégal (SOW et al., 2012; KABORE, 2014; ROAMBA, 2014). C’est fort de toute cette réalité que l’Ecole Inter-Etats des Sciences et Médecine Vétérinaires (EISMV) de Dakar a entrepris une étude sur la caractérisation morphobiométrique, biochimique et moléculaire des ânes de 4 pays d’Afrique de l’Ouest que sont : le Burkina Faso, le Mali, le Niger et le Sénégal. Ce projet a été financé par l’Union Economique Monétaire Ouest Africaine (UEMOA) à travers le projet d’Appui à l’Enseignement Supérieur (PAES). L’objectif de ce projet est de contribuer à la valorisation durable du cheptel asin dans les 4 pays de l’UEMOA par la caractérisation génétique et la détermination des valeurs usuelles des paramètres biochimiques. Notre travail est une composante de ce projet sous régional. L’objectif général est de déterminer les paramètres biochimiques des ânes de 3 régions du Mali. Les objectifs spécifiques sont : 1)

Caractériser les ânes échantillonnés dans les 3 régions du Mali ;

Etablir les valeurs usuelles de quelques paramètres biochimiques d’importance clinique des ânes du Mali ;

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Evaluer les variations de ces paramètres biochimiques selon les états physiologiques des animaux.

Ce travail comprend deux parties : La première partie traite des généralités sur l’âne, un aperçu sur le Mali, l’élevage des asins au Mali et la biochimie clinique des équidés. La deuxième partie aborde la méthodologie utilisée, les techniques de dosage de laboratoire, les résultats, la discussion, les recommandations et perspectives et en fin une conclusion de nos travaux.

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PREMIERE PARTIE : SYNTHESE BIBLIOGRAPHIQUE  CHAPITRE I : GENERALITES SUR LES ANES  CHAPITRE II : ELEVAGE DES ASINS AU MALI  CHAPITRE III : BIOCHIMIE CLINIQUE DES ANES

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CHAPITRE I : GENERALITES SUR LES ANES 1.1. Historique Les ancêtres de l’âne domestique se retrouvaient en Afrique du Nord-est (Egypte, Soudan, Somalie, Ethiopie, Erythrée) ou l’espèce aurait été domestiquée (BEJA-PEREIRA et al., 2004). L'âne aurait figuré sur les plus anciens monuments d'Egypte et il faisait partie des objets que le pharaon donna à Abraham. Des traces ont été retrouvées en Égypte suggérant que la domestication avait eu lieu il y a environ 5000 ans. Ainsi, les enseignements de l'histoire ne laissent aucun doute sur les lieux de la première domestication de l'âne ; ce sont les chaudes contrées aux environs de la mer rouge et des rivages du Sud-est de la Méditerranée. L’équipe dirigée par Albano Beja-Pereira a recherché l'origine de l'âne domestique en effectuant des prélèvements biologiques sur 427 ânes domestiques, dans 52 pays du monde. Les chercheurs ont analysé pour chaque individu une séquence précise de l'acide désoxyribonucléique mitochondrial. Des séquences de la même région ont également été étudiées chez des ânes sauvages d'Afrique de l'Est et d'Asie du Sudouest, des régions où sont apparues les domestications de nombreux animaux. Les chercheurs ont étudié les deux sous-espèces de l'âne sauvage africain (Equus africanus africanus, âne sauvage de Nubie et Equus africanus somaliensis, âne sauvage de Somalie) et les deux espèces d'ânes sauvages asiatiques (Equus hemionu, âne sauvage d'Asie et Equus kiang, âne sauvage du Tibet). L'analyse phylogénétique a révélé chez les ânes domestiques deux lignées qui auraient divergé entre 300 000 et 900 000 ans, c'est-à-dire bien avant leurs domestications. Ces résultats suggèrent donc qu'il existe deux origines maternelles distinctes pour l'âne domestique. Pour Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

en connaître l'origine, les chercheurs ont comparé ces séquences d'ADN avec celles obtenues chez les ânes sauvages asiatiques et africains (BEJA-PEREIRA et al., 2004). Cette comparaison exclut sans le moindre doute une origine asiatique. En revanche, l'une des deux lignées d'âne domestique est extrêmement proche de l'âne sauvage de Nubie, et l'autre se rapproche de l'âne sauvage de Somalie. On peut donc penser que la domestication de l'âne s'est produite uniquement en Afrique. Cette hypothèse est de plus confirmée par le fait que le niveau de polymorphisme est bien plus élevé en Afrique du Nord-est (Egypte, Soudan, Somalie, Ethiopie, Erythrée) que partout ailleurs dans l'Ancien Monde (BEJA-PEREIRA et al., 2004). Cette domestication répondrait ainsi à de nouveaux besoins de transport des sociétés pastorales du Nord-est de l’Afrique, confrontées à la désertification et à l’avancée du Sahara. Les populations pastorales qui vivaient dans cette région ont dû se déplacer plus fréquemment à la recherche des points d’eau et pâturages pour leurs animaux. Quant à l’âne malien, il semble être originaire de l’Afrique du nord où il a été utilisé dans toute la région méditerranéenne bien avant le cheval (DOUTRESSOULE, 1947). Pour l’auteur, il existe 4 races d’ânes au Mali : l’âne du Sahel, l’âne de l’Aïr, l’âne du Gourma et l’âne Minianka. Chacune des races à des caractéristiques qui lui sont propres (hauteur au garrot, la robe, position de la tête, de l’encolure. Cependant il y a une diversité des robes et certaines sont fortement représentées. Les robes les plus rencontrées sont : la couleur grise avec ces variantes (gris clair, gris souris, gris zébrée), la robe brune avec ces variantes (brun, brun foncé, brun avec rayure), la robe noire, la robe baie, tête et extrémité blanche. Beaucoup d’ânes ont le bout du nez très clair, ainsi que le ventre. La figure 1 nous donne un aperçu de la diversité des robes rencontrées en Afrique de l’Ouest. Mais l’aire de dispersion des ânes Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

vers le sud est limitée par la présence des glossines responsable de la trypanosomose animales.

G H Figure 1: Diversité des robes rencontrées chez les ânes en Afrique de l’Ouest, A : Robe gris clair, B : Robe brun foncé, C : Robe noire, D : Robe gris zébrée ; E : Robe grise, F : Robe brun avec rayure, G : Tête et extrémité blanche, H : Robe pie-gris

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1.2. Classification des équidés L’âne appartient à la famille des équidés, à la classe des mammifères, au super ordre des ongulés, à l’ordre des périssodactyles (chaque membre se termine par un ongle), du genre Equus et de l’espèce Asinus. Il allaite et donne naissance à un et unique rejeton le plus souvent. Il est herbivore. Les équidés se divisent en trois genres: Equus caballus : cheval Equus burchelli : zèbre Equus asinus : âne 1.3. Races d’ânes en Afrique de l’Ouest DOUTRESSOULE (1947) a décrit 6 races d’ânes en Afrique Occidentale Française que sont :  L’âne de l’Aïr C’est un animal de taille moyenne de 1 à 1,10 m, robe grise et blanche ou rouanne. Il est assez trapu et harmonique. La tête est longue et fine avec un crane étroit et court, une face longue. L’encolure est moyenne, le garrot puissant, le dos droit.  L’âne de Mauritanie C’est un animal de petite taille avec 0,90 à 1,05 m. Il a les poils ras, la robe varie du gris clair au bai foncé et la bande cruciale est marqué. La tête est carrée, front large, naseaux minces, dos horizontal, croupe courte et membres nets.

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 L’âne Minianka Il est très court avec 0,90 à 1,00 m et plus épais que les races du nord. La tête est longue, le chanfrein rectiligne, les oreilles longues, le dos est solide. Il a une robe beige avec une bande dorsale cruciale plus sombreclair sous le ventre et aux membres, légèrement zébré au canon aux jambes et l’avant-bras.  L’âne du Gourma : D’une taille de 1,05 à 1,10 m, la robe est grise avec le blanc dominant.  L’âne du sahel Un peu plus grand, étriqué que l’âne de l’Aïr. Il est plus osseux et musclé.  L’âne du Yatenga C’est un animal fortement charpenté, solide ayant de la taille avec 1,05 à 1,15 m. La tête est lourde, disgracieuse, à grandes oreilles, le chanfrein est rectiligne. Le squelette et la musculature sont plus développés que dans les autres variétés. Sa robe est grise ardoisée, quelque fois nuancée à marque cruciale très apparentée. Les poils sont fins, de longueur moyenne (3 à 5 cm) et la crinière est assez forte. 1.4. Identification des ânes L’identification ou la reconnaissance d’un âne consiste à faire son signalement. Ce signalement peut être soit graphique (à travers un dessin qui représente les marques naturelles de l’âne), soit codifié par l’utilisation des termes spécifiques aux asins. Le signalement d’un âne revient également à décrire l’animal à travers certains éléments les plus importants. Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

1.4.1. Signalement codifié Le signalement codifié nécessite l’utilisation des termes spécifiques aux ânes (ROSET, 2004). Il s’agit du nez de bouchard (ou nez noir), du nez de biche (ou nez gris), du nez de renard (ou nez roux), du liséré, la raie de mulet (ou bande dorsale), de la bande scapulaire, la croix de Saint André (bande cruciale) et les zébrures. 1.4.2. Signalement graphique Le signalement graphique des marques est commun aux chevaux et aux ânes. Il est utilisé en complément du signalement codifié pour les ânes qui ont très peu de marque. Dans ce cas l’identificateur doit prendre en considération les épis au niveau de la tête, des membres et de l’encolure. Le nez de bouchard, le nez de biche, le nez de renard sont délimités par un trait en pointillés. La bande cruciale, la raie de mulet et la bande scapulaire sont représentées par un trait chargé de rouge. Les zébrures sont représentées par un trait dans le sens de la zébrure. La robe éclaircie sous le ventre est délimitée par un trait en pointillés. 1.4.3. Dentition et détermination de l’âge On note très peu de différence entre la dentition de l’âne et celle du cheval. Chez l’âne la deuxième molaire définitive apparait 5 à 9 mois plutôt que le cheval soit vers 15 mois. Les prémolaires et molaires (dents jugales) atteignent leur longueur maximale à l’âge de 4 ans. Chez le cheval les dents jugales continuent à croitre en longueur jusqu’à ce que l’animal ait 6 ou 7 ans. Les canines sont semblables à celles du cheval, elles sont présentes chez le mâle ; tandis que chez les femelles les canines sont rarement observées. En ce qui concerne l’estimation de Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

l’âge on se réfère sur la table dentaire d’écrit par DAVEZE et RAVENEAU (2002). Les détails sont donnés en annexe I. Cependant chez l’âne, il existe des troubles fréquents de dentition tel que l’usure irrégulière, la parodontose avec dépôt de tarte, les fractures des incisives. Pour les prémolaires et les molaires les anomalies sont la pointe et les surdents, une denture en escalier et une denture lisse. La note d’état corporel de l’âne est également un paramètre important dans leurs aptitudes au travail. 1.4.4. Note d’état corporel La notation d’état corporel est un indicateur du bilan énergétique pour le suivi et l’évaluation de l’état nutritionnel de l’animal. Le maintien de l’âne dans un état nutritionnel correct est déterminant pour garantir une endurance à l’effort acceptable (VALL et al., 2001). L’état nutritionnel des ânes est caractérisé au moyen d’une grille de notation de l’état corporel. Une note de dos et une note du flanc sur une échelle de 1 à 5 (émacié= 1, maigre=2, moyen=3, bon=4 et 5= gras, obèse) attribuées à vue selon l’aspect du bassin, de la colonne vertébrale et du coté. La moyenne des deux notes, arrondie au demi-point supérieur, donne la note globale dite note d’état corporelle (NEC) (VALL et al., 2001) annexe II. 1.5. Physiologie de la reproduction Le baudet est le mâle de l’âne, la femelle est l’ânesse et le petit est l’ânon.  Baudet Le baudet ne doit pas être mis en reproduction avant l’âge de trois ans, même si la maturité physique est atteinte avant un an. Chez le baudet, la descente des testicules dans le scrotum peut prendre 2 ans. Si l’éleveur Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

est sûr de ne pas vouloir mettre le baudet en reproduction, il lui est recommandé de le castrer dès l’âge de 6 mois. Le plus souvent la saillie se fait en monte et rarement par insémination artificielle.  Ânesse Quant à l’ânesse, le cycle œstral dure 26 (23 à 30) jours. L’activité sexuelle saisonnière est relativement peu marquée mais sans véritable anœstrus comme chez la jument. Dans ce cycle, le dioestrus occupe en moyenne les 18 premiers jours (14 à 22) et l’œstrus les 8 jours restants et l’ovulation survient le dernier jour dans 51% des cas (CHABCHOUB et al., 2007). Lorsque l’ânesse est en chaleur, les signes prédominants sont : le mâchonnement allant jusqu’à la salivation et l’acceptation du chevauchement par les autres femelles du troupeau. La gestation est plus longue que chez la jument, soit 372 à 374 en moyenne passant parfois les 400 jours, au terme de laquelle les signes annonciateurs de la mise bas sont exprimés. Les gestations gémellaires sont difficilement menées à terme (CHABCHOUB et al., 2007). Chez l’ânesse comme chez la jument des chaleurs réapparaissent 5 à 13 jours après la mise bas, qui peuvent être mise à profit pour une nouvelle saillie et dans ce cas l’ânon sera sevré idéalement entre 6 et 7 mois (LAGARDE, 2010).  Le rituel de l’accouplement Le baudet, en présence d’une ânesse en chaleur fait des signes pré copulatoires auprès de l’ânesse : braiement, olfaction, chevauchement, de long jeu de poursuite et souvent sans érection (CISSE, 2009). La saillie fécondante a lieu au bout d’une trentaine de minutes. Les ânesses participent activement au rituel en s’approchant plusieurs fois, et stimule le baudet qui de son côté, manifeste plusieurs fois l’acte copulatoire. Le baudet a besoin de 5 à 30 minutes pour réaliser l’acte complet. Un Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

baudet peut de cette façon saillir plus d’une dizaine de femelles en une journée (LAGARDE, 2010).  hybride Le bardot ou la bardine est un hybride issu du croisement entre un étalon et une ânesse et le mulet ou la mule est issue du croisement entre un baudet et une jument. Le mulet est le plus apprécié car il hérite de la force du cheval, est plus grand que l’âne, mais conserve son caractère sobre et sa meilleure capacité à résister aux maladies. Les hybrides sont stériles. Après les généralités décrites sur cette espèce, nous allons parler du déroulement de son élevage au Mali dans le chapitre suivant.

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CHAPITRE II : ELEVAGE DES ASINS AU MALI 2.1. Aperçu sur le Mali 2.1.1. Démographie Le Mali est un pays soudano-sahélien à vocation agropastorale. Enclavé au centre de l’Afrique de l’ouest avec une superficie de 1.241.238 km2. Il partage environ 7000 km de frontière avec 7 pays limitrophes que sont : l’Algérie au Nord Est, la Mauritanie au Nord-Ouest, le Sénégal à l’Ouest, la Guinée au Sud-Ouest, le Niger à l’Est, la Côte d’ivoire au Sud et le Burkina Faso au sud-Ouest (Mali PDA-SA, 2013). Le pays est divisé en huit régions administratives (Kayes, Koulikoro, Sikasso, Ségou, Mopti, Tombouctou, Gao et Kidal) et le District de Bamako. La population était estimée en 2013 à 16 872 000 habitants (Mali PDA-SA, 2013). La population est composée de 13 grandes ethnies réparties en cinq groupes: Manding (Bambaras et Malinkés), soudanien (Sarakolés, Sonrais, Dogons, Bozos), voltaïque (Sénoufos, Miniankas, Bobos), nomade (Peuhls, Touaregs, Maures), divers (Toucouleurs et autres) (EJA, 1981). Ce vaste territoire est dominé par 4 zones climatiques correspondant à 5 zones écologiques avec un potentiel agricole assez diversifié (Mali PANA, 2007). 2.1.2. Relief  Zone saharienne : Elle couvre une superficie de 632.000 km2 soit 51%

territoire

national.

Elle

correspond

partie

septentrionale du Mali.  Zone sahélienne : Elle a une superficie de 285.000 km2 soit 23% du territoire. Elle comprend la zone sahélo-saharienne au nord et la zone sahélo-soudanienne au sud. Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

 Zone soudanienne : Elle s’étend sur environ 215.000 km2 soit 17% du territoire national. Zone agricole par excellence, elle constitue une zone de transhumance et de refuge avec une tendance à la sédentarisation des éleveurs. La pluviométrie est répartie sur 5 mois et varie de 600 mm au nord et à plus de 800 mm au sud.  Zone soudano guinéenne : Elle est située à l’extrême sud du pays, et couvre 75.000 km2 soit 6% du territoire. La saison des pluies dure 6 mois avec une pluviométrie annuelle moyenne située entre 800 et de 1000 mm.  Delta intérieur du Niger : C’est une entité écologique spécifique en tant que région humide à cheval sur les zones soudaniennes et sahéliennes. Cette zone écologique couvre plus de 30.000 km2 soit environ 25% du territoire. 2.1.3. Hydrographie Les ressources en eau de surface sont très importantes avec 2 grands fleuves : le Niger, le Sénégal et leurs affluents. Le Niger traverse le pays sur 1 700 km de long d'Ouest en Est et le Sénégal sur 900 km de long (soit 53% du cours du fleuve Sénégal). Les affluents du Niger sont : le Bani, le Sankarani, le Bafing, le Bagoé, le Baoulé (Mali PDA-SA, 2013). 2.1.4. Elevage au Mali Pratiqué par plus de 80% de la population, l’élevage constitue la principale source de revenus pour plus de 30% de la population du pays et l’activité dominante pour les populations des régions du nord (Tombouctou, Gao et Kidal) (Mali DNPIA, 2013). L’effectif du cheptel national en 2013 a été estimé à 10 012 900 bovins, 13 735 500 ovins, 19 126 800 caprins, 517 600 équins, 939 835 asins, 978 900 camelins, 77 300 porcins et 37 000 000 de volailles (Mali DNPIA, 2013). Avec ce

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potentiel, le Mali est classé parmi les premiers producteurs de viande dans la sous-région Ouest Africaine. Partant des mêmes statistiques, il ressort que la répartition régionale des asins paraît un peu homogène avec une abondance notable à Tombouctou, Gao et Mopti soit respectivement 19,43%, 18,10% et 14,61%. La région de Sikasso avec 7,84%, Ségou avec 9,37% et celle de Koulikoro avec 11,26% sur l'effectif national. La faible représentativité des asins dans la région de Sikasso peut s'expliquer par une forte pression des glossines. L’élevage contribue au Produit Intérieur Brut (PIB) pour 11% et à 24% à la production du secteur rural. Il assure un revenu substantiel des populations rurales pour environ 80% dans les systèmes pastoraux et 18% dans les systèmes agro-pastoraux. L’élevage représente environ 20% des recettes d’exportation, et occupe la troisième place après l’or et le coton (Mali DNPIA, 2013). 2.2. Répartition des ânes au Mali : Selon la dernière statistique de la Direction Nationale des Productions et Industries Animales du Mali en 2013, l’effectif des ânes était estimé à 939 835 têtes. Cet effectif est un peu uniforme sur l’étendue nationale à part la région de Sikasso qui a le plus faible taux et cela est dû à des contraintes écologiques. La majeure partie de cet effectif se concentre dans les régions où la pluviométrie annuelle n’excède pas les 500mm (Tableau I).

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Tableau I: Effectif du cheptel asin du Mali par région Région

Effectifs

Kayes

82 987

Koulikoro

105 826

Sikasso

73 683

Ségou

88 155

Mopti

137 310

Gao

170 110

Tombouctou

182610

Kidal

98 496

Bamako Total

658 939 835

Source : Mali DNPIA, 2013

2.3. Elevage de l’âne au Mali En milieu rural, presque toutes les familles ont au moins un âne. A l’instar des autres pays, il n’y a pas une spécificité dans le mode d’élevage au Mali. Cependant la stabulation permanente, la divagation saisonnière et la divagation permanente sont fréquentes. 2.3.1. Habitat Il n’existe pas d’habitat approprié pour les ânes. Un petit hangar suffit le plus souvent. Il est construit soit dans la cour ou à proximité des habitations. Mais les animaux sont exposés aux intempéries. L’ONG Society for the Protection of Animal Abroad (SPANA), grâce à l’approche participative, conseille les usagers la construction de logement approprié pour les ânes.

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2.3.2. Alimentation L’âne étant un animal peu exigeant du point de vue nutritionnel, son alimentation est composé de tiges de céréale et de reste de pâturage qu’il valorise. Les ânes ont besoin d’énergie, de protéine, des vitamines et des minéraux comme les autres animaux. 2.3.4. Contraintes liées à l’élevage des ânes Du fait de leur rusticité et résistance aux conditions naturelles et aux maladies, les ânes sont délaissés en termes de soins vétérinaires et de bien-être animal. Pourtant, les ânes sont sensibles à de nombreuses pathologies infectieuses et parasitaires. Les récents épisodes de grippe équine en 2004, 2010 et 2011 ont engendré une mortalité importante des ânes, mais malheureusement aucune étude de l’impact de la maladie n’a été entreprise. Les ânes sont maltraités soit par les coups de fouets des utilisateurs, les mauvais harnachements et les cordes utilisées pour limiter leur mouvement. Ces lésions traumatiques fréquentes exposent les ânes au tétanos. Pour améliorer le bien-être des ânes et en limiter les blessures par le matériel de harnachement, la SPANA fait la promotion du matériel de harnachement adapté à l’attelage de charrettes asines (Figure 2).

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Figure 2: Quelques lésions traumatiques chez les ânes.

2.4. Importance socio-économique des asins au Mali 2.4.1. En milieu rural 2.4.1.1. Transport de charge L’âne se déplace facilement sur des sentiers étroits dans des terrains montagneux et difficiles. En absence totale de routes, l’âne est un moyen de transport idéal pour les malades les vieux et les enfants handicapés ou très jeunes (AGROMISA, 2004). Bien attelés, deux ânes sont capables de tirer ensemble quatre fois la charge qu’ils peuvent porter sur leur dos (Figure 3).

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2.4.1.2. Culture attelée Les ânes sont utilisés dans les travaux champêtres pour le labour, le sarclage et désherbage. L’âne est fondamentalement un auxiliaire de travail indispensable dans les exploitations agricoles, mais surtout utilisé par les personnes démunies en raison de son coût et de sa polyvalence notamment dans le transport des personnes et des biens (Figure 3).

DD D D

Figure 3: Rôle de l’âne en milieu rural : A : Transport de céréale, B : Transport du personnel, C : Transport du bois de chauffe, D : Transport de paille pour les réserves d’aliments.

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2.4.3. Autres utilisations Dans les grandes villes du Mali les ânes

servent à transporter les

matériaux de construction, de l’eau, le bois de chauffe et les ordures ménagères (Figure 4). Avec un équipement adéquat les ânes servent également à faire tourner les roues qui broient les grains. Dans certaines régions ils servent aussi à tirer l’eau ou manœuvrer les pompes à eau. Au Mali, bien que n’ayant pas de statistique fiable sur sa consommation, la viande des équidés reste encore méprisée à cause des pratiques religieuses et des coutumes alimentaires des communautés. Tandis qu’au Burkina Faso la viande de l’âne intervient comme une source de protéines animales pour certaines franges de la population (KABORET, 1984; TAPSOBA, 2012). L’âne est un animal très convoité au Mali à cause de sa résistance aux pathologies et son endurance. L’étude de ces caractéristiques via l’exploration

fonctionnelle

serait

très

intéressante

pour

mieux

comprendre cette espèce. De ce faite, sa biochimie clinique va être abordée dans le chapitre suivant.

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A C

2B D

C C

D D

Figure 4: Rôle de l’âne en milieu urbain : A: Transport des ordures, 1B et 2B: Transport de matériaux de construction, C: Transport d’eau, D:Transport de bois de chauffe.

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CHAPITRE III: BIOCHIMIE CLINIQUE DES ANES 3.1. Exploration des paramètres biochimiques La biochimie clinique s’intéresse à l’analyse des molécules contenues dans les fluides biologiques de l’organisme (sang, urine etc…). Le dosage des paramètres biochimiques renseigne sur le statut de l’organisme. Souvent un paramètre ne peut pas être spécifique d’un organe, d’où la nécessité d’en combiner plusieurs afin de statuer sur l’état de santé. 3.1.1. Exploration hépatique 3.1.1.1. Protéines totales Les protéines totales plasmatiques sont composées d’albumine, des globulines (alpha-1, alpha-2, beta et gamma) et le fibrinogène. La protéinémie à elle seule manque de spécificité, il est parfois nécessaire de la coupler avec celui de l’albumine, afin de savoir si la modification est due à une variation de l’albumine, des globulines ou les deux (ECKERSALL, 2008). Une hypo-protéinémie peut avoir pour origine une insuffisance de production de protéines en cas d’atteinte hépatique, ou une fuite de protéines, en cas d’hémorragie, vomissement, diarrhée ou une perte par voie rénale. L’albumine est synthétisée dans le foie, sa concentration reflète en partie la fonctionnalité de cet organe. L’hyper-albuminémie est le signe d’une déshydratation tandis que l’hypo-albuminémie peut être due à une perte de protéines par voie digestive ou rénale ou une insuffisance hépatique chronique.

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Les globulines sont divisées en α-globuline, β-globuline et Ɣ-globuline et selon leur vitesse de migration électrophorétique (ECKERSALL, 2008). Une hyperglobulinémie est due à un processus infectieux en cours tandis que l’hypoglobulinémie peut être due à une immunodépression.

3.1.1.2. Transaminases Les enzymes utilisées dans l’évaluation de la fonction hépatique sont : l’alanine aminotransférase (ALAT) appelée aussi transaminase glutamopyruvique (TGP) et l’Aspartate aminotransférase (ASAT) appelée transaminase glutamo-oxalo-acétique (TGO). L’ALAT est une enzyme spécifique de l’hépatocyte. Une augmentation de l’activité sérique au double voir au triple sous-tend une cytolyse hépatique récente notamment de processus infectieux ou inflammatoire localisé, de troubles du drainage veineux, de médicaments ou d’une fièvre (SOW, 2012). Pour son interprétation il est important de le combiner avec celle de l’ASAT. L’ASAT est localisée dans le cytosol, mais aussi dans les mitochondries où elle est plus concentrée. Elle n’est pas spécifique d’organe car son activité est élevée dans les muscles striés squelettiques et cardiaques, le foie ainsi que dans les tissus dont les érythrocytes (CORNELIUS et al, 1959). Une augmentation de l’activité sérique de l’ASAT est considérée comme un état inflammatoire, traumatique ou dégénérescence des tissus qui en sont riches. L’ASAT est un indicateur sensible mais non spécifique de la souffrance musculaire chez les équidés surtout.

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3.1.2. Exploration rénale 3.1.2.1. Créatinine La créatinine se forme dans les muscles et est issue de la dégradation de la créatine phosphate par déshydratation. C’est le marqueur biochimique de la fonction glomérulaire le plus simple et plus fiable. Une augmentation de la créatinémie est le signe d’une atteinte rénale glomérulaire. 3.1.2.2. Urée L’urée est synthétisée dans le foie et résulte de la dégradation des acides aminés. L’urée est capable de traverser la membrane plasmatique. La production d’urée est influencée par la ration alimentaire. Une élévation de la concentration sérique peut provenir soit de l’alimentation, soit d’une diminution du catabolisme ou de l’excrétion urinaire. Une augmentation de la concentration peut être un indicateur de néphropathie. Cependant, comme la production d’urée peut être influencée par l’alimentation, et pour son interprétation il faut la combiner avec la créatinine. 3.1.3. Paramètres énergétiques et de l’équilibre minéral 3.1.3.1. Cholestérol Le cholestérol est une molécule qui est très importante au niveau des cellules eucaryotes des êtres supérieurs. Il renseigne sur l’état de réserve des graisses corporelles chez l’animal

(SOW, 2012). Le

cholestérol est le précurseur essentiel des hormones stéroïdiennes et des acides biliaires. Le cholestérol est apporté par l’alimentation mais aussi il est synthétisé en fine quantité au niveau du foie selon un mécanisme soumis à une régulation métabolique. Le cholestérol est Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

excrété dans la bile en l’état ou après transformation en acides biliaires (MARSHALL et BANGERT, 2005). 3.1.3.2. Calcium Le calcium est la substance minérale la plus abondante de l’organisme. Il est présent dans les os, les cellules et dans le plasma. Dans le plasma il est présent sous trois formes : une première forme liée avec les acides organiques, une seconde forme liée à des protéines et une troisième qui est active physiologiquement est présente sous la forme ionisée Ca2+ et est maintenue constant par les mécanismes homéostatiques. Le calcium joue plusieurs rôles dans l’organisme : l’excitabilité neuromusculaire, la formation des os, la coagulation sanguine, le processus de secrétions, l’intégrité membranaire et le transport à travers la membrane plasmique, les réactions enzymatiques, la libération des hormones et des neurotransmetteurs. Une concentration trop élevée peut être due à l’apport alimentaire, un défaut d’élimination ou une hyper-parathyroïde primaire ou secondaire due à une insuffisance rénale (BRAUN et LEFEBVRE, 2008 cité par ROAMBA, 2014). Une baisse de la concentration peut être causée par un déficit, une insuffisance rénale, insuffisance d’absorption du métabolisme de la vitamine D, l’hypoparathyroïdie et l’hypomagnésémie (SOW, 2012). Cependant pour l’interprétation d’une baisse de la concentration de calcium il faut l’associer avec celui de la concentration d’albumine plasmatique. 3.1.3.3. Phosphore Le phosphore est l’une des composantes indispensables dans la formation structurelle des os ainsi que d’autres organes. Il est en rapport avec le calcium dans une proportion de 2 sur 1. Le phosphore est Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

indispensable

dans

constitution

des

phospholipides,

phosphoprotéines, les acides nucléiques et dans la formation de l’énergie (ATP). La régulation de la concentration du phosphore plasmatique est étroitement liée à l’équilibre phosphocalcique. 3.1.3.4. Magnésium Le magnésium est un cofacteur essentiel de nombreuses enzymes. Sa répartition est approximativement 60% dans les tissus osseux, 38% dans les tissus mous et 1 à 2 % dans le milieu extracellulaire. Sa concentration dans le liquide extracellulaire est d’abord contrôlée par son excrétion rénale. De la même manière que le calcium, le magnésium plasmatique existe sous trois formes : lié à des protéines (principalement l’albumine), complexé à des anions de petite taille (lactate, phosphate), et ionisé qui est la forme physiologiquement active. Chez les équidés, la forme ionisée représente environ 60% du magnésium sérique total (LOPEZ et al., 2006). Le magnésium intervient dans le fonctionnement de la pompe Na+/K+ATPase, dans la régulation des pompes du calcium et du potassium, dans la transmission neuromusculaire et dans de nombreux processus enzymatiques et hormonaux. Une hypomagnésémie se traduit par des signes cliniques comparables à ceux de l’hypocalcémie et entraine le plus souvent une hypocalcémie, car la sécrétion de parathormone est magnésium dépendant. Une hypermagnésémie est fréquente lors de l’insuffisance rénale, mais il semble qu’elle soit bien tolérée par l’organisme et l’augmentation de sa concentration entraine rarement une perturbation clinique évidente (MARSHALL et BANGERT, 2005).

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3.1.3.5. Glucose Le glucose est un nutriment essentiel pour le fonctionnement du cerveau. Une mole de glucose fournit en moyenne 685,2 Kcal. Le glucose est produit soit par la gluconéogenèse, soit par glycogénolyse et suite à un apport alimentaire. Le maintien de la glycémie est soumis à la régulation des facteurs dépendants : hypoglycémiant comme l’insuline et hyperglycémiant comme le glucagon. Chez le jeune, la gluconéogenèse est acquise tardivement selon certains auteurs (MARSHALL et BANGERT, 2005) et très pauvres en réserves de glycogène à la naissance. Après la revue bibliographique dans la première partie de notre travail, nous allons aborder l’étude expérimentale dans la seconde partie du document.

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DEUXIEME PARTIE : ETUDE EXPERIMENTALE  CHAPITRE I: MATERIEL ET METHODES  CHAPITRE II: RESULTATS ET DISCUSSION  CHAPITRE III: RECOMMANDATIONS ET PERSPECTIVES

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CHAPITRE I: MATERIEL ET METHODES 1.1. Site de l’étude L’étude a été menée du 3 au 16 Décembre 2013 dans 9 villages dont 3 dans chacune des 3 régions : Koulikoro, Sikasso et Ségou. Les zones d’études sont représentées sur la carte (Figure 5).

Figure 5: Localisation et présentation du site de l’étude.

Koulikoro est la deuxième région administrative du Mali, située au centre Ouest du pays. Elle s’allonge du Nord au Sud sur 445 Km et d’Ouest en Est sur 340 Km. La région est limitée au Nord par la République Islamique de Mauritanie, à l’Est par la région de Ségou, à l’Ouest par la région de Kayes, au Sud-Ouest par la république de Guinée Conakry et au Sud par la région de Sikasso. La région de Koulikoro est un vaste plateau accidenté, constitué de roches cristallines et de roches gréseuses. La région couvre une superficie de 90210 Km2. Elle s’étend Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

entièrement dans la zone tropicale marquée par l’alternance d’une saison des pluies (mai en octobre) et d’une saison sèche (novembre en avril). La température la plus élevée 40°C s’observe entre mars et juin et la plus basse entre décembre et février. Du point de vue hydrographie 6 cours d’eau arrosent la région : le Niger, le Baoulé, le Bagoé, le Bani, le Bafing et le Sankarani. L’agriculture, l’élevage, la pêche et l’exploitation forestière occupent l’essentiel de la population et procure à ce titre la quasi-totalité de la production vivrière. De nos jours, c’est la seule région qui possède une forêt classée qui est la forêt Baoulé. Dans cette région, à cause de l’état du sol, les asins jouent un rôle important dans les travaux champêtres notamment le labour, la sémie, le sarclage et le transport des produits de récolte. En plus des travaux champêtres ils assurent le transport des personnes et de leurs biens. La région de Sikasso est située dans la partie méridionale du pays entre le 10°30’ latitude Nord et 8°45’ longitude ouest. Elle est limitée au nord par la région de Ségou, au Sud-Ouest par la république de Côte d’Ivoire, à l’Ouest par la république de Guinée Conakry et au Nord-Ouest par le Burkina Faso. Elle couvre une superficie de 71790 Km2. La région se trouve dans la zone humide et subhumide dont la pluviométrie annuelle est comprise entre 900 et 1400mm. La végétation de cette zone est caractérisée par des plaines, des bas-fonds et des collines. Les sols sont en général de type limoneux, limoneux argileux, limoneux sableux, sol hydromorphe, sol de terrain rocheux. Les sols sont assez riches et favorables à l’agriculture. La région est la principale zone de production des céréales sèches et du coton. Elle dispose de 6 000 000 ha de terres cultivables dont 936 318 ha sont cultivés (MALI PROMISAM, 2007). En importance numérique du Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

cheptel bovin, Sikasso est la deuxième région d’élevage avec 16 % du cheptel bovin sur le plan national (MALI DRPIA, 2010). Dans cette région l’élevage des équidés est un peu limité à cause de la trypanosomose, toute fois les ânes assurent le transport des intrants agricoles et les récoltes pendant l’hivernage et durant la saison sèche. Ils sont aussi utilisés pour les travaux domestiques. La région de Ségou est située au centre du Mali, entre le 12°30’ et le 15°30’ latitude Nord et les 4° et 7° longitude Ouest. Sa superficie est de 62504 Km2. Elle est limitée : au Nord par la république Islamique de Mauritanie, au Sud-est par le Burkina Faso, au Nord-est par la région de Tombouctou, au Sud par la région de Sikasso et à l’Ouest par la région de Koulikoro. La région se caractérise par un climat Soudano-Sahélien. La région est traversée par le fleuve Niger et le Bani qui est un affluent. La région est le berceau des ânes. Dans cette région presque toutes les familles possèdent au moins un âne. L’activité principale étant l’agriculture, les familles ont d’énormes difficultés si elles n’en ont pas. Les ânes sont au début et à la fin des travaux agricoles. 1.2. Matériel 1.2.1. Matériel de terrain Le matériel de terrain se composait de : - Une

balance

électronique (RUDDWEIGH

KM-2E

Electronic

Weighing System®); - Une centrifugeuse ; - Des tubes secs, des aiguilles et des portes aiguilles ; - Des fiches d’enquête ; - Un GPS GARMIN®; - Une glacière.

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1.2.2. Matériel de laboratoire Le matériel de laboratoire se composait de : - Des pipettes et des embouts ; - Un congélateur et un réfrigérateur ; - Des tubes à hémolyse ; - Du petit matériel de laboratoire (portoirs, agitateur) ; - Les réactifs de biochimie Biosystem®; - Un spectrophotomètre Biosystems BT-310®; - Une chaine électrophorétique Sebia®. 1.3. Echantillonnage Pour chacune des 3 régions d’étude, 100 ânes ont été sélectionnés. Ces ânes étaient répartis dans 3 villages différents. Au total 303 ânes ont été sélectionnés dans les 3 régions. Les détails sur le site d’échantillonnage et les effectifs sont résumés dans le tableau II. Les individus qui ont fait l’objet d’étude sont des sujets venant de divers horizons de la région et considérés comme apparemment sains. Ainsi, après avoir géo référencé la localité, chaque âne a été soumis à un examen général. Au cours de cet examen les informations sur le mode d’élevage, le sexe, le signalement (couleur de la robe et d’autres signes), le poids vif et la note d’état corporelle (annexe I) étaient notés. Ensuite l’âge de l’animal était déterminé selon la dentition (DAVEZE et RAVENEAU, 2002), Ces informations

sont enregistrées sur la fiche

d’enquête (annexe III). En plus des informations, un prélèvement sanguin était effectué à l’aide de tube sec au niveau de la veine jugulaire dans un but d’obtention du sérum, pour les analyses biochimiques (Figure 6).

Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

Figure 6: Prélèvement de sang chez un âne.

Tous les ânes échantillonnés ont été déparasités à l’Albendazole à la dose de 15 mg/kg de poids vif.

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Tableau II: Effectif des ânes échantillonnés par village au Mali Région

Nombre d’ânes

Village

Koulikoro

Fana

Dioila

Zantiguila

Sous total région

101

Sikasso

Bougouni

Molasso

Niéna

Sous total région

102

Ségou

Markala

Niono

Siengo

Sous total région

100

Total

303

1.4. Analyses biochimiques Les analyses biochimiques ont concerné les protéines totales, le glucose, l’albumine, les globulines, le cholestérol, la créatinine et l’urée, des marqueurs hydro-électriques tels que le calcium, le magnésium, le phosphore et les enzymes hépatiques dont l’ASAT/TGO et l’ALAL/TGP. Toutes les analyses biochimiques ont été effectuées avec des kits commerciaux (BIOSYSTEMS® SA). Le protocole expérimental a été décrit par le fabricant. Tout le dosage était colorimétrique et les lectures d’absorbance

ont

été

faites

l’aide

d’un

spectrophotomètre

(BIOSYSTEMS®SA).

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1.4.1. Principe du dosage des protéines totales Le dosage des protéines totales du sérum se fait selon la réaction de biuret. Les protéines présentes dans l’échantillon réagissent avec les ions en milieu alcalin pour donner un complexe de couleur violette quantifiable par spectrophotomètre à 545 nm. 1.4.2. Principe du dosage de l’albumine Le dosage de l’albumine du sérum a été fait selon la réaction du vert de bromocrésol en milieu acide. L’albumine présente dans l’échantillon réagit avec le vert de bromocrésol en milieu acide, formant un complexe coloré pouvant être mesuré par spectrophotomètre. 1.4.3. Principe du dosage de l’urée La méthode utilisée est celle de l’uréase. L’urée présente dans l’échantillon est décarboxylée à l’aide d’une enzyme spécifique de l’urée en milieu aqueux appelée uréase. L’action de mélange de salicylate et de l’hypochlorite de sodium sur l’ion ammonium formé en présence de nitoprussiate conduit à un indophénol coloré de couleur verte quantifiable par spectrophotomètre à 630nm. Uréase 2NH4+ + CO2

Urée + H2O Nitropruside NH4+ Salicylate+ NaClO

Indophénol

1.4.4. Principe du dosage du glucose La méthode utilisée est celle au glucose oxydase. Elle repose sur l’action d’une enzyme spécifique du glucose : le glucose oxydase. Cette dernière catalyse l’oxydation par l’oxygène atmosphérique du glucose présent Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

dans le sérum. Il se forme de l’acide gluconique et de l’eau oxygénée. Pour colorer cette solution, l’eau oxygénée a été oxydée par un système chromogène en présence de peroxydase qui catalyse la réaction. Il se forme ainsi un complexe coloré de couleur caractéristique quantifiable par spectrophotométrie à 490nm. (Glucose oxydase) Glucose + 1/2O2 + 2H2O

Gluconate + H2O2 (Peroxydase)

2H2O2+4-Aminoantipyrine+ Phénol

Quinoneimine+4H2O

1.4.5. Principe du dosage de la créatinine La créatinine dans l’échantillon est dosée par la réaction de Jaffé. La créatinine réagit avec le picrate en milieu alcalin pour donner un complexe coloré quantifiable par spectrophotomètre à 492 nm. 1.4.5. Principe du dosage du calcium Le dosage du calcium fait appel à la méthode au bleu de méthylthymol sans déprotéinisation. Le calcium présent dans le sérum est relevé par un

indicateur :

bleu

méthylthymol.

présence

hydroxyquinoleine évite l’interférence des ions Mg2+ jusqu’à la concentration de 4 mmol/l. 1.4.6. Principe du dosage du phosphore Le phosphore a été dosé selon la méthode sans déprotéinisation. Le dosage est réalisé à l’aide d’un mono réactif conduisant à un complexe phosphomolybolique en présence d’un réducteur en l’occurrence le sulfate ferreux.

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1.4.7. Principe du dosage du magnésium Le magnésium présent dans l’échantillon réagit avec la calmagite en milieu alcalin intermédiaire formant un complexe coloré qui peut être quantifié par spectrophotométrie. 1.4.8. Principe du dosage du cholestérol Le cholestérol a été dosé par la méthode enzymatique utilisant une cholestérol estérase et une cholestérol oxydase. Dans une première étape les esters de cholestérol sont hydrolysés en cholestérol libre par l’estérase puis le cholestérol libre est oxydé en cholestenone avec production d’eau oxygénée. (Cholestérol estérase) Cholestérol estérifié

cholestérol libre + Acide gras

(O2, Cholestérol oxydase) Cholestérol libre

Cholesténone + H2O2 (Péroxydase)

H2O2 + 4-Amino-antipyrine+Phénol

Quinone imine+4H2O

1.4.9. Principe du dosage de l’ASAT/TGO La transaminase glutamo-oxalo-acétique (TGO) catalyse la réaction suivante : Alpha-cétoglutarate+aspartate

oxaloacétique+glutamate

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L’activité catalytique est déterminée en utilisant la réaction couplée de la malate déshydrogénase (MDH) à partir de la vitesse de disparition de NADH mesurée à 340 nm. Oxaloacétate + NADH,H+

Malate + NAD+ (MDH)

1.4.10. Principe du dosage de l’ALAT/TGP La transaminase glutamopyruvique (TGP) catalyse la réaction suivante : Alpha-cétoglutarate + alanine

Pyruvate + Glutamate

L’activité catalytique est déterminée en utilisant la réaction couplée de lactate déshydrogénase (LDH) à partir de la vitesse de disparition de NADH mesurée à 349 nm. Pyruvate +NADH,H+

Lactate + NAD+ (LDH)

1.4.11. Electrophorèse des protéines sériques sur gel d’agarose Le principe de l’électrophorèse des protéines sériques est basé sur le caractère amphotère des acides aminés et la mobilité électrophorétique. Le caractère amphotère est la capacité d’ionisation des particules en fonction du pH. En effet, en milieu acide, les acides aminés captent des protons (H+) et deviennent des cations et en milieu basique, ils libèrent les protons et deviennent des anions. La mobilité électrophorétique est la migration des particules en fonction de leur charge. Ainsi les cations (ions positifs) migrent vers le pôle négatif (cathode) et les anions (ions négatifs) migrent vers le pôle positif (anode). Cependant la migration est directement proportionnelle à la charge et inversement proportionnelle à la masse.

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Le protocole utilisé est celui décrit par le fabriquant. Après la mise en place du matériel de manipulation et la préparation convenable des différentes solutions (solution de migration, de coloration et de décoloration) on dépose 10 µl de sérum dans chaque puits de l’applicateur, 120 µl d’eau sur la plaque du porte applicateur pour l’humidifier avant de placer convenablement le gel. Le gel est ensuite placé dans la cuve de migration, la face du gel vers le tampon (solution de migration) puis on branche la cuve au générateur de courant continu mis en marche. L’intensité du courant doit être de 12 mA par gel. La migration se déroule en 22 minutes. Le gel récupéré est placé à 80°C pendant au moins 10 minutes pour la fixation et le séchage dans l’incubateur sécheur. Après avoir séché et fixé, le gel est coloré dans une succession de trois bains. Cette étape est suivie du séchage du gel à 80°C sous un air chaud dans l’incubateur sécheur et la lecture au densitomètre PROG HYDRGEL PROTEINE b1-b2. Afin de contrôler la qualité de la manipulation, un sérum de contrôle est utilisé. 1.5. Analyse statistique Les données ont été saisies sur le tableur Excel et analysées avec le logiciel STATA 92® SE. Les moyennes et les écarts types ont été calculés pour chaque paramètre biochimique dosé et les poids vif. Le tTest de Student et l’ANOVA ont été utilisés pour comparer les valeurs moyennes obtenues dans les différents groupes d’ânes (groupe d’âge, sexe, NEC et la région). Le seuil de significativité a été fixé à 0,05.

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CHAPITRE II: RESULTATS ET DISCUSSION 2.1. Résultats 2.1.1. Caractérisation de la population d’étude Notre travail a porté sur un effectif de 303 ânes. Le tableau III présente la répartition des ânes selon l’âge, le sexe, le poids vif et la NEC. Selon le sexe l’échantillon était composé de 208 mâles (68,64%) et 95 femelles (31,35%). L’âge moyen était de 7,11±3,43 ans. Les sujets de plus de 6 ans représentaient 57,42%. Les animaux étaient en majorité maigres avec une NEC moyenne de 2,19±0,7. Cent soixante-sept animaux soit 55,11% avaient une NEC= 2 tandis que 86 autres animaux soit 28,38% avaient une NEC= 3. Le poids vif moyen était de 118,14±22,41 kg. Tableau III : Caractérisation de la population d’étude selon l’âge, le sexe, le poids vif et la NEC. Région

Age moyen

Mâle

Femelle

Poids vif

NEC moyen

Koulikoro

7,31±3,02

114,01±19,72

1,93±0,78

Sikasso

6,6±3,48

119,8±22.85

2,1±0.60

Ségou

7,45±3,8

120,46±24.52

2,56±0.72

Total

7,11±3,43

208

118,14±22,41

2,19±0,7

2.1.2. Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali Le tableau IV présente les valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali et les valeurs de référence lues dans la littérature. Les valeurs moyennes des paramètres biochimiques dosés, obtenues avec les ânes du Mali ont été dans les mêmes ordres de grandeurs à l’exception du glucose et d’alpha-2-globulines. La valeur du glucose qui était faible et celle d’alpha-2-globulines qui était supérieure aux valeurs trouvées dans la littérature.

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Tableau IV: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali Paramètres biochimiques Calcium mmol/l Protéines totales (g/l) Magnésium (mmol/l) Albumine (g/l) Cholestérol (mmol/l) Glucose (mmol/l) Urée (mmol/l) Créatinine (µmol/l) Phosphore (mmol/l) ALAT (UI/I) ASAT (UI/I) Alpha-1-globulines (g/l) Alpha-2-globulines (g/l) Beta-globulines (g/l) Gamma-globulines (g/l)

Valeurs moyennes des ânes du Mali 2,65±2,22 67,75±9,50 1,40±0,9 22,02±3,56 1,86±0,65 1,38±0,88f 5,84±1,43 132,51±29,73 1,21±2,47 10,53±7,75 238,42±68,81 2,93±0,52 10,31±2,66g 11,16±4,29 20,79±6,21

Valeurs de référence 2,13±0,04b 58 – 82a 1,25±0,15c 20 – 34a 2,10±0,46e 3,24±0,58b 1,9 – 7,6a 159,13±12,37b 1,74±0,83e 13,90±3,25e 295,81±62,79b 4,8±1,9d 7,7±2,3d 15,8±7,7d 16,9±4,0d

a : FRENCH et al. (1995); b: MORI et al. (2003); c: AL-BUSADAH et HOMEIDA (2005); d: CAVALCANTE et al. (2012) ; e: SOW et al. (2012); f: valeur inférieure à celles trouvées dans la littérature. g: valeur supérieure à celle trouvées dans la littérature 2.1.3. Variation des paramètres biochimiques selon le sexe La variation des valeurs moyennes des paramètres biochimiques selon le sexe est présentée dans le tableau V. Il y a eu une différence significative (p<0,05) pour la valeur moyenne de la créatinine et de l’ALAT. Les valeurs moyennes des paramètres biochimiques tels les protéines totales, le glucose, la créatinine, l’ALAT et l’ASAT sont élevées chez les mâles, par contre la valeur moyenne de l’albumine est plus élevée chez les femelles que chez les mâles.

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Tableau V: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali en fonction du sexe Mâles (n=208)

Femelles (n=95)

p-value

Calcium (mmol/l)

2,66±2,36

2,63±2,2

0,239

0,406

Protéines totales (g/l)

68,42±9,18

66,10±10,24

1,0544

0,1473

Magnésium (mmol/l)

1,73±0,98

1,48±1,02

-1,1188

0,8669

Albumine (g/l)

21,50±3,23

23,30±4,06

-2,2205

0,9855

Cholestérol (mmol/l)

1,88±0,64

1,82±0,70

0,3621

0,3591

Glucose (mmol/l)

1,41±0,95

1,31±0,68

0,4581

0,3240

Urée (mmol/l)

5,84±1,48

5,86±1,31

-0,0646

0,5257

Créatinine (µmol/l)

136,14±29,31

123,57±29,40

1,8425

0,0344*

Phosphore (mmol/l)

1,18±2,32

1,31±2,83

-0,6953

0,7556

ALAT (UI/l)

11,77±8,32

7,46±5,07

2,4596

0,0079*

ASAT (UI/l)

240,17±73,77

234,11±55,81

0,3766

0,3537

Alpha-1-globulines (g/l)

2,96±0,47

2,8±0,64

0,7010

0,2434

Alpha-2-globulines (g/l)

10,13±2,47

10,7±3,13

0,7341

0,7667

Beta-globulines (g/l)

10,9±3,92

11,5±5,23

-0,4288

0,6650

Gamma-globulines (g/l)

20,9±6,12

20,4±6,65

0,2520

0,4011

Paramètres biochimiques

*Différence significative p<0,05

2.1.4. Variation des paramètres biochimiques selon les classes d’âges Le tableau VI présente les valeurs moyennes des paramètres biochimiques en fonction des classes d’âges. Il y a eu une différence significative (p<0,05) entre les valeurs moyennes des protéines totales et du phosphore. Les valeurs comme pour le magnésium, le glucose, la créatinine, le phosphore et l’ALAT étaient plus élevées chez les ânons comparées aux groupes des jeunes et des adultes. Les valeurs moyennes comme pour le cholestérol, l’urée et alpha-2-globuline étaient élevées chez les sujets âgés. Par contre les valeurs

des protéines

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totales, l’ASAT, d’alpha-1-globulines, de Beta-globuline et de Gammaglobuline étaient plus élevées chez les sujets adultes de plus de 6 ans. Tableau VI: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali en fonction des groupes d’âge Paramètres

ânon (n=76)

jeune (n=54)

adulte (174)

p-value

2,42±2,11

2,67±2,30

2,71±2,19

2,34

0,10

62,77±8,95

66,70±9,73

69,73±9,10

5,98

0,0037*

1,48±1,06

1,29±0,91

1,42±1,00

0,21

0,8070

22,24±3,62

21,46±3,68

22,19±3,54

0,18

0,8354

1,85±0,62

1,89±0,73

1,85±0,64

0,04

0,957

1,67±0,90

1,07±0,76

1,42±0,49

2,84

0,0641

5,37±0,89

6,18±2,02

5,84±1,24

0,73

0,4834

Créatinine (µmol/l) Phosphore (mmol/l) ALAT (UI/l)

144,24±42,03

132,63±29,75

128,85±24,52

1,49

0,2313

1,67±2,83

1,15±2,30

1,10±2,31

3,64

0,0304*

11,06±6,97

9,42±7,32

9,1±6,86

0,70

0,4997

ASAT (UI/l)

211,37±59,60

242,95±77,99

234±37,26

1,95

0,1479

Alpha-12,98±0,36 2,77±0,59 3,1±0,66 0,76 globulines (g/l) Alpha-29,48±2,92 10,36±2,63 10,9±3,00 1,00 globulines (g/l) Beta-globulines 11,5±4,23 12,34±5,43 12,4±5,18 0,84 (g/l) Gamma15,4±4,53 20,12±7,42 23,3±5,85 0,41 globulines (g/l) *Différence significative p< 0,05 ; * Différence très significative p<0,001

0,4716

Calcium (mmol/l) Protéines totales (g/l) Magnésium (mmol/l) Albumine (g/l) Cholestérol (mmol/l) Glucose (mmol/l) Urée (mmol/l)

0,3765 0,4367 0,6657

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2.1.5. Variation des paramètres biochimiques en fonction de la NEC Les valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali en fonction de la NEC sont présentées dans le tableau VII. Il a été observé une différence significative (p<0,05) pour la valeur moyenne du cholestérol et une différence très significative (p<0,001) pour la valeur moyenne du phosphore en fonction de la NEC. Les valeurs moyennes du calcium, des protéines totales, du magnésium, de l’albumine, du cholestérol, de la créatinine, du phosphore, d’alpha-2-globuline et de gamma-globuline semblaient élevées chez les sujets présentant une NEC=4 par rapport aux NEC=1, 2 et 3. Les valeurs moyennes du glucose et de l’ASAT étaient élevées chez les sujets de NEC=3. Par contre les valeurs moyennes de l’urée et de Beta-globulines étaient plus élevées chez les ânes présentant la NEC=1.

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Tableau VII: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali en fonction de la note d’état corporel (NEC). Paramètres

NEC=1(n=32) NEC=2(n=167) NEC=3(n=86)

Calcium (mmol/l) Protéines totales (g/l) Magnésium (mmol/l) Albumine (g/l) Cholestérol (mmol/l) Glucose (mmol/l) Urée (mmol/l) Créatinine (µmol/l) Phosphore (mmol/l) ALAT (UI/l) ASAT (UI/l) Alpha-1-globulines (g/l) Alpha-2-globulines (g/l) Beta-globulines (g/l) Gamma-globulines (g/l)

2,72±1,95 66,93±9,52 1,35±0,95 19,95±2,02 1,58±0,42* 1,21±1,11 6,44±2,11 122,92±17,61 0,68±2,04 6,51±53,46 219,53±47,11 2,82±0,65 10,17±2,63 13,2±5,20 19,8±5,78

2,55±1,90 67,63±8,91 1,43±1,03 22,39±4,02 1,76±0,58 1,32±0,86 5,60±1,21 133,33±32,50 1,08±1,99 11,43±8,32 239,50±71,29 2,99±0,48 10,40±2,67 11,4±4,23 20,7±7,21

2,73±2,71 67,35±10,31 1,34±0,90 22,11±2,99 2,20±0,81 1,67±0,77 5,97±1,37 132,69±30,74 1,71±2,84 11±7,10 257,14±70,45 2,89±0,53 9,95±2,52 9,99±3,24 20,61±5,10

NEC=4(n=18)

3,09±3,13 72,78±13,31 1,48±1,25 23,26±2,21 2,14±0,65 1,2±0,74 6,24±1,46 148,4±13,48 1,73±2,44 9,69±7,96 197,8±72,57 2,86±0,72 11,13±4,49 9,33±6,83 24,5±3,89

1,86 0,50 0,31 1,91 3,69 1,01 1,45 0,94 7,31 1,46 1,45 0,24 0,20 1,13 0,40

p-value

0,1433 0,6802 0,8159 0,1342 0,0149* 0,3902 0,2332 0,4260 0,0002** 0,2299 0,2336 0,8698 0,8967 0,3469 0,7508

*Différence significative p< 0,05, **Différence très significative p<0,001

Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

2.1.6. Variation des paramètres biochimiques en fonction de la région Le tableau VIII présente les valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes en fonction des régions. Une différence significative (p<0,05) a été observée pour la valeur de Beta-globulines et une différence très significative (p<0,001) pour les paramètres tels que le calcium, les protéines totales, le magnésium, le cholestérol, le glucose, la créatinine, le phosphore, alpha-globulines, et la gamma-globulines. Les valeurs moyennes de certains paramètres comme le calcium, les protéines totales, le cholestérol, le glucose, l’urée, créatinine, le phosphore, l’ALAT, alpha-1 globulines et la gamma-globulines étaient plus élevées chez les ânes de la région de Ségou.

Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

Tableau VIII: Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali en fonction des régions Paramètres Calcium (mmol/l) Protéines totales (g/l) Magnésium (mmol/l) Albumine (g/l) Cholestérol (mmol/l) Glucose (mmol/l) Urée (mmol/l) Créatinine (µmol/l) Phosphore (mmol/l) ALAT (UI/l) ASAT (UI/l) Alpha-1-globulines (g/l) Alpha-2-globulines (g/l) Beta-globulines (g/l) Gamma-globulines (g/l)

Koulikoro (n=101) 2,88±1,4 69,01±7,06 1,12±0,69 19,78±2,61 1,79±0,38 0,79±0,95 5,91±1,82 127,37±20,51 0,65±1,37 10,62±8,89 238,43±61,94 3,03±0,54 11,08±2,19 13,48±4,15 19,88±5,20

Ségou (n=100) 2,93±1,90 73,40±8,68 1,40±0,97 22,26±2,95 2,39±0,78 1,80±0,79 5,98±1,33 154,33±29,97 1,78±2,30 11,77±7,46 219,86±81,81 2,95±0,55 11,86±2,53 10,59±3,92 25,82±4,60

Sikasso (n=102) F 2,14±1,71 32,91 60,85±8,25 18,87 1,67±0,82 19,40 24,03±3,74 13,82 1 ,40±0,21 27,43 1,55±0,52 13,43 5,64±1,06 0,48 115,84±24,20 18,43 1,21±2,28 22,30 9,19±6,79 0,83 256,96±57,35 2,24 2,81±0,47 0,71 7,98±1,42 15,21 9,40±3,97 4,35 16,66±5,17 13,80

p-value

0,0000** 0,0000** 0,0000** 0,2735 0,0000** 0,0000** 0,6198 0,0000** 0,0000** 0,4386 0,1125 0,4987 0,0000** 0,0188* 0,0000**

*Différence significative p< 0,05 ; **Différence très significative p<0,001

Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

2.2. Discussion 2.2.1. Caractérisation de la population d’étude La population d’ânes de notre étude a mis en exergue un nombre élevé de la NEC=2 (maigre soit 55,11%) et de la NEC=3 (moyen soit 28,38%). Il y a eu 32 sujets cachectiques recensés dont 11 à Sikasso, 17 à Koulikoro et 4 à Ségou; 11 sujets avec un bon embonpoint ont été dénombrés dans la région de Ségou. La population d’ânes était surtout concentrée entre la NEC=2 ou 3 (83,49%). La NEC moyenne des ânes du Mali (2,19±0,7) est plus basse comparée à celle des ânes du Burkina Faso (2,48±0,75) et celle des ânes du Sénégal (2,7±0,6) (KABORE, 2014 ; ROAMBA, 2014). Cet état pourrait s’expliquer par la période pendant laquelle l’étude a été menée, le mois de décembre, période qui correspond à la fin des récoltes ou il n’y a pas suffisamment de la paille disponible pour les animaux. Pendant la phase de terrain, nous avions eu à travailler avec des ânes qui étaient en majorité utilisés pour le transport et les travaux champêtres. En fonction des groupes d’âge constitué, nous avions eu plus de sujet du groupe 3 (adulte) soit 57% de l’effectif. C’est ce qui justifie l’âge des ânes échantillonnés qui étaient en majorité des sujets de plus de 6 ans. Le poids vif moyen des ânes adultes du Mali était de l’ordre de 118,14±22,41 kg, compris entre celui des ânes du Burkina Faso qui est de 114,02±22,8 kg et celui du Sénégal qui est de 135,9±13,2 kg (KABORE, 2014 ; ROAMBA, 2014). Le poids moyen des ânes de ses 3 pays est largement inferieure comparé à certaines races européennes telles que l’âne de Poitou qui peut peser entre 350 et 500 kg (DAVEZE et RAVENEAU, 1996). Cette différence pourrait être due d’une part à la

49 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

période

d’étude,

race

d’autre

part

aux

conditions

environnementales (climat, pathologie, les conditions d’élevage…). Il a été observé dans la région de Ségou la NEC moyenne la plus élevée et le poids moyen le plus élevé par rapport aux autres régions et avec un faible effectif d’animaux cachectiques. En effet, la région de Ségou est sur le long du fleuve Niger, on y fait la culture du riz et le maraîchage pendant toute l’année grâce aux vallées aménagées. Ainsi, la nourriture est disponible pendant toute l’année. Un autre facteur est que les ânes de la région de Ségou sont en stabulation permanente. Ce sont ces facteurs qui expliquent la présence majoritaire de sujets moyens et bons dans cette région. 2.2.2. Valeurs moyennes des paramètres biochimiques et leurs variations  Valeurs moyennes des paramètres biochimiques des ânes du Mali A part les valeurs moyennes du glucose et de alpha-2 globulines, toutes les valeurs moyennes des autres paramètres biochimiques étaient très proches des valeurs de références établies pour les ânes du Burkina Faso, du Sénégal, d’Europe, d’Amérique latine et celle du Moyen-Orient (SOW et al., 2012; KABORE, 2014 ; ROAMBA, 2014 ; FRENCH et al.,1995; MORI et al., 2003; AL-BUSADAH et HOMEIDA, 2005). La valeur moyenne du glucose des ânes du Mali était en deçà des valeurs des ânes Burkinabés (KABORE, 2014), Sénégalais (ROAMBA, 2014), Ethiopiens (TESFAYE et al., 2012) , Européens (FRENCH et al., 1995 ; PITEL et al., 2006 ; JORDANA et al., 1998 ; GUPTA et al.,1994), Américains (ZINKL et al., 1990), Latino-américains (MORI et al., 2003) et du Moyen-Orient (AL-BUSADAH et HOMEIDA, 2005 ; NAYERI et al., 1978). 50 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

La baisse de ce paramètre chez les ânes du Mali pourrait être d’origine alimentaire. Le niveau de glucose sérique est principalement lié à l’alimentation bien que certaines facteurs comme le stress peut contribuer à sa diminution (MORI et al., 2003). La valeur élevée d’alpha2-globulines des ânes du Mali était supérieure à celle des ânes Brésiliens (CAVALCANTE et al., 2012). La hausse d’alpha-2-globuline pourrait se justifier par le fait que la majorité des animaux étaient maigre. Une élévation de cette fraction

des globulines pourra traduire une

inflammation aiguë (ZABRE, 2013).  Variation des valeurs moyennes des paramètres en fonction du sexe La créatininémie moyenne et la valeur moyenne de l’ALAT ont varié significativement (p<0,05) en fonction du sexe. La variation de la créatininémie pourrait s’expliquer par l’activité des animaux en cette période et que les mâles sont plus utilisés que les femelles. Cette variation significative de la créatinémie a été remarquée par PITEL et al. (2006) sur les ânes européens. Tandis que d’autres auteurs comme SOW et al. (2012), KABORE (2014), ROAMBA (2014), Mori et al. (2003), n’ont pas constaté de différence significative entre les deux sexes. En effet, la concentration sérique de la créatinine dépend de la teneur totale du corps en créatine et de la masse musculaire (KANEKO, 1989 ; SOW et al. 2012). Pour la valeur de l’ALAT, SOW et al. (2012) ; KABORE (2014) ont constaté qu’il n’y a pas de différence significative entre les deux sexes. Par contre d’autres auteurs tels que PITEL et al. (2006), ROAMBA (2014) ont constaté une différence significative entre les deux sexes. Nous n’avons pas d’éléments nécessaires pour justifier cette variation significative.

51 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

 Variation des valeurs moyennes des paramètres en fonction des groupes d’âges Il y a une différence significative (P<0,05) pour les valeurs moyennes des protéines totales et du phosphore. Ces deux moyennes sont des paramètres nutritionnels. La valeur moyenne des protéines totales est plus élevée chez les adultes (69,73±9,10) que chez les jeunes (66,70±9,73) et les ânons (62,77±8,95). Cette variation des protéines totales pourrait être due d’une part à l’alimentation et d’autre part au catabolisme protéique qui est plus faible chez les jeunes que chez les adultes et pour les valeurs de l’urée, il est plus faible chez les ânons que chez les jeunes et les adultes. La concentration du phosphore était plus élevée chez les ânons (1,67±2,83) que chez les jeunes (1,15±2,30) et les adultes (1,10±2,31). Ce constat a été déjà fait par JORDANA et al. (1998) et MORI et al. (2003) qui ont rapporté que la phosphorémie est d’habitude plus élevée chez les ânons que chez les jeunes et les adultes. Des études ont démontrées que la concentration de phosphore dans le sérum diminue avec l’âge chez les chevaux, les ânes, et les autres animaux domestiques (GURGOZE et ICEN, 2010; PRITCHARD et al., 2009). Pour notre étude, nous n’avions pas eu assez d’animaux de moins d’un an et nous avions considéré comme ânons tous les sujets de moins de 3 ans. Ainsi nous avions eu un âge moyen de 1,87±0,97 ans qui comparé à d’autres races serait classé dans le groupe des jeunes (PITEL et al., 2006).  Variation des valeurs moyennes des paramètres en fonctions de la NEC Il y a une différence significative pour les valeurs moyennes du cholestérol et de celle du phosphore qui sont toutes deux des paramètres nutritionnels. 52 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

La variation du cholestérol observée dans notre étude ne saurait être expliquée que par l’influence de l’environnement. Le cholestérol est présent dans la ration alimentaire, et peut être synthétisé par le foie selon un mécanisme soumis à une régulation métabolique très fine (MARSHALL et BANGERT, 2005). Le cholestérol nous renseigne sur la mobilisation des réserves de graisses corporelles par l’animal (SOW, 2012). La variation du phosphore observée entre les différentes NEC pourrait être le résultat d’un déficit d’apport alimentaire car rares sont les ânes qui bénéficient de la complémentation. Ce qui signifie que la variation significative du cholestérol et du phosphore observée dans notre étude serait due à un déficit d’apport alimentaire. Plus un animal est gras, plus il a des réserves en cholestérol. Par ailleurs, il a été constaté que la valeur moyenne du cholestérol est plus élevée chez les animaux présentant la NEC=3 et 4 et plus faible pour les ânes de la NEC=1 et 2. Un autre facteur est qu’il a été constaté que les animaux de la région de Ségou avaient une NEC moyenne plus élevée que les autres régions. Cette différence pourrait s’expliquer par le mode d’élevage qui diffère d’une région à l’autre. La stabulation permanente est pratiquée dans la région de Ségou tandis que dans les deux autres régions c’est

divagation saisonnière des animaux. Les valeurs moyennes de l’urée et de Beta globulines qui étaient plus élevées chez les sujets présentant la NEC=1, pourraient s’expliquer par l’état cachectique des animaux constituant la NEC=1. En effet, l’état cachectique étant soit le signe d’une insuffisance alimentaire soit le signe d’une pathologie, donc une augmentation de la concentration sérique de l’urée peut être le signe d’une néphropathie, d’une déshydratation,

d’un

déséquilibre

électrolytique,

d’une

hypo53

Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

albuminémie, musculaire,

d’un myosite)

catabolisme ou

tissulaire

d’origine

(fièvre,

iatrogène

traumatisme

(glucocorticoïdes,

tétracycline, thyroxine) (SOW, 2012). La variation de la concentration de Beta-globulines pourrait être due à une inflammation chronique et atteinte hépatique. La diminution de la concentration sérique de la créatinine chez les sujets présentant la NEC=1 pourrait être due à la perte de poids voire la cachexie (PITEL et al., 2006).  Variation des valeurs moyennes des paramètres en fonction des régions A part les valeurs moyennes de l’albumine, l’urée, l’ASAT, l’ALAT et des alpha-1-globulines, il y avait une différence significative pour toutes les autres valeurs biochimiques en fonction de la région. Le calcium, les protéines totales, le magnésium, le cholestérol, le glucose et le phosphore qui sont des paramètres nutritionnels, sont plus importants chez les ânes de la région de Ségou que ceux des deux autres régions d’études, c’est dans cette région que les animaux avaient le poids moyen le plus élevé (120,46±24,52 kg). Cela pourrait s’expliquer par l’abondance de la nourriture dans cette région et durant toute l’année due au fait qu’il existe deux campagnes de cultures et puis les animaux sont en stabulation permanente. La variation significative de ces paramètres pourrait être due à l’alimentation. Cependant les sources du calcium, magnésium et de phosphore restent d’origine alimentaire et varient en fonction de la richesse du sol en ces minéraux, les plantes peuvent en accumuler en grande quantité. Les animaux qui se nourrissent de ces plantes pourraient avoir des valeurs plasmatiques assez élevées que les congénères des zones qui en sont dépourvues (CALVET et al., 1972 cité par SOW, 2012). Bien que nous n’ayons pas de données sur la complémentation alimentaire des ânes dans les zones 54 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

d’étude, il n’est pas impossible que les ânes adultes, utilisés en permanence dans les travaux champêtres reçoivent des compléments alimentaires et minéraux (graines de mil, de maïs et pierre à lécher) de la part des propriétaires (SOW, 2012). La créatininémie a varié en fonction des trois régions d’études et la valeur la plus élevée a été observée chez les ânes de la région de Ségou. Cette variation pourrait être due à la masse musculaire puisque c’est dans cette région qu’on a la NEC la plus élevée avec 2,56±0,72 contre 2,1±0,60 pour la région de Sikasso et 1,93±0,78 pour la région de Koulikoro. En plus de la NEC c’est la région qui a le poids moyen le plus élevé avec 120,46±24,52 kg. Un autre facteur est que les animaux de la région de Ségou travaillent pendant toute l’année à cause de la double campagne agricole dans les vallées. La variation des globulines pourrait être due à l’état des ânes puisque nous avons eu à travailler sur des animaux maigres et une augmentation de ces différentes fractions d’immunoglobulines témoigne d’une réaction inflammatoire. Une augmentation de la fraction alpha-2-globulines témoigne d’une inflammation aiguë (le pic le plus élevé) et celle de Betaglobulines d’une inflammation chronique et d’atteinte hépatique. La concentration de la fraction gamma-globulines augmente dans les infections chroniques, les néoplasmes, les allergies, les anaphylaxies (Van Den Abbeele, 1986 cité par ZABRE, 2013).

55 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

CHAPITRE III: RECOMMANDATIONS ET PERSPECTIVES 3.1. Recommandations Le code de la santé animale du Mali relatif au bien-être animal dans son chapitre III article 5 dit : toute personne qui détient un animal, qui en garde ou qui en prend soin est tenue : - De lui donner de la nourriture et les soins appropriés à son espèce et lui fournir un logement adapté à ses besoins physiologiques et éthologiques ; - D’éviter de restreindre ses besoins naturels, d’exercice et de mouvement de façon qu’il en résulte pour lui des douleurs, des souffrances ou des lésions. Certes l’utilisation des ânes comme animal de trait à des effets qui vont toujours à l’encontre du bien-être animal, mais cela ne doit pas empêcher les propriétaires de veiller sur leur bien-être. A l’issue de cette étude sur la détermination des valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes du Mali, il convient de dégager des propositions et suggestions à l’endroit des différents acteurs. Cela pour les amener à participer à l’amélioration du bien-être des ânes, la productivité de l’élevage, les conditions sanitaires en vue d’augmenter la rentabilité de l’utilisation de ces animaux. 3.1.1. Aux propriétaires d’ânes A l’instar des autres espèces, il serait souhaitable que les propriétaires songent à construire des habitats pour les ânes afin de les protéger contre les intempéries. Ce logement doit respecter les normes de construction d’un habitat pour âne. Vu que les ânes sont nourris de reste d’aliments, des résidus de récolte qui sont à faible valeur nutritive ; les propriétaires devraient faire des réserves de paille pour les ânes et ne

56 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

pas oublier la complémentation en minéraux et énergie pour qu’ils compensent l’effort fourni. Chez les asins l’hygiène est un facteur très important. Les éleveurs devraient s’intéresser à l’hygiène de l’alimentation, du harnachement, du logement. Il serait meilleur que le stock de nourriture destiné aux ânes soit à l’abri de la poussière et autres contaminants, si possible trier la nourriture avant de la distribuer puisque l’âne est un animal qui se prête facilement

des

coliques.

Ils

doivent

être

utilisés

façon

raisonnable. Pour les soins, faire appel aux vétérinaires ou les agents de la santé animale. 3.1.2. Aux vétérinaires Les vétérinaires doivent fournir des efforts en changeant les idées empiriques des populations qui pensent encore que l’âne est fait pour souffrir, et qu’il ne mérite aucun acte de bienfaisance de la part de ses utilisateurs. C’est la raison pour laquelle ils s’adonnent à des actes mal sains envers ces animaux. Les vétérinaires devraient sensibiliser les éleveurs sur l’automédication, la vaccination, les soins vétérinaires, la complémentation

alimentaire

comme

tous

les

autres

animaux

domestiques. Nous leur recommandons pour le traitement des asins de faire des prises de sang pour des examens complémentaires tout en tenant compte des paramètres biochimiques usuels obtenus dans cette étude pour l’interprétation des résultats. 3.1.3. Aux chercheurs Vu l’importance socio-économique et culturelle qu’il occupe, peu d’études ont été menées sur les ânes dans l’Afrique de l’Ouest en particulier au Mali. Il serait intéressant que la recherche s’intéresse aux ânes pour permettre une meilleure prise en charge de cette espèce.

57 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

3.1.4. A l’Etat Malien Les équidés en particulier les ânes sont des animaux très présents dans la vie socio-économique tant en milieu rural qu’urbain. A cet effet, l’âne doit avoir une considération au même titre que les autres animaux à l’égard des services en charge des productions animales et de la santé animale. Pour cela nous recommandons à l’Etat : - d’organiser des campagnes: de vaccination contre les maladies infectieuses et de déparasitages des ânes; - faire chaque 5 ans un dénombrement des ânes; - formation de spécialistes en clinique équine ; - vulgariser le code relatif au bien-être des animaux ; - mettre en application l’article 05 du chapitre III, dudit code; - sensibiliser la population contre les mauvais traitements des ânes. 3.2. Perspectives Cette étude a permis de déterminer les valeurs usuelles d’un certain nombre de paramètres biochimiques des ânes du Mali. Il serait plus judicieux de déterminer les valeurs de référence des paramètres biochimiques des ânes de l’Afrique de l’Ouest avec un échantillon plus représentatif de tous les pays. Il est nécessaire de s’investir

davantage

en faisant

une

évaluation

des

ressources

génétiques des ânes de l’Afrique de l’Ouest par la caractérisation génétique des races d’ânes à l’aide de l’ADN mitochondrial. Ces résultats permettront d’avoir une idée sur la génétique des ânes de l’Afrique de l’Ouest en général et du Mali en particulier.

58 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

CONCLUSION GENERALE

Le Mali, en tant que pays à vocation agropastorale, dont l’agriculture est pratiquée au moins par 75 % de la population et occupe une place de choix dans l’économie du pays. L’agriculture n’étant pas encore motorisée repose sur la traction animale. Parmi les animaux utilisés pour la traction figurent les ânes. L’âne a été un animal indispensable pour l’homme au regard du travail quotidien qu’il assure à travers le transport de personnes, des biens, des ordures, de l’attelage et d’eau. Malgré ces énormes potentialités que regorge la traction animale asine, l’âne est le plus mal traité parmi tous les autres animaux domestiques par ces usagers et délaissé par la recherche vétérinaire. C’est fort de toute cette réalité que l’Ecole Inter-Etats des Sciences et Médecine Vétérinaires (EISMV) de Dakar a entrepris une étude sur la caractérisation morphobiométrique, biochimique et moléculaire des ânes de 4 pays d’Afrique de l’Ouest que sont : le Burkina Faso, le Mali, le Niger et le Sénégal. L’objectif de ce projet est de contribuer à la valorisation durable du cheptel asin dans les 4 pays de l’UEMOA par la caractérisation génétique et la détermination des valeurs usuelles des paramètres biochimiques. La présente étude sur les ânes du Mali a été menée dans l’objectif de déterminer quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques. Notre étude s’est déroulée dans 9 villages répartis dans 3 régions du Mali à savoir les régions de Koulikoro, Sikasso et Ségou. Les individus qui ont fait l’objet d’étude sont des sujets venant de divers horizons de la région et considérés comme apparemment sains. Ainsi, dans chacune des localités des informations ont été collectées auprès des propriétaires 59 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

d’âne grâce à une enquête basée sur un questionnaire. En plus des informations, est effectué sur chacun des 303 ânes un prélèvement de sang au niveau de la veine jugulaire dans des tubes secs afin de récolter le sérum destiné aux analyses biochimiques. Les analyses biochimiques ont concerné les marqueurs tels que les protéines totales, l’albumine, les globulines, le cholestérol, la créatinine et l’urée, des marqueurs hydro-électriques tels que le calcium, le magnésium, le phosphore et les enzymes hépatiques dont l’ASAT/TGO et l’ALAL/TGP. Toutes les analyses biochimiques ont été effectuées avec des kits commerciaux (BIOSYSTEMS® SA). Le protocole expérimental a été décrit par le fabricant. Tout le dosage était colorimétrique et les lectures d’absorbance

ont

été

faites

l’aide

d’un

spectrophotomètre

(BIOSYSTEMS®SA). Les valeurs des paramètres biochimiques sériques obtenues avec les ânes du Mali, sont de même ordre de grandeur que celles trouvées chez les ânes d’ailleurs à quelques exceptions près sauf le glucose et alpha2-globulines. La valeur moyenne du glucose était plus faible et la valeur moyenne d’alpha-2-globulines était plus élevée chez les ânes du Mali comparées aux valeurs trouvées chez les ânes du Burkina Faso, du Sénégal, l’Europe, d’Amérique latine ou des ânes du Moyen-Orient. Les paramètres biochimiques ont varié en fonction du sexe, des groupes d’âges, de la note d’état corporel et de la localisation géographique (région).

60 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

Cette étude a permis la détermination des valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes du Mali. Il serait intéressant d’approfondir cette étude par la caractérisation génétique à travers l’étude de l’ADN mitochondrial afin de mieux caractériser les ânes du Mali. Des recommandations ont été faites dans ce sens. Les valeurs usuelles biochimiques d’intérêt clinique établies vont orienter les cliniciens dans le diagnostic de laboratoire chez les asins et permettre une meilleure prise en charge de cette espèce qui est mal traitée par ses usagers, délaissée par la recherche vétérinaire et qui est pourtant très importante sur le plan socio-économique et culturel.

61 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES

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66 Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali

Annexes Annexe I : Grille de notation de l’état corporel de l’âne

Figure 1 : planche des notes de dos.

Figure 2 : planche des notes de flanc

Source: E. Vall E., Ebangi A.L. Abakar O. (2001). Mise au point d’une grille de notation de l’état corporel des ânes de trait au Nord Cameroun. Revue Elev. Méd. vét. Pays trop

Annexe II: Dentition et âge chez l’âne

Source : DAVEZE J., RAVENEAU A. - LE LIVRE DE L’ANE - ed. Rustica Ŕ 2002

Annexe III : Fiche d’enquête

Projet PAES/UEMOA/EISMV : Caractérisation génétique des races d’ânes d’Afrique de l’Ouest FICHE ANIMAL N° :………………………………………… Localisation Région :…………….Province/département :……….Village:………… Coordonnées Géographiques : X :……………Y :………………… Elevage Nom propriétaire:……………………………………………………………… Taille du troupeau:…………………………………………………………… Composition par races:……………………………………………………… Animal échantillonné Numéro d’identification de l’animal:……………………………………… Appellation local de la race :…………………………………………… Sexe :

Mâle

Femelle

Age:……………………………………………………………………… Utilisation : Transport Travaux champêtres Reproduction Autre :……………………… Affiliation:………………………………………………………………………… Origine:…………………………………………………………………… Etat de santé Hématocrite :………………………………………………… Paramètre morphobiométrique Note d’état corporel (NEC) :……Poids vif : estimé :…….……Pesé :………………… Périmètre thoracique(PT) …………………. Longueur du tronc(LT) :……………….. Hauteur au garrot(HG) :………Longueur du cou(LC) :……………………………… Longueur des oreilles (LOD) :……(LOG) :……Couleur de la robe :……………… Traits majeurs de signalement:………………………………………………………….. ………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………… ……………………………………………………………………………………

SERMENT DES VETERINAIRES DIPLOMES DE DAKAR « Fidèlement attaché aux directives de Claude BOURGELAT, fondateur de l’enseignement vétérinaire dans le monde, je promets et je jure devant mes maîtres et mes aînés :

d’avoir en tous moments et en tous lieux le souci de la dignité et de l’honneur de la profession vétérinaire ; d’observer en toutes circonstances les principes de correction et de droiture fixés par le code de déontologie de mon pays ;

de prouver par ma conduite, ma conviction, que la fortune consiste moins dans le bien que l’on a, que dans celui que l’on peut faire ;

de ne point mettre à trop haut prix le savoir que je dois à la générosité de ma patrie et à la sollicitude de tous ceux qui m’ont permis de réaliser ma vocation.

Que toute confiance me soit retirée s’il advient que je me parjure »

Détermination de quelques valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes (Equus asinus) du Mali Résumé La présente étude a été menée dans l’objectif de déterminer les valeurs usuelles des paramètres biochimiques des ânes de 3 trois régions du Mali à savoir Koulikoro, Sikasso et Ségou. Cette étude a concerné 303 ânes et s’est déroulée dans 9 villages repartis entre les 3 régions. La collecte des informations auprès des propriétaires d’ânes a été faite sur la base d’un questionnaire. Le sang a été prélevé sur un tube sec pour les analyses biologiques. Dans cette étude il ressort qu’à part les valeurs moyenne du glucose qui est plus bas et celui d’alpha-2 globulines qui est élevé, toutes les autres valeurs trouvées avec les ânes du Mali étaient du même ordre de grandeur que celle trouvées chez les ânes du Burkina Faso, du Sénégal, l’Europe, l’Amérique, l’Amérique latine et du Moyen Orient. Les valeurs des marqueurs biochimiques ont varié selon le sexe, les classes d’âges, la note d’état corporel et la localisation géographique (région). Ainsi, la valeur moyenne de la créatinine (p=0,0344) et de l’ALAT (p=0,0079) était supérieure chez les mâles par rapport aux femelles. Il y’a eu une différence significative entre les valeurs du phosphore (p=0,0304) et les protéines totales (p=0,0037) selon les groupes d’âges et une variation significative entre les valeurs moyennes du cholestérol (p=0,0149) et du phosphore (p=0,0007) en fonction de la note d’état corporel. Il a été noté aussi une variation très significative des valeurs moyennes du calcium (p=0,0000), des protéines totales (p=0,0000), le magnésium (p=0,0000), le cholestérol p=(0,0000), le glucose (p=0,0000), la créatinine (p=0,0000), le phosphore (p=0,0000), l’alpha-2 globulines (p=0,0000), la Beta globulines (0,0188) et la Gamma globulines (0,0000) chez les ânes d’une région à une autre. Les résultats de cette étude aideraient les vétérinaires cliniciens à mieux poser le diagnostic des maladies des ânes par une meilleure interprétation des analyses biochimiques.

Mots clés : Mali – ânes – valeurs usuelles - Paramètres biochimiques Yacouba KEMENANY

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