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artigo inédito

Avaliação quantitativa de S. mutans e C. albicans em portadores de aparelhos disjuntores tipo Haas e Hyrax Matheus Melo Pithon1, Rogério Lacerda dos Santos2, Wagner Sales Alviano3, Antonio Carlos de Oliveira Ruellas4, Mônica Tirre de Souza Araújo4

Objetivo: avaliar, comparativamente, o número colônias de Streptococus mutans e Candida albicans em paciente com aparelho disjuntor tipo Hass e Hyrax, antes e após instalação.

Métodos: a amostra constituiu-se de 84 pacientes a serem tratados ortodonticamente. Todos pacientes possuíam indicação de disjunção da sutura palatina mediana. Aleatoriamente, os pacientes foram divididos em: Grupo Ha, os quais utilizaram disjuntor tipo Haas (n=42); e Grupo Hy, os quais utilizaram disjuntor tipo Hyrax (n=42). Inicialmente, e passado período de trinta dias após instalação dos disjuntores, foi realizada coleta da saliva desses pacientes. A saliva foi, então, diluída e procedeu-se a semeadura em meio Mitis Salivarius e CHROMagar para crescimento do S. mutans e C. albicans, respectivamente.

Resultados: os resultados evidenciaram que houve diferença estatisticamente significativa entre os grupos HA e HY (p<0.05) para Streptococcus mutans e Candida albicans. O aparelho Hass propiciou maior proliferação de S. mutans e C. albicans, comparado ao aparelho Hyrax.

Conclusões: instalação dos aparelhos propiciou maior acúmulo de microrganismos..

Palavras-chave: Ortodontia. Aparelhos ortodônticos. Streptococcus mutans. Candida albicans. Técnica de expansão palatina.

Professor de Ortodontia, Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia. Doutor em Ortodontia ,Universidade Federal do Rio de Janeiro. Diplomado pelo Board Brasileiro de Ortodontia e Ortopedia Facial – BBO.

Como citar este artigo: Pithon MM, Santos RL, Alviano WS, Ruella ACO, Araújo MTS. Quantitative evaluation of S. mutans and C. albicans in patients with appliances expander type Haas and Hyrax. Dental Press J Orthod. 2012 May-June;17(3):33.e1-6.

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Professor de Ortodontia, Universidade Federal de Campina Grande. Doutor em Ortodontia, Universidade Federal do Rio de Janeiro.

Enviado em: 10/11/2008 - Revisado e aceito: 16/06/2009

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Doutor em Ortodontia, Universidade Federal do Rio de Janeiro.

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Professor de Ortodontia, Universidade Federal do Rio de Janeiro. Doutor em Ortodontia, Universidade Federal do Rio de Janeiro.

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© 2012 Dental Press Journal of Orthodontics

» Os autores declaram não ter interesses associativos, comerciais, de propriedade ou financeiros, que representem conflito de interesse, nos produtos e companhias descritos nesse artigo.

Endereço para correspondência: Matheus Melo Pithon Av. Otávio Santos, 395 – sala 705 – CEP: 45020-750 – Vitória da Conquista/BA E-mail: matheuspithon@gmail.com

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Avaliação quantitativa de S. mutans e C. albicans em portadores de aparelhos disjuntores tipo Haas e Hyrax

INTRODUÇÃO A maioria dos dispositivos utilizados no tratamento ortodôntico dificulta a higienização adequada, alterando deste modo a quantidade e a composição da microbiota bucal. Vários estudos já reportaram a direta associação entre a presença de bandas19,25,39, braquetes13,19,32,43 e outros aparelhos5,29 com um maior acúmulo de biofilme e, consequentemente, uma maior incidência de desmineralização do esmalte e até lesões cariosas31,34,36.

O processo de formação desse biofilme inicia-se imediatamente após a instalação dos aparelhos ortodônticos, com a fixação das bactérias colonizadoras primárias, em geral estreptococos, e evolui culminando com o surgimento de bacilos Gram-negativos anaeróbios estritos6. Os estreptococos estão associados a processos patológicos que variam desde cáries dentárias, em pacientes com pobre higienização bucal e dieta rica em açúcares fermentáveis, até bacteremias, quando da remoção das bandas ortodônticas. A microbiota anaeróbia estrita está associada, sobretudo, a quadros de doença periodontal6,29,32.

Um aparelho fixo frequentemente utilizado em crianças e adolescentes nos consultórios ortodônticos é o disjuntor palatal, utilizado para se corrigir mordidas cruzadas posteriores esqueléticas ou apenas para a expansão da arcada superior nos casos de atresia maxilar.

Existe na literatura uma infinidade de aparelhos utilizados para tal finalidade4,9,10,12,23,26,37, entretanto os mais utilizados e difundidos são o aparelho tipo Hass preconizado por Hass em 196122 e o aparelho tipo Hyrax8,18.

O aparelho tipo Hass possui um componente de resina acrílica que permanece em íntimo contato com o palato por um período mínimo de, aproximadamente, quatro meses. Clinicamente, quando da remoção desse aparelho, é observado o acúmulo de um biofilme espesso sob o componente acrílico.

Com o objetivo de se conseguir resultados favoráveis, como os alcançados com o aparelho tipo Hass, no entanto sem o acúmulo de biofilme, Biederman desenvolveu o aparelho Hyrax, que possui as mesmas indicações do Hass, entretanto, com apenas apoio nos dentes, sem acrílico. Em virtude de ausência do apoio acrílico, hipoteticamente, os aparelhos tipo Hyrax teriam menor acúmulo de biofilme e, por conseguinte, de S. mutans e C. albicans. Na tentativa de confirmar essa hipótese, o presente trabalho teve

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como objetivo avaliar quantitativamente o número de colônias de C. albicans e S. mutans antes e após instalação desses aparelhos.

Material e Métodos A condução desse estudo atendeu às exigências do Comitê de Ética em Pesquisa da Universidade Federal do Rio de Janeiro. A participação dos voluntários foi possível após esclarecimentos a respeito da pesquisa e da expressa concordância dos responsáveis, que se deu pela assinatura dos termos de consentimento livre e esclarecido.

A amostra constituiu-se de um total de oitenta e quatro pacientes, a serem tratados ortodonticamente nas clínicas do curso de mestrado em Ortodontia da Universidade Federal do Rio de Janeiro. Os pacientes possuíam idades variando entre 13 anos e 4 meses e 15 anos e 9 meses, sendo 42 do sexo feminino e 42 do sexo masculino. A seleção dos pacientes se deu através da necessidade de tratamento ortodôntico associado à expansão da maxila em casos de mordida cruzada posterior uni ou bilateral, e em casos de maxila atrésica sem a ocorrência de mordidas cruzadas.

Aparelhos utilizados Os aparelhos disjuntores foram confeccionados pelo mesmo operador. Apresentaram diferenças quanto ao desenho (relacionado à anatomia da região palatina do paciente) e à quantidade de ativações (relacionada ao plano de tratamento) (Fig. 1, 2).

Instalação dos aparelhos Previamente à instalação dos aparelhos, os pacientes foram orientados quanto ao correto controle de placa bacteriana.

Uma vez realizada a orientação, os disjuntores foram cimentados aos primeiros pré-molares e primeiros pré-molares superiores com cimento de ionômero de vidro (Vidrion C, Juiz de Fora, Brasil), sendo o acompanhante orientado quanto à forma de ativação.

A ativação, por sua vez, estava condicionada à necessidade de cada paciente.

Grupo avaliados Dois grupos foram formados para serem avaliados: Grupo Ha: fez uso do aparelho tipo Haas (n=42); Grupo Hy: fez uso do aparelho tipo Hyrax (n=42).

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Figura 1 - Paciente pertencente ao grupo Ha, utilizando disjuntor tipo Haas.

Figura 2 - Paciente pertencente ao grupo Hy, utilizando disjuntor tipo Haas.

Coleta da saliva Previamente à instalação do disjuntor e passados 30 dias pós instalação, foi realizado coleta da saliva.

Foram realizadas coletas salivares não estimuladas em recipientes plásticos, esterilizados, com tampa, instruindo o paciente para que excretasse sua saliva dentro do recipiente até que o volume coletado fosse de aproximadamente 3ml. O frasco contendo saliva foi transportado em recipiente térmico com gel; saliva foi processada em até 2 horas após a coleta. A mesma amostra salivar foi utilizada tanto para o isolamento de C. albicans como para o isolamento de S. mutans.

homogeneizadas em agitador magnético. A partir dessa diluição, 0,1ml de cada amostra foi semeada em ágar Sabouraud Dextrose, e incubada a 300C por um período de 48 horas até 7 dias. As colônias desenvolvidas no meio de cultura foram identificadas por suas características morfológicas macroscópicas e microscópicas.

A contagem estimada do número de unidades formadoras de colônias (UFC), foi realizada multiplicando-se o número de colônias pelo fator de diluição.

Tratamento estatístico As análises estatísticas foram realizadas com auxílio do programa SPSS 13.0 (SPSS Inc.,Chicago, EUA). O número de unidades formadoras de colônia (UFC) de cada grupo foi submetido à análise de variância (ANOVA) para determinar se haviam diferenças estatísticas entre os grupos e, posteriormente, ao teste de Tukey.

Estimativa de S. mutans na saliva Para o isolamento de S. mutans, foram realizadas diluições (10-1 e 10-2) das amostras salivares em água peptonada, homogeneizadas em agitador magnético, sendo que 0,1ml de cada diluição foi semeada em ágar Mitis Salivarius adicionado de bacitracina (30µg/ml de meio) e telurito de potássio (0,00005%), e incubadas a 37°C por 48 horas, em microaerofilia, com uso de jarra de Gaspack.

Após incubação, foi realizada a contagem estimada das colônias de estreptococos do grupo mutans, multiplicando-se o número de colônias em uma área padronizada de 1cm2 pelo respectivo fator de diluição.

Resultados Os resultados evidenciaram que a proliferação de S. mutans (Fig. 3) e C. albicans (Fig. 4) foram significativamente maiores nos pacientes com disjuntor Hass, comparado aos pacientes com disjuntor Hyrax. Houve diferença estatisticamente significativa entre os grupos HA e HY para S. mutans (p= 0.001) e C. albicans (p= 0.000). Os pacientes portadores de disjuntor tipo Hass apresentaram as maiores variações de contagem de colônias para S. mutans e C. albicans.

Com a instalação dos aparelhos, houve aumento significativo do número de S. mutans e C. albicans, tanto no grupo tipo Hass, como no tipo Hyrax (p<0.005).

Estimativa de leveduras do gênero Candida albicans na saliva Para o isolamento de C. albicans, as amostras salivares foram diluídas a 10-1 em caldo Sabouraud, e

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Avaliação quantitativa de S. mutans e C. albicans em portadores de aparelhos disjuntores tipo Haas e Hyrax

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20,00

Colônias de S. Mutans X 100000

Colônias de S. Mutans X 100000

250,00 15,00

10,00

5,00

200,00 150,00 100,00 50,00 0,00

0,00 Antes

Depois

Antes

Depois

Disjuntor Haas

Disjuntor Hyrax

Figura 3 - Contagem de colônias de S. mutans (UFC/ml) coletadas de pacientes portadores de disjuntor tipo Hyrax e Haas.

120,00

300,00 250,00 Colônias de C. Albicans

Colônias de C. Albicans

100,00

80,00

60,00

40,00

200,00 150,00 100,00 50,00

20,00

0,00 Antes

Depois

Antes

Disjuntor Hyrax

Depois Disjuntor Haas

Figura 4 - Contagem de colônias de C. albicans (UFC/ml) coletadas de pacientes portadores disjuntor tipo Hyrax e Haas.

Discussão O meio ambiente bucal oferece condições ideais para a colonização das partes anatômicas que o compõe, por uma microbiota bastante complexa, que coexiste em equilíbrio com o hospedeiro15. No entanto, quando ocorrem modificações no ambiente bucal, a microbiota também se altera, resultando em desequilíbrio, com possibilidade do desenvolvimento de doenças30.

O tratamento ortodôntico, particularmente, por meio do uso de aparelhos fixos, predispõe alterações específicas no meio bucal3, incluindo redução do pH,

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aumento no acúmulo de biofilme dentário33 e elevação dos níveis salivares de microrganismos27.

Tendo em vista que os aparelhos ortodônticos são compostos por uma variedade de materiais sólidos e elásticos42, após sua instalação na cavidade bucal, proteínas salivares específicas irão adsorver nas diferentes superfícies dos mesmos2,42, condicionando-as e desempenhando um importante papel na adesão bacteriana. Além disso, as superfícies irregulares dos braquetes, bandas, fios e outros acessórios, funcionam como áreas de retenção de biofilme bacteriano2,27, dificultam a higienização35 e limitam

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Pithon MM, Santos RL, Alviano WS, Ruella ACO, Araújo MTS

a ocorrência da autolimpeza mecânica efetuada pela saliva e pela movimentação da musculatura38.

Esses fatores favorecem a queda do pH do biofilme dentário na presença de carboidratos fermentáveis, acelerando o acúmulo e a maturação do biofilme cariogênico, composto fundamentalmente por estreptococos do grupo mutans, os quais são microrganismos acidúricos e acidogênico19, considerados os agentes etiológicos primários da cárie dentária7,28.

Embora a cavidade bucal apresente inúmeras espécies de microrganismos15, avaliou-se, nesse trabalho, a presença de estreptotocos do grupo mutans, em função de serem considerados os agentes etiológicos primários da cárie dental15 e de serem os microrganismos que mais comumente contaminam os aparelhos ortodônticos41,1; e, também, da cândida albicans, que são microrganismos frequentes na cavidade bucal, podendo ou não estar associados a patologias.

Para avaliação microbiológica, foi empregada a técnica de diluição, onde os espécimes foram submetidos à agitação mecânica para dessorção dos microrganismos, sendo as suspensões resultantes diluídas e semeadas em meio de cultura sólido. Diferentes meios de cultura sólidos têm sido empregados para a detecção de estreptococos do grupo mutans, tais como o ágar SB2011, o MS-MUTV44 e o TYCSB45, entre outros.

Utilizou-se nesse trabalho o ágar MSB17, empregado em diversos trabalhos20,21,24,46,47. Para Candida, utilizou-se o meio ágar Sabouraud Dextrose, um dos meios mais utilizados quando do estudo de C. albicans14,16,40.

Nesse estudo, a proliferação de S. mutans e C. albicans foi significativamente maior nos pacientes submetidos a disjunção com aparelho tipo Hass, comparado ao tipo Hyrax.

O disjuntor Hass é um aparelho dentomucossuportado, o qual, além de anéis ortodônticos e parafuso

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disjuntor, possui estrutura acrílica que o diferencia do aparelho tipo Hyrax. A estrutura acrílica pode influenciar na proliferação de microrganismos, quando funciona como retentora de alimento, a depender de seu tamanho e lisura. Observou-se, nesse trabalho, que os pacientes portadores de disjuntor tipo Hass apresentaram as maiores variações na contagem de colônias para S. mutans e C. albicans. Além da estrutura acrílica, fatores como dificuldade de higienização, profundidade do palato, domínio de técnicas de escovação e frequência de escovação pelo paciente podem ter influenciado na proliferação de S. mutans e C. albicans.

Para verificar o quanto esses aparelhos propiciariam de acúmulo bacteriano, avaliou-se a saliva antes e 30 dias após a instalação dos aparelhos. Pode-se notar aumento significativo de microrganismos nos indivíduos que estavam usando tanto o aparelho tipo Hass, quanto o Hyrax (p<0.005).

Outra consideração que deve ser feita, foi o desvio padrão menor na primeira coleta quando comparado à segunda. Tal fato pode ser justificado pelo desenho do aparelho que, apesar de ter sido confeccionado pelo mesmo operador, tinha características particulares de cada indivíduo, pela resposta individual de cada hospedeiro frente ao novo dispositivo intraoral e pela higienização particular.

Conclusões Pode-se concluir com a realização desse trabalho que: » A instalação dos disjuntores tipo Hass e Hyrax propicia maior acúmulo de microrganismos (S. mutans e C. albicans); » O disjuntor Hass propiciou maior proliferação de S. mutans e C. albicans, comparado ao disjuntor Hyrax.

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Avaliação quantitativa de S. mutans e C. albicans em portadores de aparelhos disjuntores tipo Haas e Hyrax

Referências 1.

AHN, S. J., LIM, B. S. E LEE, S. J. Prevalence of cariogenic streptococci on incisor

26. HUSER, M. C., BAEHNI, P. C. E LANG, R. Effects of orthodontic bands on

brackets detected by polymerase chain reaction. Am J Orthod Dentofacial Orthop.

microbiologic and clinical parameters. Am J Orthod Dentofacial Orthop. v.97, n.3,

v.131, n.6, Jun, p.736-41. 2007.

2.

Mar, p.213-8. 1990.

AHN, S. J., LIM, B. S., LEE, Y. K., et al. Quantitative determination of adhesion

27. KILIC, N. E OKTAY, H. Effects of rapid maxillary expansion on nasal breathing and

patterns of cariogenic streptococci to various orthodontic adhesives. Angle Orthod.

some naso-respiratory and breathing problems in growing children: A literature

v.76, n.5, Sep, p.869-75. 2006.

3.

review. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. v.72, n.11, Nov, p.1595-601. 2008.

ANHOURY, P., NATHANSON, D., HUGHES, C. V., et al. Microbial profile on metallic

28. LEUNG, N. M., CHEN, R. E RUDNEY, J. D. Oral bacteria in plaque and invading

and ceramic bracket materials. Angle Orthod. v.72, n.4, Aug, p.338-43. 2002.

4.

buccal cells of young orthodontic patients. Am J Orthod Dentofacial Orthop. v.130,

ARMAN, A., UFUK TOYGAR, T. E ABUHIJLEH, E. Evaluation of maxillary

n.6, Dec, p.698 e11-8. 2006.

protraction and fixed appliance therapy in Class III patients. Eur J Orthod. v.28, n.4,

29. LOESCHE, W. J. Role of Streptococcus mutans in human dental decay. Microbiol

Aug, p.383-92. 2006.

5.

Rev. v.50, n.4, Dec, p.353-80. 1986.

AUSCHILL, T. M., HEIN, N., HELLWIG, E., et al. Effect of two antimicrobial agents on

30. MACPHERSON, L. M., MACFARLANE, T. W. E STEPHEN, K. W. An intra-

early in situ biofilm formation. J Clin Periodontol. v.32, n.2, Feb, p.147-52. 2005.

6.

oral appliance study of the plaque microflora associated with early enamel

BALENSEIFEN, J. W. E MADONIA, J. V. Study of dental plaque in orthodontic

demineralization. J Dent Res. v.69, n.11, Nov, p.1712-6. 1990.

patients J Dent Res. v.49, n.2, p.320-24. 1970.

7.

31. MARSH, P. D. Dental plaque as a biofilm and a microbial community - implications

BERKOWITZ, R. J. Causes, treatment and prevention of early childhood caries: a

for health and disease. BMC Oral Health. v.6 Suppl 1, p.S14. 2006.

microbiologic perspective. J Can Dent Assoc. v.69, n.5, May, p.304-7. 2003.

8.

9.

32. MASEREJIAN, N. N., TRACHTENBERG, F., HAYES, C., et al. Oral health disparities

BIEDERMAN, W. A. A hygienic appliance for rapid expansion. J Pract Orthod. v.2,

in children of immigrants: dental caries experience at enrollment and during follow-

p.67-70. 1968.

up in the New England Childrens Amalgam Trial. J Public Health Dent. v.68, n.1,

BUCCHERI, A., DILELLA, G. E STELLA, R. Rapid palatal expansion and pharyngeal

Winter, p.14-21. 2008.

space. Cephalometric evaluation. Prog Orthod. v.5, n.2, p.160-71. 2004.

33. MATTINGLY, J. A., SAUER, G. J., YANCEY, J. M., et al. Enhancement of

10. CHUNG, C. H. E FONT, B. Skeletal and dental changes in the sagittal, vertical, and

Streptococcus mutans colonization by direct bonded orthodontic appliances. J

transverse dimensions after rapid palatal expansion. Am J Orthod Dentofacial

Dent Res. v.62, n.12, Dec, p.1209-11. 1983.

Orthop. v.126, n.5, Nov, p.569-75. 2004.

11.

34. NARANJO, A. A., TRIVINO, M. L., JARAMILLO, A., Et al. Changes in the subgingival

DAVEY, A. L. E ROGERS, A. H. Multiple types of the bacterium Streptococcus

microbiota and periodontal parameters before and 3 months after bracket

mutans in the human mouth and their intra-family transmission. Arch Oral Biol.

placement. Am J Orthod Dentofacial Orthop. v.130, n.3, Sep, p.275 e17-22. 2006.

v.29, n.6, p.453-60. 1984.

35. OLIVEIRA, L. B., SHEIHAM, A. E BONECKER, M. Exploring the association of dental

12. DE COSTER, T. [Orthopedic expansion of the maxilla]. Orthod Fr. v.77, n.2, Jun,

caries with social factors and nutritional status in Brazilian preschool children. Eur J

p.253-64. 2006.

Oral Sci. v.116, n.1, Feb, p.37-43. 2008.

13. DIAMANTI-KIPIOTI, A., GUSBERTI, F. A. E LANG, N. P. Clinical and microbiological

36. OLYMPIO, K. P. K., BARDAL, P. A. P., BASTOS, J. R., et al. Caries y enfermidad

effects of fixed orthodontic appliances. J Clin Periodontol. v.14, n.6, Jul, p.326-33.

periodontalcausadas por tratamiento ortodóntico en ausencia de un programa

1987.

educativo-perventivo. Revista Odontológica Dominicana. v.9, p.31-38. 2003.

14. FARLEY, J. E., STAMPER, P. D., ROSS, T., et al. Comparison of the BD GeneOhm

37. PERCY, M. S. Oral health of adolescents--its more than dental caries. MCN Am J

methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) PCR assay to culture by use of

Matern Child Nurs. v.33, n.1, Jan-Feb, p.26-31. 2008.

BBL CHROMagar MRSA for detection of MRSA in nasal surveillance cultures from

38. REN, Y. Rapid maxillary expansion treatment could produce long-term dental arch

an at-risk community population. J Clin Microbiol. v.46, n.2, Feb, p.743-6. 2008.

changes. Evid Based Dent. v.6, n.4, p.93-4. 2005.

15. FEJERSKOV, O. E KIDD, E. Cárie Dentária. A doença e seu tratamento clínico. São

39. ROSENBLOOM, R. G. E TINANOFF, N. Salivary Streptococcus mutans levels in

Paulo: Santos. 2005

patients before, during, and after orthodontic treatment. Am J Orthod Dentofacial

16. FURLANETO-MAIA, L., SPECIAN, A. F., BIZERRA, F. C., et al. In Vitro Evaluation

Orthop. v.100, n.1, Jul, p.35-7. 1991.

of Putative Virulence Attributes of Oral Isolates of Candida spp. Obtained from

40. SAKAMAKI, S. T. E BAHN, A. N. Effect of orthodontic banding on localized oral

Elderly Healthy Individuals. Mycopathologia. v.166, n.4, Oct, p.209-17. 2008.

17.

lactobacilli. J Dent Res. v.47, n.2, Mar-Apr, p.275-9. 1968.

GOLD, O. G., JORDAN, H. V. E VAN HOUTE, J. A selective medium for

41. SAMRA, Z., BAHAR, J., MADAR-SHAPIRO, L., et al. Evaluation of CHROMagar KPC

Streptococcus mutans. Arch Oral Biol. v.18, n.11, Nov, p.1357-64. 1973.

for rapid detection of carbapenem-resistant Enterobacteriaceae. J Clin Microbiol.

18. GOLDENBERG, D. C., GOLDENBERG, F. C., ALONSO, N., et al. Hyrax appliance

v.46, n.9, Sep, p.3110-1. 2008.

opening and pattern of skeletal maxillary expansion after surgically assisted rapid

42. SREENIVASAN, P. K., MATTAI, J., NABI, N., et al. A simple approach to examine

palatal expansion: a computed tomography evaluation. Oral Surg Oral Med Oral

early oral microbial biofilm formation and the effects of treatments. Oral Microbiol

Pathol Oral Radiol Endod. Sep 19. 2008.

Immunol. v.19, n.5, Oct, p.297-302. 2004.

19. GORELICK, L., GEIGER, A. M. E GWINNETT, A. J. Incidence of white spot formation

43. STEINBERG, D. E EYAL, S. Initial biofilm formation of Streptococcus sobrinus on

after bonding and banding. Am J Orthod. v.81, n.2, Feb, p.93-8. 1982.

various orthodontics appliances. J Oral Rehabil. v.31, n.11, Nov, p.1041-5. 2004.

20. GROPPO, F. C., RAMACCIATO, J. C., SIMOES, R. P., et al. Antimicrobial activity of

44. SUKONTAPATIPARK, W., EL-AGROUDI, M. A., SELLISETH, N. J., et al. Bacterial

garlic, tea tree oil, and chlorhexidine against oral microorganisms. Int Dent J. v.52,

colonization associated with fixed orthodontic appliances. A scanning electron

n.6, Dec, p.433-7. 2002.

microscopy study. Eur J Orthod. v.23, n.5, Oct, p.475-84. 2001.

21. GUDINO, S., ROJAS, N., CASTRO, C., et al. Colonization of mutans streptococci

45. TAKADA, K. E HIRASAWA, M. A novel selective medium for isolation of

in Costa Rican children from a high-risk population. J Dent Child (Chic). v.74, n.1,

Streptococcus mutans. J Microbiol Methods. v.60, n.2, Feb, p.189-93. 2005.

Jan-Apr, p.36-40. 2007.

46. WAN, A. K., SEOW, W. K., PURDIE, D. M., et al. A longitudinal study of

22. HAAS, A. J. Rapid Expansion of the maxillary dental arch and nasal cavity by

Streptococcus mutans colonization in infants after tooth eruption. J Dent Res. v.82,

opening the mid-palatal suture

n.7, Jul, p.504-8. 2003.

23. Angle Orthod. v.31 p.73-90. 1961.

47. WAN, A. K., SEOW, W. K., WALSH, L. J., et al. Comparison of five selective media

24. HAYES, J. L. Rapid maxillary expansion. Am J Orthod Dentofacial Orthop. v.130,

for the growth and enumeration of Streptococcus mutans. Aust Dent J. v.47, n.1,

n.4, Oct, p.432-3; author reply 433-4. 2006.

Mar, p.21-6. 2002.

25. HILDEBRANDT, G. H. E BRETZ, W. A. Comparison of culture media and chairside

48. WICHT, M. J., HAAK, R., KNEIST, S., et al. A triclosan-containing compomer

assays for enumerating mutans streptococci. J Appl Microbiol. v.100, n.6, Jun,

reduces Lactobacillus spp. predominant in advanced carious lesions. Dent Mater.

p.1339-47. 2006.

v.21, n.9, Sep, p.831-6. 2005.

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33.e6

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