Monografías Infecciosas y Parasitarias 2019

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MEDICINA I N T E R N A PR CTICA d e

p e q u e ñ o s

a n i m a l e s

I N FECCIO SAS Y PARASI TARI AS Mayo - Junio 2019

ALGORITMO Enfs. infecciosas y parasitarias con signos respiratorios, Doroteia Bota, Coralie Bertolani.

APUNTES PRÁCTICOS

Cómo diagnosticar protozoosis digestivas mediante métodos laboratoriales, Ana Montoya, Guadalupe Miró. Cómo realizar el método de Baermann, Rodolfo Oliveira, Marina Domínguez. Cómo realizar el lavado broncoalveolar guiado por broncoscopia en el diagnóstico de enfermedades infecciosas y parasitarias respiratorias, Rodolfo Oliveira, Marina Domínguez, Juan Hernández. Cúando y cómo realizar un hemocultivo y cómo interpretarlo, Marc Ardèvol, Coralie Bertolani.

CASOS CLÍNICOS

Jack Russell de 3 años con giardiosis refractaria, Juan Pedro Barrera, Ana Montoya, Cristina Rupérez, Guadalupe Miró. American Staffordshire Terrier de 10 meses con parálisis posterior y tos crónica, Marina Domínguez.

IMÁGENES DIAGNÓSTICAS

R-X torácicas, endoscopia respiratoria, líquido de lavado broncoalveolar, Juan Hernández. Diff-quick hemáticos, Rodrigo de Vivar, Juan Pedro Barrera. Linfadenopatía, citologías, tinción hematológica, Fabio Nístico, Coralie Bertolani. Respuestas

ESPECIAL DERMATOLOGÍA PARA INTERNISTAS ALGORITMO

Cómo tratar las infecciones por bacterias multirresistentes, Cristeta Fraile, Alejandro Ojeda.

APUNTES PRÁCTICOS

Cómo abordar las infecciones por bacterias multirresistentes, Alejandro Ojeda, José Antonio Olmo, Cristeta Fraile. Cómo tomar una muestra de tejido profundo para cultivo y antibiograma, Laura Ordeix.

IMÁGENES DIAGNÓSTICAS

Signos clínicos e histopatología, Laura Ordeix. Citología por PAAF de dos pústulas, Alejandro Ojeda, José Antonio Olmo, Cristeta Fraile. Respuestas

QUIZ

28 preguntas de autoevaluación Respuestas

VETERINARIA


MEDICINA INTERNA PRÁCTICA DE PEQUEÑOS ANIMALES Periodicidad: bimensual

EDICIÓN IDEANT VETERINARIA (Ideant Publicaciones) (Marketing, Vendes i Noves tecnologies S.L.) CIF B17984253 c/Bonastruc de Porta, 24, 2º-2ª 17001 Girona-España T.: 972 91 37 07

EQUIPO DE TRABAJO Agusti Jover Biboum, edición, contenidos y publicidad Marc Davesa Reixach, servicios tecnológicos y publicidad Marta Davesa Reixach, producción y comunicación Lidia Vilà, atención al veterinario

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DISEÑO Y MAQUETACIÓN Criteri Gràfic, AEDES

DEPÓSITO LEGAL: DL GI 1972-2018 ISSN: 2462-7356


COMITÉ EDITORIAL CARDIOLOGÍA Y RESPIRATORIO Germán Santamarina: LV, PhD, Profesor Titular de Patología Médica en el Departamento de Ciencias Clínicas Veterinarias de la Facultad de Veterinaria de Lugo de la USC, Servicio de Medicina Interna del Hospital Veterinario Universitario Rof Codina. Maria Luisa Suárez: LV, PhD, Profesora Titular de Patología Médica en el Departamento de Ciencias Clínicas Veterinarias de la Facultad de Veterinaria de Lugo de la USC, Servicio de Medicina Interna del Hospital Universitario Veterinario Rof Codina.

Veterinaria. Responsable del Servicio de Neurología/Neurocirugía en el Centro Clínico Veterinario Indautxu de Bilbao. Alejandro Luján: LV, MRCVS Dipl ECVN, Especialista Europeo y del Royal College of Veterinary Surgeons (RCVS), Aúna Especialidades. ONCOLOGÍA Y PATOLOGÍA CLÍNICA Mónica Clemente: LV, PhD, Dipl ACVIM Oncology, Abu Dhabi (Emiratos Árabes Unidos). Pachi Clemente: LV, MS, Dipl ACVIM Oncology, La Merced Oncología Veterinaria.

Alberto Montoya: LV, PhD, Catedrático de Medicina Animal del Departamento de Patología Animal en la Facultad de Veterinaria de Las Palmas, Responsable del Servicio de Medicina Veterinaria de la Universidad de Las Palmas de Gran Canaria.

Juan Francisco Borrego: LV, PhD, Dipl. ACVIM (Oncología) Especialista Diplomado Americano en Oncología. Responsable del Servicio de Oncología. Aúna Especialidades Veterinarias Hospital de Referencia en Valencia.

ENDOCRINOLOGÍA Y NEFROLOGÍA

DIAGNÓSTICO POR IMAGEN

Oscar Cortadellas: LV, PhD, Clínica Veterinaria Germanías.

Xavier Sánchez-Salguero, LV, MSc, PhD, Profesor de Veterinaria en la UdL, Co-Propietario de la Clínica Veterinària 4 Vents

Carolina Arenas: LV, PhD, Dipl. ECVIM-CA (Medicina Interna), MRVCS, Servicio de Medicina Interna, Aúna Especialidades Veterinarias, C/ Algepser 22 - 1, 46980, Paterna Valencia. Dolores Pérez: LV, PhD, Profesor Titular y Acreditada a Catedrática del Departamento de Medicina y Cirugía Animal de la UCM, Jefe del Servicio de Medicina Interna de Pequeños Animales del Hospital Clínico Veterinario de la UCM y Responsable de la Consulta de Endocrinología y Oncología Mamaria. URGENCIAS Y MEDICINA INTENSIVA

Sergio Santana LV, Responsable del Departamento de Diagnóstico por Imagen, Ars Veterinaria, Barcelona MEDICINA FELINA Mª Luisa Palmero: LV, Acreditada AVEPA medicina felina, SpecEaMIS, General Practitioner Certificate in Feline Practice ESVPS. Gattos Centro Clínico Felino. Valentina Aybar: LV, Acreditada AVEPA medicina felina, General Practitioner Certificate in Feline Practice ESVPS. Hospital Felino Ventas.

Manuela Bárcena: LV, Hospital Veterinari Molins Raquel Francés: LV, Responsable del servicio de hospitalización y cuidados intensivos, Aúna Especialidades ENFERMEDADES INFECCIOSAS Guadalupe Miró: LV, PhD, Dipl EVPC, Catedrática de Parasitología y Enfermedades Parasitarias del Departamento de Sanidad Animal de la Facultad de Veterinaria de Madrid y Responsable de la Consulta de Patología Infecciosa y Parasitaria del Hospital Clínico Veterinario de Madrid.

EXÓTICOS Alfonso Moya: LV, Acreditado AVEPA en Nuevos animales de compañía/Exóticos, General Practitioner Certificate in Exotic Animal Practice. Hispalvet Veterinarios. Responsable del servicio de medicina y cirugía de animales exóticos del Hospital Veterinario Guadiamar. NUTRICIÓN Marta Hervera: LV, BVSc, PhD, DECVCN, Clínico especialista en Expert Pet Nutrition.

Coralie Bertolani: LV, Dipl ECVIM, responsable del servicio de medicina interna del Hospital Veterinari Canis Mallorca. GASTROENTEROLOGÍA María Dolores Tabar: LV, Dip ECVIM-CA, Acred. AVEPA Medicina Interna, Hospital Veterinario San Vicente. Artur Font: LV, Dipl. ECVIM-CA, Hospital Ars Veterinaria. NEUROLOGÍA María Ortega: LV MSc Dipl ECVN. Especialista Europea en Neurología

Medicina Interna Práctica de Pequeños Animales - 3


SU M AR I O

Algoritmo

Enfs. infecciosas y parasitarias con signos respiratorios / pág. 6 Doroteia Bota, Coralie Bertolani

Apuntes prácticos

Cómo diagnosticar protozoosis digestivas mediante métodos laboratoriales / pág. 8

Ana Montoya, Guadalupe Miró

Cómo realizar el método de Baermann / pág. 14

Rodolfo Oliveira, Marina Domínguez

Cómo realizar el lavado broncoalveolar guiado por broncoscopia en el diagnóstico de enfermedades infecciosas y parasitarias respiratorias / pág. 19 Rodolfo Oliveira, Marina Domínguez, Juan Hernández

Cúando y cómo realizar un hemocultivo y cómo interpretarlo / pág. 24 Marc Ardèvol, Coralie Bertolani

Casos clínicos

Jack Russell de 3 años con giardiosis refractaria / pág. 28 Juan Pedro Barrera, Ana Montoya, Cristina Rupérez, Guadalupe Miró American Staffordshire Terrier de 10 meses con parálisis posterior y tos crónica / pág. 35

Marina Domínguez

Imágenes diagnósticas

R-X torácicas, endoscopia respiratoria, líquido de lavado broncoalveolar / pág. 46 Juan Hernández

Diff-quick hemáticos / pág. 49 Rodrigo de Vivar, Juan Pedro Barrera Linfadenopatía, citologías, tinción hematológica / pág. 51

Fabio Nístico, Coralie Bertolani

RESPUESTAS / pág. 54

ESPECIAL DERMATOLOGÍA PARA INTERNISTAS Algoritmo

Cómo tratar las infecciones por bacterias multirresistentes / pág. 56

Cristeta Fraile, Alejandro Ojeda

Apuntes prácticos

Cómo abordar las infecciones por bacterias multirresistentes / pág. 57 Alejandro Ojeda, José Antonio Olmo, Cristeta Fraile

Cómo tomar una muestra de tejido profundo para cultivo y antibiograma / pág. 63 Laura Ordeix

Imágenes diagnósticas

Signos clínicos e histopatología / pág. 66

Laura Ordeix

Citología por PAAF de dos pústulas / pág. 69

Alejandro Ojeda, José Antonio Olmo, Cristeta Fraile

RESPUESTAS / pág. 71

Quiz

30 preguntas de autoevaluación / pág. 72 RESPUESTAS / pág. 76

LEYENDAS

Parasitarias

Patología clínica

Diagnóstico por Imagen

Infecciosas

Digestivo

Dermatología

Respiratorio

Neurológico

Terapéutica


#AdiósLeishmaniosis

NUEVA N IÓ INDICAC

IS S O I N A LEISHM Seresto® está indicado frente a la leishmaniosis hasta 8 meses, reduciendo el riesgo de infección por Leishmania infantum a través del flebotomo.


A LG O RI T M O

Enfs. infecciosas y parasitarias con signos respiratorios Doroteia Bota1 DVM, Dipl. ECVIM-CA (Internal Medicine), Coralie Bertolani2 DVM, Dipl. ECVIM-CA (Internal Medicine). (1) Hospital Veterinário do Restelo, Rua Gregório Lopes Lote 1513 - Loja E1400-195 Lisboa, Portugal. (2) Hospital Veterinari Canis Mallorca, C/Agnès de Pacs nº 12, 07010, Palma de Mallorca.

Signos respiratorios

No

¿Signos de vías respiratorias ALTAS? (tos/disnea inspiratoria/afonía)

¿Signos de vías respiratorias BAJAS? (tos/taquipnea/disnea expiratoria)

¿Agudos?

No

Si

No

¿Disnea/cianosis?

No

Ensayo terapéutico: AINEs y/o antibioterapia amplio espectro (amoxicilina/ clavulánico o doxiciclina)

¿Respuesta clínica?

No

Si

Laringoscospia

Laringitis infecciosa Traqueitis infecciosa

Masa laríngea

Antibióticos si infección bacteriana

Citología/biopsia/cultivo Cirugía, drenaje y antibiotico

6 - Medicina Interna Práctica de Pequeños Animales

Si


¿Signos sistémicos? (fiebre, anorexia, cianosis)

No

Análisis coprológico Filaroides hirthi Capillaria aerophila Oslerus osleri Paragonimus kellicotti Angiostrongylus vasorum Migración larvaria (Toxocara sp, Ancylostoma sp)

Sí Oxigenoterapia +/-fluidoterapia

Hemograma, R-X tórax

Patrón intersticial

Patrón bronquial

Patrón alveolar

Derrame pleural

Patrón vascular

Neumonía bacteriana/ fúngica/vírica

Parasitaria

Neumonía por aspiración/ fúngica/parasitaria

Piotórax, hemotórax

Dirofilariosis

Citología, broncoscopia y LBA, biopsia pulmonar; MAT (leptospirosis)

Broncoscopia con LBA, coprológico

Broncoscopia con LBA, Angio test, coprológico

Toracocentesis, citología +/-cultivo +/-pruebas de coagulación, coprológicos

Ecocardiografía, Test Ag Dirofilaria

Si

Infección bacteriana o fúngica

Antibiótico, antifúngico

Filaroides hirthi Capillaria aerophila Oslerus osleri Paragonimus kellicotti Angiostrongylus vasorum Migración larvaria (Toxocara sp, Ancylostoma sp)

Imiticida, doxiciclina

Antiparasitario

LEYENDAS signos clínicos

resultados

diagnóstico

investigación

seguimiento

diagnóstico diferencial

tratamiento

AINEs: antiinflamatorios no esteroideos; LBA: lavado broncoalveolar; MAT: test de microagglutinación

Algoritmo - 7


A P U N T E PR ÁC T I C O

Cómo diagnosticar protozoosis digestivas mediante métodos laboratoriales Ana Montoya, LV, PhD, Dipl. EVPC, Guadalupe Miró LV, PhD, Dipl. EVPC, Catedrática de Parasitología y Enfermedades Parasitarias. Dpto. de Sanidad Animal. Facultad de Veterinaria. Universidad Complutense de Madrid

La realización de un diagnóstico correcto, debe incluir un análisis coprológico seriado (3 - 5 días) ya que muchas formas parásitas se eliminan de forma intermitente. Además, la última deposición no debe refrigerarse para evitar que las formas parasitarias muy lábiles (ej. trofozoítos de Giardia, Tritrichomonas foetus, etc.), no sobrevivan y se dificulte el diagnóstico.

Para la realización de estas técnicas es necesario concentrar las heces (3 - 5 g) mediante homogenización con 20 ml de ac. acético (5%), posterior filtrado y centrifugación. El sedimento resultante se utilizará para la realización de las distintas técnicas. •

Método de Telemann modificado: se procede a la lectura de una gota de sedimento. Con el resto del sedimento se realiza una flotación simple, añadiendo una solución saturada (ej. solución salina saturada) hasta crear un menisco. A continuación se coloca un cubreobjetos y al cabo de 15 - 20 min se deposita sobre un portaobjetos. Esta flotación es muy útil para la detección de ooquistes de coccidios (Figura 2).

Técnica de FLOTAC: al sedimento del tubo se le añaden 10 ml de la solución de flotación y se homogeiniza. El aparato FLOTAC-100 se rellena con la suspensión y se centrifuga. Posteriormente se observa bajo el microscopio óptico. Esta técnica incrementa la sensibilidad del diagnóstico.

Método de MIF: al sedimento del tubo se añade la solución de MIF y tras reposar (mínimo 6 horas) se observa al microscopio óptico una muestra de la interfase. Esta técnica permite la detección de G. duodenalis (Figura 3).

La pauta para realizar un análisis coprológico de forma adecuada debe incluir: 1º) Análisis macróscopico para apreciar las características organolépticas de las heces (consistencia, color, presencia de moco y/o sangre) y ayudar en el diagnóstico diferencial. 2º) Observación microscópica directa de una extensión en fresco de heces, que consiste en suspender en un portaobjetos una pequeña cantidad de heces con agua o solución salina fisiológica. Si las heces son diarreicas se puede extender dicha muestra con la mano enguantada sobre el portaobjetos (Figura 1). A continuación se coloca un cubreobjetos y se observa al microscopio óptico. Esta técnica resulta especialmente útil cuando se están eliminando una elevada carga de formas parásitas con las heces. En caso de observar trofozoítos piriformes hay que diferenciar Giardia de T. foetus. Los trofozoítos de T. foetus presentan una motilidad progresiva mientras que el movimiento de Giardia se asemeja al de una hoja cayendo al suelo. 3º) Métodos de concentración Los métodos de concentración incrementan la sensibilidad del análisis coprológico, y en carnívoros se utilizan las técnicas: a) Telemann modificado, b) FLOTAC y c) MIF (mertiolato-yodoformalina). 8 - Medicina Interna Práctica de Pequeños Animales

4º) Otras técnicas de diagnóstico:

Inmunodiagnóstico El diagnóstico de Cryptosporidium spp. y G. duodenalis se puede realizar mediante técnicas inmunológicas como la inmunocromatografía, ELISA o inmunofluorescencia indirecta (IFD). Esta última se considera de elección para el diagnóstico de Giardia; se realiza utilizando anticuerpos fluorescentes


específicos frente a los quistes de Giardia y ooquistes de Cryptosporidium, lo que permite la visualización de los mismos al microscopio de fluorescencia (Figura 4).

Cultivo celular Las técnicas de cultivo resultan especialmente útiles para la detección de T. foetus que se puede aislar en medios de cultivo específicos o comerciales (InPouch TF-feline®, Biomed Diagnostics), en los que no crecen otros protozoos como Pentatrichomonas hominis ni Giardia (Figura 5a y 5b).

Figura 1: extensión directa en portaobjetos de heces diarreicas 10 - Medicina Interna Práctica de Pequeños Animales

Diagnóstico molecular La detección directa del parásito por métodos moleculares incrementan la sensibilidad del diagnóstico, y suelen utilizarse de forma rutinaria para el diagnóstico de tricomonosis. Además, en el diagnóstico de otras protozoosis digestivas, estas técnicas, permiten identificar la especie, e incluso caracterizar el aislado, lo cual resulta muy útil en estudios epidemiológicos.


CASO CLÍNICO

Jack Russell de 3 años con giardiosis refractaria Juan Pedro Barrera DVM, Inv. Predoc., Ana Montoya DVM, PhD, Dipl. EVPC, Cristina Rupérez DVM, Prof. asoc., Guadalupe Miró DVM, PhD, Dipl. EVPC, Catedrática de Parasitología y Enfermedades Parasitarias. Dpto. de Sandidad Animal. Facultad de Veterinaria. Universidad Complutense de Madrid.

Resumen “Tango” es un Jack Russell Terrier, macho, castrado con signos clínicos de inflamación intestinal crónica de origen inespecífico y caquexia desde hace 4 meses. Se remite a la Consulta de Digestivo del HCVC por presentar diarreas crónicas que no responden a los tratamientos utilizados y ser negativos los análisis coprológicos. En dicha consulta se realiza un análisis coprológico seriado (Método de Teleman y MIF) y se confirma el diagnóstico de infección por Giardia duodenalis. La pauta de tratamiento que se establece es la combinación de metronidazol, albendazol, prednisolona, famotidina y dieta Advance® Colitis-diabetes. En las dos primeras revisiones no se observó mejoría alguna, y se remite a la Consulta de Patología Infecciosa y Parasitaria del mismo Hospital. Se realiza de nuevo un análisis coprológico que sigue siendo positivo, con la presencia de quistes de G. duodenalis, algunos en proceso de degeneración pero otros viables. Se retira toda la medicación previa y se pauta febantel a la dosis de 20 mg/kg/día durante 5 días consecutivos en combinación con praziquantel y pirantel. Después de 5 meses con cuadros digestivos y caquexia, “Tango” experimentó una mejoría clínica muy favorable con: disminución del número de deposiciones, aumento de peso (1 kg) y ausencia de tenesmo, sangre y/o moco en las heces. A los quince días de finalizar el tratamiento, los resultados de los análisis coprológicos fueron negativos.

Historia y Examen físico “Tango” es un perro macho de la raza Jack Russell Terrier, de 3 años de edad, castrado, de 4,5 kg de peso. En la anamnesis el propietario reporta que fue adquirido en un criadero con 2 meses de edad, vive en un piso en Madrid y no convive con otros animales. La vacunación incluía: Antirrábica (Nobivac® Rabia, MSD), Heptavalente (Maxivac Hepta®, Esteve) y frente a Leishmania (Canileish®, Virbac). 28 - Medicina Interna Práctica de Pequeños Animales

“Tango” presentaba dolor moderado a la palpación abdominal, así como inapetencia, caquexia grave (condición corporal de 1 sobre 9) y mucosas pálidas, siendo el resto de la exploración normal. También presentaba tenesmo con numerosas deposiciones diarias, en forma de diarrea de intestino delgado, y heces que alternaban el color amarillento y marrón oscuro con presencia de moco y sangre fresca (Figura 1). Los propietarios facilitan el informe de la clínica veterinaria a la consulta de especialidad de Digestivo del HCVC con la siguiente información: analítica sanguínea con anemia no regenerativa (hematíes 4,36x106 M/µl, hematocrito 28,2%, hemoglobina 9,8 g/dl, MCV 64,7 fl, MCH 22,5 pg, MCHC 34,8 g/dl y trombocitopenia leve 152 K/µl, hipoproteinemia 3,8 g/ dl) y un test inmunocromatográfico rápido para la detección de anticuerpos anti-E. canis, análisis coprológico, ambos negativos. Además, aportan los resultados de una endoscopia con toma de muestras de mucosa de estómago y duodeno, en la que se describe en la lámina propia de la mucosa gástrica, una discreta presencia de linfocitos y células plasmáticas; con dilatación, engrosamiento y aplanamiento de vellosidades, siendo la inflamación discreta, pero con signos de cronicidad. No observándose áreas de ulceración ni fibrosis. El diagnóstico histopatológico es de: leve gastritis linfoplasmocítica crónica y moderada. Los tratamientos previos recibidos en la Clínica Veterinaria tras los resultados obtenidos fueron: metronidazol (20 mg/kg cada 12h/v.o/10 días), prednisolona (2 mg/kg/ cada 12h/v.o/ 4 días), omeprazol (1 mg/kg cada 24 h/v.o), azatioprina (12,5 mg/kg cada 24 h/v.o) y dieta Entero-chronic® (Bioibérica).

Diagnóstico diferencial A la vista de los resultados descritos se barajan los siguientes diagnósticos diferenciales: hipersensibilidad medicamentosa, intolerancia alimentaria, enfermedad Inflamatoria Intestinal (IBD) y gastroenteritis de etiología bacteriana, vírica y/o parasitaria.


Figura 1: heces esteatorréicas de “Tango” el primer día que acudió a la Consulta de Patología Infecciosa y Parasitaria.

Plan diagnóstico

Pronóstico

Tras realizar de nuevo la exploración física, siendo idéntica a lo registrado en su historia clínica, en la Consulta de Digestivo se solicitó una nueva analítica sanguínea con perfil bioquímico y hematológico, así como un análisis coprológico seriado, incluyendo extensión en fresco de heces (Figura 2) y la Técnica de sedimentación de Telemann y MIF.1

El pronóstico de la infección por G. duodenalis suele ser favorable. El curso de la infección por este parásito, está relacionado con la madurez del sistema inmunológico del hospedador; pudiendo haber en un grupo de individuos un 100% de prevalencia y una mortalidad del 3%.2 En este caso, el pronóstico de “Tango” era reservado debido a la gran pérdida de peso que presentaba y al proceso inflamatorio digestivo crónico.

Diagnóstico definitivo La anemia había empeorado, presentando valores de hematíes de 3,35x106 M/µl, hematocrito de 23,9% y hemoglobina de 7,5 g/dl. En la extensión en fresco de las heces se observó la presencia de quistes de G. duodenalis viables (Figura 3.a), y otros en proceso de degeneración (Figura 3.b), que se confirmaron mediante la técnica de MIF.

Tratamiento La pauta de tratamiento establecida a partir de este momento fue: metronidazol (20 mg/kg/ cada 12 h/v.o/ durante 10 días), albendazol (25 mg/kg/ cada 12 h/v.o/ durante 2 días), prednisolona (2 mg/kg/ cada 12h/v.o/ durante 4 días), famotidina (10 mg/kg/ cada 12h/v.o/ durante 4 días), sulfasalazina (25 mg/kg/ cada 12h/v.o/ durante 4 días) y Dieta Advance® Colitis-diabetes. 30 - Medicina Interna Práctica de Pequeños Animales

Seguimiento En la primera revisión después de 5 días, el paciente presentaba una mejoría clínica con unos valores de hematíes 6,23x106 M/µl, hematocrito de 42,8 % y hemoglobina 13,8 g/dl. En la exploración física, no presentaba dolor abdominal a la palpación, ni linfadenomegalia, pero las deposiciones continuaban siendo abundantes (10 al día), y las heces eran de consistencia blanda y de color amarillento, con presencia de mucosidad y trofozoítos de G. duodenalis. Presenta una pérdida de peso de 600 gramos (3,9 kg). En la siguiente revisión, transcurridos otros 5 días, “Tango” continuaba sin aumentar de peso y presentando tenesmo, así como una pequeña cantidad de sangre fresca y mucosidad en las heces. De nuevo se detectaron en las heces trofozoítos de G. duodenalis.


IMÁGENES DIAGNÓSTICAS

R-X torácicas, endoscopia respiratoria, líquido de lavado broncoalveolar Juan Hernández DVM, MSc, Dipl. ACVIM, Dipl. ECVIM-CA (Internal Medicine). École National Vétérinaire de Nantes, Francia.

Pregunta 1 Radiografía torácica de un perro mestizo de 4 años presentado por tos y fatiga importante durante 10 días. ¿Qué descripción radiográfica es la más representativa? a. Patrón peri-hiliar b. Patrón alveolar cráneo-ventral. c. Patrón intersticial difuso. d. Patrón alveolar periférico predominantemente caudo-dorsal.

46 - Medicina Interna Práctica de Pequeños Animales


Pregunta 2 Fotografía de endoscopia respiratoria de un perro Pastor Alemán de 2 años presentado por tos con esputo sanguíneo. Se observa una pequeña hemorragia superficial. ¿Qué hipótesis parece poco probable? a. Una torsión del lóbulo pulmonar. b. Intoxicación con anti-vitamina K c. Trombocitopenia significativa. d. Una angiostrongilosis.

Pregunta 3 Aspecto macroscópico del líquido de lavado broncoalveolar en un Staffordshire Bull Terrier de 8 años presentado por tos y hemoptisis. ¿Qué hipótesis parece poco probable? a. Tumor pulmonar b. Trombosis pulmonar. c. Angiostrongilosis d. Neumonía eosinofílica

Artículo - 47


QUIZ

28 preguntas de autoevaluación Algoritmo

Enfs. infecciosas y parasitarias con signos respiratorios, Doroteia Bota, Coralie Bertolani. Pregunta 1 ¿Qué agente infeccioso no se puede diagnosticar por análisis fecal? a. b. c. d.

Dirofilaria immitis Angiostrongylus vasorum Oslerus osleri Paragonimus kellicotti

Pregunta 2 ¿Cuál es la prueba de elección para el diagnóstico de la Leptospirosis? a. b. c. d.

Ig G Ig M en sangre PCR en orina PCR en sangre MAT

Pregunta 3 ¿Cuál de estas pruebas no es de utilidad para el diagnostico de A. vasorum? a. b. c. d.

Electroforesis de proteínas en orina PCR en el liquido del LBA (lavado broncoalveolar) Citologia del LBA Test de antígeno sanguíneo.

Pregunta 4 ¿Cuál de estas enfermedades infecciosas puede causar coagulopatía? a. b. c. d.

Toxoplasmosis Crenosoma vulpis Angiostrongilosis Bordetellosis

Apuntes prácticos Cómo diagnosticar protozoosis digestivas mediante métodos laboratoriales, Ana Montoya, Guadalupe Miró. 72 - Medicina Interna Práctica de Pequeños Animales

Pregunta 5 Indica cuál/es se considera la técnica de elección para el diagnóstico de la infección por Giardia duodenalis. a. b. c. d.

Técnica de FLOTAC Técnica de Inmunofluorescencia directa Cultivo celular Diagnóstico molecular

Pregunta 6 Indica para el diagnóstico de qué parasitosis es fundamental hacer un examen directo microscópico con heces sin refrigerar: a. b. c. d.

Cryptosporidiosis Giardiosis Tricomonosis Cocccidiosis

Cómo realizar el método de Baermann, Rodolfo Oliveira, Marina Domínguez. Pregunta 7 ¿Qué parásito respiratorio no conseguimos fácilmente por el método de Baermann? a. b. c. d.

identificar

Angiostrongylus vasorum Aerulostrongylus abstrusus Crenosoma vulpis Oslerus Osleri

Pregunta 8 ¿En qué situaciones podemos tener resultados falsos negativos por el método de Baermann? a. b. c. d.

El tiempo de reposo del material ha sido insuficiente Excreción intermitente de los parásitos pulmonares Infección pre-patente Todas las anteriores

Cómo realizar el lavado broncoalveolar guiado por broncoscopia en el diagnóstico de enfermedades infecciosas y parasitarias respiratorias, Rodolfo Oliveira, Marina Domínguez, Juan Hernández.


Pregunta 9

Pregunta 14

¿Qué porcentaje de liquido instilado es recuperado durante el lavado bronco-alveolar guiado por endoscopia?

¿Cuál es el principio activo de elección en pequeños animales, en el caso de la infección por Giardia duodenalis? a. Metronidazol. b. Albendazol. c. Fenbendazol. d. Doxiciclina.

a. b. c. d.

80 - 90% 70 - 85% 40 - 60% 10 - 20%

Pregunta 10 ¿Cómo es el infiltrado celular observado en la citología de lavado bronco-alveolar cuando existe una bronconeumonía bacteriana? a. Mayoritariamente neutrofílico y linfocítico b. Mayoritariamente eosinofílico y macrofágico c. Mayoritariamente neutrofílico y macrofágico d. Mayoritariamente linfocítico y macrofágico

Cuándo y cómo realizar un hemocultivo y cómo interpretarlo, Marc Ardèvol, Coralie Bertolani. Pregunta 11 Al realizar un hemocultivo (marcar la opción verdadera): a. No es necesario utilizar material estéril durante el procedimiento. b. Pondremos el máximo volumen de sangre posible en cada muestra/bote de medio de cultivo. c. La sensibilidad de la prueba aumenta con el volumen de sangre extraído y el número de muestras obtenido. d. El volumen de sangre a extraer es independiente del tamaño del animal. Pregunta 12 Al solicitar un hemocultivo (marcar la opción verdadera): a. Sólo lo plantearemos ante sospecha de enfermedades bacterianas. b. muestra se preservará en refrigeración, si es posible, hasta que se envíe al laboratorio. c. En animales hospitalizados podemos aprovechar los catéteres para las extracciones de sangre. d. Si es posible, hay que obtener las muestras en pacientes sin antibioterapia ya que ésta puede inhibir el crecimiento bacteriano y favorecer un resultado falso negativo.

Casos Clínicos Jack Russell de 3 años con giardiosis refractaria, Juan Pedro Barrera, Ana Montoya, Cristina Rupérez, Guadalupe Miró Pregunta 13 ¿Por qué es importante al realizar el análisis coprológico, el empleo de al menos 3 muestras de heces de días consecutivos? a. Porque hay parásitos cuya eliminación en las heces se produce de forma intermitente, pudiéndose no detectar en una sola muestra procesada. b. Para aumentar la sensibilidad de la técnica de análisis coprológico. c. Para aumentar la especificidad de la técnica de análisis coprológico. d. Son correctas las opciones a y b

Pregunta 15 ¿Cuál es la técnica de elección con mayor sensibilidad y especificidad en el diagnóstico de Giardia duodenalis? a. Inmunocromatografía. b. Inmunofluorescencia directa. c. Microscopía óptica. d. Técnica de Baermann. Pregunta 16 En cuanto al diagnóstico clínico y epidemiológico, ¿Cuáles de los siguientes puntos constituyen factores de riesgo para la infección por Giardia duodenalis? a. Zonas húmedas, donde se acumule agua en forma de charcos. b. Animales adultos, mayores de un año de edad. c. Coprofagia. d. a y c son correctas.

American Staffordshire Terrier de 10 meses con parálisis posterior y tos crónica, Marina Domínguez Pregunta 17 ¿Qué signos clínicos son más frecuentes en la infección por A. vasorum? a. b. c. d.

Neurológicos Hemorrágicos Cardiorespiratorios Digestivos

Pregunta 18 ¿Qué porcentaje de perros con infección por A. vasorum presentan una diátesis hemorrágica? a. 35% b. 45% c. 55% d. 65% Pregunta 19 ¿Cuál es el porcentaje de sensibilidad del método Baermann et del test rápido AngioDetect® en el diagnóstico de A. vasorum en perros? a. 55% b. 75% c. 85% d. 95% Pregunta 20 ¿Qué métodos diagnósticos deben ser utilizados en caso de alta sospecha clínica y otras pruebas negativas? a. Método ELISA por antígenos y anticuerpos b. Método Baerman y AngioDetect® c. PCR en el lavado broncoalveolar y ELISA anticuerpos d. PCR en sangre y ELISA por antígenos Imágenes diagnósticas. - 73


INSTRUCCIONES PARA LA PUBLICACIÓN EN LA REVISTA MEDICINA INTERNA PRÁCTICA DE PEQUEÑOS ANIMALES CARACTERÍSTICAS GENERALES Times new roman, 12, a doble espacio. Las palabras en inglés y en latín deberán ir en cursiva. Los decimales son con comas y no con puntos. Los números con varias cifras se anotarán de la siguiente forma: 10, 100, 1 000, 10 000, 100 000, 1 000 000 agrupando las cifras de tres en tres y con un espacio de separación. Se dejará un espacio entre la cifra y las unidades: 1 kg o 3 mg/dl o 3,75 g/kg excepto en los porcentajes: 75%. Las razas de perros se escribirán en mayúsculas: Cocker Spaniel, Labrador. Se usará la abreviatura “l” en minúscula para litro: 3 mg/dl. Las pautas de administración serán anotadas de la siguiente manera: cada 8 h o TID, cada 12 h o BID, cada 24 h o SID. Se deberán incluir los permisos necesarios para reproducir material publicado previamente o para usar imágenes. Originalidad Todo el material presentado para publicación no puede haberse publicado en otra revista nacional o internacional. Ética El material presentado para publicar podrá ser rechazado por motivos éticos, especialmente cuando los estudios descritos o casos presentados hayan sido motivo de sufrimiento injustificado para los animales.

Las figuras (imágenes, tablas y gráficos) deben tener formato JPG o TIFF y deben ser entregadas como archivos separados. Los vídeos deben tener formato MP4 y duración libre, como máximo de 10 minutos. Los textos a pie de imagen y títulos de las tablas y gráficos, además, deben incluirse al final del manuscrito y deben ir numeradas en orden de aparición en el texto según la figura a la que pertenezcan. APUNTES PRÁCTICOS (AP) Texto breve describiendo un procedimiento clínico práctico relacionado con el diagnóstico, tratamiento, manejo o interpretación de una condición patológica determinada. Deberá incluir 5 FIGURAS (imágenes de calidad superior a 600 píxels o peso total de 1MB en formato JPG o TIFF, vídeos en MP4 de duración libre de menos de 10 minutos, tablas, gráficos y/o ilustraciones). Tendrán una extensión de como máximo de 500 palabras. Además se confeccionarán 2 Preguntas de autoevaluación para evaluar la comprensión de los aspectos clave del trabajo. Las 2 preguntas serán multiopción a, b, c y d y una respuesta razonada con un máximo de 50 palabras. Algunos ejemplos pueden ser: “Cómo realizar el abordaje inicial de una herida”, “Cómo realizar una toracocentesis”, “Cómo colocar un tubo de toracostomía”, “Cómo hacer el test de estimulación de ACTH”, “Cómo tratar una herida por segunda intención”, “Cómo calcular el tamaño del corazón radiológicamente”, etc. A discreción del autor, en el apunte práctico pueden figurar referencias bibliográficas.

Envío de material

ALGORITMOS (ALG)

El envío del material para su revisión por parte del comité editorial se realizará a través de la dirección de correo electrónico: agusti@ ideantveterinaria.com

Estructura y finalidad

INSTRUCCIONES ESPECÍFICAS PARA CADA FORMATO CASOS CLÍNICOS (CC) Casos clínicos inéditos de interés clínico o científico, relativas a la especie canina, y acerca de una especialidad de medicina interna acorde a la monografía correspondiente. 1.- Constará de la siguiente estructura: Resumen, Historia y Examen físico, Diagnóstico diferencial, Plan diagnóstico y diagnóstico definitivo, Tratamiento, Pronóstico, Seguimiento, Discusión, Bibliografía y Preguntas de autoevaluación (4 preguntas para evaluar la comprensión de los aspectos clave del trabajo). Las preguntas de autoevaluación serán multiopción a, b, c y d con 4 respuestas posibles y con una respuesta correcta razonada con un máximo de 50 palabras. 2.- Deberá incluir entre 5 y 10 FIGURAS (imágenes de calidad superior a 600 píxels o peso total de 1MB en formato JPG o TIFF, vídeos en MP4 de duración libre de menos de 10 minutos, tablas y/o gráficos en EXCEL o WORD editables). Dichos elementos se nombrarán y enumerarán en el texto como Figura 1, Figura 2, Tabla 1, Tabla 2, etc. 3.- Su extensión máxima, incluyendo todos los elementos del texto, no debe ser superior a 2 000 palabras (exceptuando bibliografía). Bibliografía Toda frase que proceda de una referencia publicada debe ir acompañada de una cita bibliográfica. Las citas se ordenarán y numerarán al final del artículo por orden de aparición en el texto. En el texto, los números de las citas se colocarán después de la frase en formato superíndice. Revistas Nombrar a todos los autores hasta seis. Si son más de seis autores, nombrar a los tres primeros y añadir et al. Ej: Simone Schuller; Leptospirosis. En: Ettinger SJ, Feldman EC, 8th edn: Textbook of Veterinary Internal Medicine, Misouri: Saunders Elsevier; 2017: pp 939 – 944. Libros Greene E. C.; Leptospirosis. En: Infectious Diseases of the Dog and Cat. 4th edn. Ed C. E. Greene. Saunders Elsevier; 2012, St Louis, MO, USA. pp 431 – 447. Figuras y vídeos 78 - Medicina Interna Práctica de Pequeños Animales

Un Algoritmo (ALG) es un conjunto de recuadros interrelacionados mediante líneas o flechas que representan un flujo de decisiones relativas a un proceso de diagnóstico, tratamiento, manejo o cualquier otro procedimiento clínico parcial o totalmente y que está organizado de la forma más práctica y sintética posible. Este ALG debe tener como objetivo ayudar a facilitar la protocolización de los procedimientos clínicos, la minimización de errores así como aumentar la rapidez y eficacia en la toma de decisiones de los veterinarios. Además se confeccionarán 4 Preguntas de autoevaluación para evaluar la comprensión de los aspectos clave del trabajo. Las preguntas de autoevaluación serán multiopción con 4 respuestas posibles a, b, c y d y con una respuesta correcta razonada con un máximo de 50 palabras. Claves de interpretación El autor construirá el ALG identificando cada recuadro con las siguientes claves o iniciales segun se refiera dicho recuadro a: (Dd)

Diagnóstico diferencial

(Dgn)

Diagnóstico

(Tt)

Tratamiento

(Inv)

Investigación

(Res)

Resultados

(Sig)

Signos clínicos

(Seg)

Seguimiento

Además se podrán crear recuadros adicionales incorporando: “Sí”, “No”, preguntas, situaciones clínicas, etc. Texto de apoyo (opcional) Opcionalmente, se escribirá un breve texto de apoyo de 250 palabras como máximo, para mayor comprensión del ALG. IMAGENES DIAGNÓSTICAS (ID) Imagenes de interés diagnóstico, clínico o científico en general acerca de una patología, lesión, síntoma, característica o condición. Para cada imagen, el autor formulará una pregunta multiopción con cuatro respuestas posibles: a, b, c y d, y una respuesta razonada, con un máximo de 50 palabras. A cada autor se le solicitarán 4 imágenes con sus correspondientes 4 preguntas multiopción (a, b, c y d), todas ellas pertenecientes a la temática de la monografía.


PRÓXIMA MONOGRAFÍA MEDICINA INTERNA PRÁCTICA DE PEQUEÑOS ANIMALES MEDICINA FELINA - JULIO - AGOSTO 2019 SUMARIO Algoritmos Hematuria felina, Félix Vallejo Diagnóstico de FeLV, Albert Lloret

Apuntes Prácticos Cómo sedar gatos para procedimientos diagnósticos, Salvador Cervantes Cómo tomar la presión arterial a un gato, Carolina Arenas Cómo realizar proyecciones, Antonio Peña Cómo manejar un gato obstruído, Marta Planellas Cómo diagnosticar y manejar la proteinuria felina, Oscar Cortadellas Cómo realizar una laparotomía exploratoria, Juanjo Vega

Casos clínicos Gastritis ulcerativa aguda secundaria a herpesvirus felino, María Luisa Palmero Hipercobalaminemia en linfoma hepático, Valentina Aybar

Imágenes diagnósticas Estreñimiento vs megacolon, Esther Sánchez Resorción dental, Diego Esteban Cardiología, Javier Engel Dermatología, Alberto Barneto, Llibertat Real

Quiz

SUSCRIPCIÓN ANUAL A “MEDICINA INTERNA PRÁCTICA DE PEQUEÑOS ANIMALES” de IDEANT VETERINARIA: 80€ (incluye 6 números en formato papel y acceso a todos los números anteriores en formato digital) Formas de pago: - Tarjeta bancaria (VISA o Mastercard) en la página web www.webdeveterinaria.com/tienda - Domiciliación bancaria: enviar email a info@ideantveterinaria.com, con el nombre del centro, dirección de envío y datos bancarios Telf. +34 972 913 707, info@ideantveterinaria.com, www.webdeveterinaria.com



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