Requerimiento proteico en dietas para tres etapas de crecimiento del camarón blanco del Pacífico Litopenaeus vannamei

Autores: Chorong Lee Kyeong-Jun Lee

Artículo publicado por Fisheries and Aquatic Sciences

kjlee@jejunu.ac.kr El camarón blanco del Pacífico, Litopenaeus vannamei (Boone, 1931), una de las especies de camarón de cultivo más importantes de la última década, ocupa una posición vital en la industria acuícola. Sin embargo, datos nutricionales básicos como el requerimiento de proteínas, la relación P/E, las vitaminas y minerales en las dietas para camarón no se han determinado completamente. El estudio nutricional en camarón generalmente se complica por las dificultades asociadas con la elaboración de una dieta experimental estable en el agua. Los crustáceos, incluyendo el camarón, desmenuzan las partículas de sus alimentos previo a la ingestión, lo que conduce a una rápida lixiviación y, por lo tanto, dificulta mucho la medición del consumo de alimento Wilson 2002.

Se supone que el camarón cultivado obtiene aminoácidos esenciales a través de los alimentos porque no puede sintetizar todos los aminoácidos (National Research Council 2011). Se requiere un nivel mínimo de proteína en la dieta para suministrar los aminoácidos adecuados para el mantenimiento normal del metabolismo y la fisiología en animales acuáticos. Generalmente, los bajos niveles de proteína en la dieta conducen a una rápida reducción del crecimiento y pérdida de peso porque los animales extraen la proteína necesaria de sus tejidos para mantener funciones fisiológicas vitales. Por otro lado, los altos niveles de proteína en la dieta pueden conducir a un incremento en los costos del balanceado y en la excreción de nitrógeno en el agua porque los animales solo usan porciones de proteína para la construcción de su cuerpo y la porción restante se convierte en energía, lo que puede obtenerse fácilmente de carbohidratos o lípidos a bajo costo (Zhou et al. 2007). El contenido proteico de la dieta puede afectar significativamente la calidad del agua a través de la excreción de nitrógeno. En el caso del sistema de cultivo de camarón, la mayor parte de la entrada de nitrógeno a la columna de agua se genera por el alimento y no se convierte en tejido del camarón.

Se ha reportado que el requerimiento óptimo de proteína en la dieta de L. vannamei es del 20 al 45% dependiendo del tamaño del camarón, las condiciones del agua y las

características dietéticas como la calidad de la proteína, el contenido energético y la palatabilidad (Velasco et al.2000; MartinezCordova et al. 2003; Perez-Velazquez et al. 2007; Venero et al. 2008; Jatobá et al. 2014; Shahkar et al. 2014; Sui et al.2015; Yun et al. 2015; Yun et al. 2016). La mayoría de los estudios previos han utilizado dietas prácticas para el requerimiento de proteína en camarón. Por lo tanto, este estudio se realizó para determinar los requisitos óptimos de proteínas del camarón blanco del Pacífico en tres etapas de crecimiento diferentes, después de la exposición a una dieta semipurificada.

Materiales y métodos

Diseño y dietas experimentales La formulación y las composiciones proximales de las dietas experimentales para los ensayos 1, 2 y 3 se muestran en la Tabla 1. Se formularon seis dietas semipurificadas para contener niveles de proteína cruda de 25, 30, 35, 40, 45 y 50%. (designadas como P25, P30, P35, P40, P45 y P50, respectivamente) aumentando la caseína y la gelatina a expensas del almidón. Todos los materiales secos se mezclaron a fondo (NVM-16, Gyeonggido, Corea del Sur) y se pelletizaron con una máquina peletizadora (SP-50; Gumgang Engineering, Daegu, Corea del Sur) después de la adición de aceite de pescado y agua destilada. Los pellets se secaron a 25 °C durante 24 h, se trituraron en tamaños de partículas deseables y se almacenaron a -24 °C hasta su uso.

Ensayos de alimentación y camarones Los tres ensayos de alimentación se llevaron a cabo en una instalación de cultivo de camarón en el interior del Instituto de Ciencias Marinas de la Universidad Nacional de Jeju (Jeju, Corea del Sur). Se obtuvieron tres grupos de diferentes tamaños de L. vannamei de la camaronera NeoEnBiz (Dangjin, Corea del Sur) y se aclimataron durante 2 semanas cada uno durante las cuales los camarones fueron alimentados con una dieta comercial adecuada (SAJO DongA One, Seúl, Corea del Sur).

En el primer ensayo de alimentación (ensayo 1, camarón de 0.65 g de tamaño), se distribuyeron los camarones al azar en 18 acuarios de acrílico de 92 L de capacidad a una densidad de 18 camarones por

Tabla 1. Formulación dietética y composición proximal de seis dietas experimentales para L. vannamei (% materia seca). Las tres dietas experimentales (ensayo 1, 2 y 3) se elaboraron utilizando la misma fórmula de dieta.

Ingredientes

Harina de pescado marrón1 Gelatina2 Caseína3 Harina de soya Harina de hígado de calamar Harina de trigo Almidón Aceite de pescado Premezcla de vitaminas/minerales4 Cloruro de colina Lecitina Composición química (% materia seca) Materia seca Proteína cruda Lípido crudo Ceniza bruta Dietas experimentales P25 P30 P35 P40 P45 P50 18.0 18.0 18.0 18.0 18.0 18.0 0.50 1.50 2.50 3.50 4.50 5.50 2.00 6.00 10.0 14.0 18.0 22.0 4.00 4.00 4.00 4.00 4.00 4.00 5.00 5.00 5.00 5.00 5.00 5.00 34.5 34.5 34.5 34.5 34.5 34.5 30.0 25.0 20.0 15.0 10.0 5.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00

89.0 88.8 88.4 88.9 89.0 88.6 25.9 30.4 35.8 40.2 45.0 50.1 8.12 8.09 8.18 8.17 8.27 8.23 5.19 5.13 5.15 5.28 5.14 5.33

1Suhyup Feed Co.Ltd., Corea del Sur (proteína cruda: 73.1%, lípidos crudos: 6.60%) 2Sigma Chemicals, gelatina 3La caseína se adquirió de USB Co. Ltd., Cleveland, OH, EE. UU. 4Premezcla de vitaminas/minerales (g kg− 1 de mezcla): 3.0 retinol; 1.0 colecalciferol; 20.0 ácido ascórbico; 20.0 tocoferol; 2.0 menadiona; 4.0 tiamina; 6.0 riboflavina; 5.0 piridoxina; 6.0 cobalamina; 54.0 inositol; 12.0 ácido panténico; 0.2 biotina; 40.0 amida de niacina; 2.0 ácido fólico; 10.0 Ferriccitrato; 1.0 Cu; 30 Zn; 2.0 Mn; 10 Co; 1.0 Yo; 6.0 K; 0.01 Se

acuario con aireación para mantener suficiente oxígeno disuelto. Se alimentaron manualmente grupos de camarones triplicados con una de las dietas cuatro veces al día a las 08:30, 13:00, 17:30 y 20:00 h durante 36 días. La tasa de alimentación diaria se redujo lentamente del 15 al 6% del peso corporal húmedo durante los 36 días del ensayo de alimentación.

En el segundo ensayo de alimentación (ensayo 2, camarón de 4.80 g de tamaño), los camarones se distribuyeron al azar en 18 acuarios de acrílico de 92 L de capacidad a una densidad de 12 camarones por acuario con suficiente aireación. El protocolo de alimentación fue el mismo que en el ensayo 1, pero la tasa de alimentación se redujo ligeramente del 10 al 4% de la biomasa durante 42 días del ensayo de alimentación. En el tercer ensayo de alimentación (ensayo 3, camarón de 10.5 g de tamaño), los camarones se sembraron al azar en 18 acuarios de acrílico de 216 L de capacidad a una densidad de 11 camarones por acuario con suficiente aireación. El protocolo de alimentación fue el mismo que en el ensayo 1, pero la tasa de alimentación fue del 5% de la biomasa durante los 48 días del ensayo de alimentación.

Se realizaron tres ensayos de alimentación de la misma manera, excepto por la duración, el tamaño del camarón y las tasas de alimentación respectivas. El agua de cultivo se cambió cada 3 días y los acuarios se limpiaron con una esponja para evitar el crecimiento de microflora. La iluminación fluorescente se mantuvo durante un ciclo de 12 h de luz/oscuridad. La temperatura del agua fue de 28 ± 2°C, el pH fue de 7.5 ± 0.2, la salinidad fue de 30 g L-1 y el oxígeno disuelto fue superior a 7.0 mg L-1. El nitrógeno amoniacal total y el nitrito se mantuvieron < 0.1 y 0.005 mg L - 1, respectivamente, durante los tres ensayos de alimentación. El crecimiento del camarón se midió cada 2 semanas. La alimentación se detuvo 18 h antes del pesaje para minimizar el estrés de manipulación en el camarón.

Recolección y análisis de muestras

Al final de cada ensayo de alimentación, todos los camarones en cada tanque fueron contados y pesados individualmente para calcular el aumento de peso (WG), el aumento corporal diario (DBI), el factor de conversión alimenticio (FCR), el índice de eficiencia proteica (PER) y supervivencia. Después del pesado, se seleccionaron tres tamaños medianos de camarón de cada tanque (nueve camarones por tratamiento dietético) para el análisis del cuerpo en los ensayos 1 y 3. Se realizó un análisis de humedad y contenido de cenizas del experimento de dietas y las muestras de cuerpo entero mediante los procedimientos estándar (AOAC 2005). La proteína cruda se midió usando una Unidad Analizadora Kjeltec automática 2300 (Foss Tecator, Höganäs, Suecia), y el lípido crudo fue analizado por Folch et al. (1957).

Análisis estadístico Todas las dietas fueron asignadas por un diseño completamente al azar. La data se analizó mediante análisis de varianza unidireccional (ANOVA) en SPSS versión 18.0 (SPSS Inc., Chicago, IL, EE. UU.). Cuando la ANOVA identificó diferencias entre los grupos, la diferencia de medias se comparó con las pruebas de rango múltiple de Duncan. La significación estadística se determinó en P < 0.05. Los resultados del aumento de peso se ajustaron a modelos de línea discontinua para la estimación del nivel óptimo de proteína en la dieta (Fig. 1). La data se presenta como media ± SD. La data porcentual se transformó en arcoseno antes del análisis.

Resultados

Los resultados del rendimiento del crecimiento, la utilización del alimento y la supervivencia se muestran en la Tabla 2. La supervivencia promedio fue de 86.9, 85.2 y 86.9% para los ensayos 1, 2 y 3, respectivamente. En el ensayo 1, el rendimiento del crecimiento no se vio afectado por los niveles de proteína en la dieta. Sin embargo, el PER fue significativamente mayor en los camarones alimentados con la dieta P30 en comparación con los alimentados con las dietas P40, P45 y P50. En el ensayo 2, se observó una tasa de crecimiento significativamente mayor en los camarones alimentados con la dieta P35 en comparación con los camarones alimentados con la dieta P25. El FCR fue significativamente menor en los camarones alimentados con dietas P35 y P40 que en los camarones expuestos a la dieta P25. Los camarones expuestos a dietas P25, P30 y P35 mostraron un PER significativamente más alto en comparación con aquellos alimentados con dietas P45 y P50. En el ensayo 3, la dieta P25 resultó en una tasa de crecimiento significativamente menor que otras dietas experimentales. El FCR fue significativamente más alto en camarones alimentados con la dieta P25 que en otras dietas experimentales. El PER fue significativamente más alto en los camarones alimentados con la dieta P30 en comparación con los camarones alimentados con las dietas P25, P40, P45 y P50.

Como se muestra en la Tabla 3, se observó un contenido de humedad significativamente mayor en el grupo P25 que en otros grupos en el ensayo 1. En el ensayo 3, la humedad fue significativamente mayor en los grupos P25 y P50 que en los grupos P30, P40 y P45. La proteína en cuerpo entero fue significativamente menor en el grupo P25 que en otros grupos.

El análisis de línea discontinua de la data de crecimiento indica que los niveles óptimos de proteína cruda serían 34.5, 35.6 y 32.2% en las dietas para camarón pequeño, mediano y grande (juveniles, subadultos y adultos), respectivamente.

Discusión

El crecimiento y la utilización de balanceado para animales acuáticos alimentados con dietas purificadas son normalmente menor que los de animales expuestos a dietas prácticas (Kim et al. 1991). No obstante, el uso de dietas purificadas es inevitable para el estudio de requerimientos nutricionales. En este estudio, se utilizaron como principales fuentes de proteínas la harina de pescado como antiadherente y la gelatina y caseína como ingredientes purificados. Las dietas experimentales semipurificadas fueron fácilmente aceptadas por los camarones durante todas las pruebas de alimentación.

El crecimiento del camarón fue igual o mejor que el reportado para el tamaño similar L. vannamei expuesto a dietas formuladas en las que no se utilizan ingredientes purificados. Smith et al. (1985) realizaron tres ensayos de alimentación con grupos de L. vannamei de tamaño similar y encontraron 0.21, 0.15 y 0.10 g de aumento corporal por día para los grupos de tamaño de 4.0, 9.8 y 20.8 g, respectivamente. Rosas et al. (2001) informaron un aumento corporal diario de 0.04 y 0.13 g para grupos de L. vannamei de tamaño de 0.3 y 1.5 g, respectivamente. Xia et al. (2010) también informaron un aumento corporal diario de aproximadamente 0.10 g en L. vannamei de tamaño de 6.2 g. Estos estudios previos (Smith et al. 1985; Rosas et al. 2001; Xia et al. 2010) utilizaron todas las dietas prácticas para las pruebas de alimentación. En este estudio, se observó un mayor crecimiento calculado como un aumento corporal diario de 0.11, 0.17 y 0.15 para grupos de L. vannamei de

Fig. 1 Análisis de línea discontinua de la ganancia de peso (g) de L. vannamei a diferentes niveles de proteína en la dieta (%). (a) prueba 1 (camarones de 0,65 g de tamaño), (b) prueba 2 (camarones de 4,80 g de tamaño) y (c) prueba 3 (camarones de 10,5 g de tamaño)

Tabla 2 Rendimiento de crecimiento y utilización del alimento en L. vannamei alimentado con las seis dietas experimentales que contienen seis niveles diferentes de proteína cruda (25, 30, 35, 40, 45 y 50% para P25, P30, P35, P40, P45 y P50, respectivamente)

Dietas experimentales

P25 P30 P35 P40 P45 P50

Trial1 (initialBW 0.65g)

FBW1 4.34± 0.66 4.46± 0.38 4.68± 0.24 4.92± 0.66 4.80± 0.53 4.40± 0.28

WG 2 571± 103 586 ± 58.4 619 ± 36.3 660 ±102 637± 86.8 579 ± 44.1

DBI3 0.10± 0.02 0.11± 0.01 0.11± 0.01 0.12± 0.02 0.12± 0.01 0.10± 0.01

FCR4 1.77± 0.36 1.43± 0.35 1.32± 0.23 1.49± 0.34 1.58± 0.19 1.41± 0.36

PER5 2.33± 0.45 ab 2.37± 0.58 a 2.16± 0.40 abc 1.58± 0.37 bc 1.42± 0.18 c 1.47± 0.33 bc

Survival6 88.9± 7.86 85.2± 3.21 85.2± 3.21 86.1± 3.93 92.6± 32.1 83.3± 0.00 Trial2 (initialBW 4.81g)

FBW1 10.8± 0.93 b 11.6± 0.43 ab 13.1± 1.18 a 12.2± 0.92 ab 11.7± 0.15 ab 12.0± 1.32 ab

WG 2 125± 19.1 b 141± 8.43 ab 173± 23.5 a 153± 18.6 ab 145± 3.94 ab 148± 27.4 ab

DBI3 0.14± 0.02 b 0.16± 0.01 ab 0.20± 0.03 b 0.18± 0.02 ab 0.17± 0.00 ab 0.17± 0.03 ab

FCR4 2.29± 0.25 a 2.06± 0.13 ab 1.71± 0.29 b 1.71± 0.18 b 2.01± 0.27 ab 1.83± 0.33 ab

PER5 1.70± 0.19 a 1.60± 0.10 a 1.67± 0.31 a 1.47± 0.16 ab 1.12± 0.16 b 1.12± 0.18 b

Survival6 91.7± 8.33 88.9± 12.7 83.3± 8.33 80.6± 4.81 80.6± 9.62 86.1± 12.7 Trial3 (initialBW 10.5g)

FBW1 15.5± 0.47 b 18.7± 0.77 a 19.5± 2.02 a 18.0± 0.26 a 18.2± 0.73 a 18.3± 1.05 a

WG 2 46.8± 4.59 b 77.8± 6.88 a 85.2± 19.4 a 70.9± 2.95 a 72.8± 6.62 a 72.9± 10.4 a

DBI3 0.10± 0.01 b 0.17± 0.02 a 0.19± 0.04 a 0.16± 0.01 a 0.16± 0.01 a 0.16± 0.02 a

FCR4 2.76± 0.26 a 1.64± 0.16 b 1.55± 0.32 b 1.72± 0.14 b 1.69± 0.22 b 1.80± 0.29 b

PER5 1.38± 0.13 c 1.98± 0.19 a 1.88± 0.41 ab 1.49± 0.12 bc 1.33± 0.17 c 1.15± 0.18 c

Survival6 87.9± 10.5 97.0± 5.25 90.9± 0.00 81.8± 15.7 81.8± 0.00 81.8± 9.09

Los valores son la media de los grupos por triplicado y se presentan como media ± S.D. Los valores con letras diferentes en superíndice en la misma fila son significativamente diferentes (P < 0.05). La falta de una letra como superíndice indica que no hay diferencias significativas entre los tratamientos. 1FBW Peso corporal final (g) 2Aumento de peso (%) = [(promedio peso corporal final – promedio peso corporal inicial)/promedio peso corporal inicial] × 100 3Aumento peso diario (g/día) = (peso corporal final - peso corporal inicial)/días 4Factor de conversión alimenticio = alimento seco suministrado (g)/peso húmedo ganado (g) 5Factor de eficiencia proteica = peso húmedo ganado/ total proteína administrada 6Supervivencia (%)

Tabla 3 Composición de cuerpo entero de L. vannamei alimentado con las seis dietas experimentales que contenían seis niveles diferentes de proteína cruda (25, 30, 35, 40, 45 y 50% para P25, P30, P35, P40, P45 y P50, respectivamente)

Dietas experimentales

P25P 30 P35P

Ensayo 1 (BW inicial 0.65 g) Humedad 83.6± 3.12 a 76.3± 2.73 c 77.6± 1.17 bc 40 P45P 50

76.5± 1.61 c 77.4± 0.78 bc 79.1± 0.45 b

Proteína 76.6± 4.78 76.8± 5.47 80.9± 5.13 78.3± 6.69 76.6 ±3 .917 9.3± 2.04

Lípido

Ceniza 5.15 ±0 .954 .87± 0.88

21.0± 2.46 20.2± 1.66 4.57 ±0 .084

20.2± 1.67

.22± 0.65 20.9± 1.26 4.93 ±0 .755

20.7± 0.93 .42± 0.97

20.5 ±1 .05

Ensayo 3 (BW inicial 10.5 g) Humedad 76.5± 1.13 a 74.6± 1.47 bc 75.6± 1.08 ab 74.5± 0.24 bc 73.4± 1.35 c 76.2± 0.55 a

Proteína 75.6± 3.63 b 82.8± 1.60 a 82.7± 1.93 a 82.9± 2.54 a 84.1± 0.92 a 83.7± 2.04 a

Lípido 4.45 ±0 .344 .67± 0.31 4.64 ±0 .474 .57± 0.34 4.70 ±0 .154 .57± 0.31

Ceniza 13.0± 1.32 12.3± 1.14 13.1± 1.20 12.6± 0.68 12.6± 0.68 13.7 ±0 .95

Los valores son la media de grupos por triplicado y se presentan como media ± S.D. Los valores con letras diferentes en superíndice en la misma fila son significativamente diferentes (P < 0.05). La falta de una letra como superíndice indica que no hay diferencias significativas entre los tratamientos.

0.65, 4.81 y 10.5 g, aunque se utilizaron dietas semipurificadas. Por lo tanto, la dieta semipurificada en el este estudio parece estar formulada bien balanceada nutricionalmente para apoyar el crecimiento óptimo de L. vannamei juveniles, subadultos y adultos.

Generalmente, se han utilizado dietas experimentales prácticas en la mayoría de los estudios de requerimientos de proteínas para Peneidos. La mayoría de los estudios realizados utilizaron ingredientes prácticos, es decir, harina de pescado y harina de soya como las principales fuentes de proteína para aumentar o disminuir los niveles de proteína cruda en las dietas experimentales prácticas. Cuando se utiliza harina de pescado como la principal fuente de proteína para aumentar gradualmente la proteína cruda en las dietas para el estudio de requerimientos de proteínas (Xia et al. 2010; Yun et al. 2016), el resultado podría estar sobreestimado debido a factores desconocidos sobre crecimiento en la harina de pescado. Por otro lado, cuando se usa harina de soya (Kureshy y Davis 2002) como la principal fuente de proteína, el resultado puede estar subestimado debido a sus factores antinutricionales. En este sentido, este resultado podría ser muy significativo al proporcionar data sobre requerimiento proteico para Peneidos mediante el uso de dietas experimentales semipurificadas.

Los niveles de proteína dietética recomendados de estudios previos varían del 30 al 57% para camarones Peneidos. Este estudio mostró que la diferencia en los niveles de proteína afectó el crecimiento y la utilización de alimento de L. vannamei (Tabla 2). Un análisis de línea discontinua basado en el aumento de peso sugirió que los niveles óptimos de proteína en la dieta serían 34.5 y 35.6% para grupos de L. vannamei de tamaño pequeño (0.6 - 5 g) y de tamaño mediano (4 -a 13 g). El nivel óptimo de proteína en la dieta para un crecimiento máximo de L. vannamei puede verse afectado por diferencias en el tamaño del camarón, la densidad de población, la especie de camarón, el sistema de cultivo y las fuentes de proteínas de la dieta. En camarón de aproximadamente 1 g de tamaño, se observó un crecimiento óptimo con 33 a 44% de proteína cruda en las dietas cuando se utilizó harina de krill como fuente principal de proteína (Rosas et al. 2001). Gao et al. (2016) reportaron que el nivel óptimo de proteína dietética para L. vannamei (0.31 – 6.0 g) fue del 34% cuando se utilizó una dieta semipurificada. Shahkar et al. (2014) reportaron que 33% de nivel de proteína en la dieta es óptimo para un crecimiento óptimo de L. vannamei (de 1 - 11 g aproximadamente) cuando se usa harina de pescado como la principal fuente de proteína, mientras que Martinez-Cordova et al. (2003) encontraron que el nivel óptimo de proteína era del 25% cuando L. vannamei (1 - 17 g) se cultivaba en un sistema de estanques con tres dietas comerciales que contenían 25, 35 y 40% CP durante 16 semanas. En una condición de muy alta salinidad (60 g/L), se estimó el nivel óptimo de proteína en la dieta en 46.7% cuando L. vannamei (0.09-2.2 g) era alimentado con una dieta semipurificada (Sui et al. .2015).

La mayoría de estudios sobre requerimiento proteico en camarón se limitan a las etapas juveniles, y la mayoría de necesidades proteicas de etapas postjuveniles han sido estimadas. Hay poca información sobre el requerimiento proteico durante la etapa adulta del camarón. En base al crecimiento de camarón grande (de 10 - 20 g), este estudio estimó el nivel óptimo de proteína en la dieta en 32.2% mediante un análisis de línea discontinua. Hasta donde sabemos, se dispone de un estudio (Smith et al. 1985) con el que se puede comparar el crecimiento de L. vannamei (10 - 20 g) en este estudio. Smith et al. (1985) reportaron que camarones de tamaño adulto (20 -25 g) no se vieron afectados por los niveles de proteína, sino que se vieron afectados por las fuentes de proteínas (animal o vegetal), mientras que los camarones de tamaño pequeño (4 -11 g), se vieron significativamente afectados por niveles de proteína. La diferencia de resultados entre este estudio y Smith et al. (1985) se puede explicar principalmente por la diferencia en las fuentes de proteínas como las fuentes semipurificadas (caseína y gelatina) y las fuentes prácticas (harina de camarón), respectivamente, así como las diferentes condiciones experimentales.

El PER tendió a disminuir con el aumento de proteína en la dieta, lo que es consistente con los resultados en camarón (Hu et al. 2008; Xia et al. 2010; Shahkar et al. 2014). El PER más bajo encontrado en dietas proteicas del 40 al 50% indica que el exceso de proteína se utilizó para fines metabólicos distintos del crecimiento. Por lo general, el camarón utiliza de manera eficiente una dieta baja en proteína para la síntesis de proteínas (Shiau y Peng 1992; Hu et al. 2008; Xia et al. 2010). Además, las diferencias en las fuentes de proteínas podrían resultar en diferentes valores de PER (Hajra et al. 1988). En este estudio, la harina de pescado se fijó al 18% y luego la mezcla de caseína y gelatina (4:1, v/v) se incrementó gradualmente para hacer que el nivel de proteína de la dieta fuera diferente. Por lo tanto, la diferencia en los valores de PER en este estudio podrían atribuirse a la diferencia solo en el nivel de proteína más que en la calidad de la proteína. Las diferencias en la cantidad o calidad de la proteína, la proporción de proteína dietética/energía y la especie, contribuyen a los efectos variables de la proteína dietética en la composición de la canal (carcass en inglés, porcentaje de tejido, musculo, grasa) (Hubbard et al. 1986; Siccardi, 2006). El contenido de proteína más bajo que se observó en el cuerpo entero fue en una dieta de nivel bajo proteico (dieta P25) que a menudo se reportó en especies de peces (Kim y Lee 2009; Shahkar et al. 2014). Además, Siccardi (2006) evaluó el requerimiento diario de proteína digestible (DP) y energía digestible (DE) de L. vannamei con dos tipos de dietas (dieta al 25% CP y dieta al 35% CP) y diferentes regímenes de alimentación. Llegaron a la conclusión de que el requerimiento proteico del camarón debe reevaluarse considerando métodos de alimentación como la alimentación ad libtum/restringida y la cantidad diaria de alimentación, así como el contenido energético de la dieta.

Conclusión

En conclusión, el análisis de línea discontinua de la tasa de crecimiento sugiere que el nivel óptimo de proteína cruda en dietas podría ser 34.5, 35.6 y 32.2% para L. vannamei en tres etapas de crecimiento diferentes (camarón de tamaño pequeño, mediano y grande, respectivamente)•

Para más información sobre este artículo escriba a:

kjlee@jejunu.ac.kr