Estandarización de parametros fisiológicos by Medicina Veterinaria JDC

ESTANDARIZACIÓN DE PARAMETROS FISIOLÓGICOS MEDIANTE EL USO DEL EQUIPO MULTIPARAMETROS ZONDAN 120D EN TORTUGA MORROCOY (Chelonoidis carbonaria) DEL ZOOLOGICO MATECAÑA, PEREIRA, RISARALDA.

EDUARDO ALEJANDRO SILVA LÓPEZ

FUNDACIÓN UNIVERSITARIA JUAN DE CASTELLANOS FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS MEDICINA VETERINARIA TUNJA 2012

ESTANDARIZACIÓN DE PARAMETROS FISIOLÓGICOS MEDIANTE EL USO DEL EQUIPO MULTIPARAMETROS ZONDAN 120D EN TORTUGA MORROCOY (Chelonoidis carbonaria) DEL ZOOLOGICO MATECAÑA, PEREIRA, RISARALDA.

EDUARDO ALEJANDRO SILVA LÓPEZ

Director del Proyecto Ludy Paola Villamil Médico Veterinario Zootecnista MsC Acuicultura

Codirectora. Viviana Gómez Médico Veterinario MsC (c) Conservación Y Manejo De Vida Silvestre

FUNDACIÓN UNIVERSITARIA JUAN DE CASTELLANOS FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS MEDICINA VETERINARIA TUNJA 2012

NOTA DE ACEPTACIÓN

----------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------

----------------------------------------------------------FIRMA DE LA DIRECTORA DE TESIS

---------------------------------------------------------FIRMA DEL JURADO

-------------------------------------------------------FIRMA DEL ESTUDIANTE

15 de Noviembre de 2012

DEDICATORIA Este trabajo se realizó en honor de mi abuelo Rito Silva, a mis padres Guillermo Hernando Silva Malaver y Elsa Pilar López Morales, a mi hermano Andrés Martelo, toda mi familia que creyó siempre en mí y me ayudo a poder crecer como persona, como ser y como profesional, desarrollando nuevas metas en mi vida para realizar mis sueños y poder triunfar en este nuevo mundo lleno de sorpresas. De todo corazón siempre sigan estando a mi lado apoyándome y guiándome para poder crecer cada día más y poder seguir mis pasos hacia mi futuro.

AGRADECIMIENTOS. Agradezco de todo corazón a toda mi familia, a mis hermanos y amigos, a mis docentes, Dra. Ludy Paola Villamil, Dra. Viviana Gómez, Dr. Andrés Caycedo, Dr. Néstor Varela, Dr. Julián Mejía, Dr. Carlos Jara, Dra. Consuelo González, Dr, Guillermo Granados y Dr. Andrés Martelo, por brindarme su apoyo incondicional en todo momento, en mi aprendizaje, en mi formación como profesional y sobre todo como ser humano. Gracias y mil gracias que Dios lo llene de bendiciones en sus labores y los recompense con muchos logros y triunfos y a los que no están acá que estén felices por haber sido tan grandes y haber aportado su granito de arena al mundo y a las personas y a los queridos animales. GRACIAS.

Glosario 

Estandarización: Adaptación o adecuación a un modelo.



Examen Clínico: Conjunto de exploraciones realizadas en un paciente sin utilización

instrumentos

particulares

(como

endoscopios,

electrocardiógrafos, rayos X) y que están basados en la inspección, palpación y auscultación. 

Evaluar: Determinar, estimar el valor, el precio o la importancia de algo.



Frecuencia Cardiaca: Se trata de la cantidad de veces que se repite un cierto proceso periódico en una unidad temporal.



Frecuencia Respiratoria: La frecuencia respiratoria se define como las veces que se respira (ciclo de respiración: se contraen y se expanden los pulmones) por unidad de tiempo, normalmente en respiraciones por minuto.



Parámetros

Fisiológicos:

parámetros

que

nos

indican

estado

hemodinámico del paciente. 

Temperatura: magnitud referida a las nociones comunes de caliente, tibio, frío que puede ser medida, específicamente, con un termómetro.



Tortuga: Nombre común de diversas especies de reptiles quelonios que se caracterizan por poseer un caparazón de placas óseas recubierto por placas córneas al cual están soldadas las costillas.

TABLA DE CONTENIDO INTRODUCCIÓN ................................................................................................... 15 DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA ......................................................................... 17 OBJETIVOS ........................................................................................................... 18 GENERAL .......................................................................................................... 18 ESPECÍFICOS ................................................................................................... 18 1.1 ESTADO DEL ARTE .................................................................................... 19 1.2 MARCO TEORICO ....................................................................................... 21 1.2.1 TEMPERATURA CORPORAL ............................................................... 21 1.2.2 Sistema circulatorio:............................................................................... 22 1.2.3 Sistema Respiratorio.............................................................................. 24 2.

METODOLOGÍA .......................................................................................... 32

2.1

Tipo de estudio............................................................................................. 32

2.2

Universo.................................................................................................... 32

2.3

Población y Muestra ................................................................................. 32

2.4

Diseño experimental ................................................................................. 32

3. RESULTADOS................................................................................................... 35 3.1. ANÁLISIS ESTADÍSTICO. ........................................................................ 35 3.2

ANÁLISIS DE DATOS .................................................................................. 35

3.3

DISCUSIÓN ................................................................................................. 41

CONCLUSIONES ........................................................................................... 46

IMPACTO ....................................................................................................... 47

RECOMENDACIONES ................................................................................... 48

vii

BIBLIOGRAFÍA ............................................................................................... 49

ANEXOS ......................................................................................................... 51

viii

LISTA DE FIGURAS

Figura 1

Vista transversal de una tortuga se observan los pulmones ( 8)

Figura 2

Anatomía del tracto respiratorio de una (Chelonoides pardalis)

Figura 3

La anatomía del tracto respiratorio de una de (Geochelone pardalis), un solo

pulmón y su respectivo bronquio.

Figura 4

Mapa Satelital Zoológico Matecaña, Pereira, Risaralda

Figura 5

Disposición anatómica de los electrodos en (Chelonoidis

carbonaria) Tortuga morrocoy de patas rojas.

Figura 6

Comportamiento de la frecuencia cardiaca para muestreos 1, 2, 3, en donde

se demuestra la fluctuación de los datos con respecto a los tres muestreos.

Figura 7

Comportamiento de la frecuencia respiratoria para los tres muestreos, en

donde se muestra la fluctuación de los datos con respecto a los tres muestreos.

Figura 8

Comportamiento de la temperatura para los tres muestreos, en donde se

observa la homogeneidad de los datos para los tres muestreos.

Figura 9

Comportamiento de la saturación de oxígeno para los tres muestreos, en donde se observa la fluctuación de los datos para los tres muestreos.

LISTA DE CUADROS

Cuadro 1

Descripción estadística de los datos obtenidos de las 35 constantes fisiológicas en (Chelonoidis carbonaria), Tortuga Morrocoy de patas rojas, en relación con los tres muestreos.

Cuadro 2

Rangos de Frecuencias Fisiológicas

LISTA DE ANEXOS

Anexo 8.1

Equipo Multiparametros ZONDAN 120D a y b) Monitor, c)

Cable de electrodos. d) Medidor de SPO2 e) Eléctrodos f) Convertidor de medidor de SPO2, g) Termómetro.

Anexo 8.2

Indivíduos Muestreados. H, I, J, K, L. (Chelonoidis carbonaria),

M. (Habitat Chelnoidis carbonaira).

Anexo 8.3

Procedimiento de la toma de frecuencias, con posicionamiento

de os electrodos y respectiva anotación de los datos obtenidos N, O, P, Q, R, S, T, U, V, W.

Anexo 8.4

Formato de Historia Clínica

RESUMEN DEL PROYECTO

Considerando la gran diversidad de especies silvestres, la determinación de algunas de las múltiples variables fisiológicas de cada una en su estado natural o en cautiverio, puedo llegar a ser difícil, dispendioso y generar datos erróneos o difícilmente similareres por las consecuencias que generan el estrés.

Para el caso del manejo de las tortugas morrocoy (Chelonoidis carbonaria) poco es lo que se reporta al respecto, más aun si se concideran las diferencias intraespecíficas dependientes de las condiciones de vida. Este estudio, estableció en la población de tortugas morrocoy (Chelonoidis carbonaria) del zoológico de Matecaña, los parámetros fisiológicos de frecuencia cardíaca, frecuencia respiratoria, saturación de oxígeno y temperatura, modificando los electrodos del equipo Multiparámetros ZONDAN 120D a la anatomía de los individuos. Los resultados logrados mostraron variaciones de las constantes fisiológicas monitoreadas a temperatura ambiente homogénea, dando como resultado la estandarización del equipo y la efectividad para el uso en quelonios al momento de realizar un examen clínico. Para el proceso de obtención de las constantes fisiológicas se observaron factores como la buena nutrición del animal, el estado de salud basal (se evalúo la presencia de alguna anomalía a nivel externo), la no presencia de patologías; analizando variables como el sexo y los posibles cambios de medio ambiente; de igual manera, el estrés se puede presentar por el manejo de los pacientes, además se resalta el protocolo utilizado para medición de los parámetros fisiológicos mediante el uso del equipo en quelonios.

Los datos obtenidos en el estudio demostraron la efectividad del equipo multiparametros ZONDAN 120D, al momento de monitorear las constantes fisiológicas en quelonios.

xii

PALABRAS CLAVE

Estandarización, Examen Clínico, Morrocoy, Multiparametros ZONDAN 120D, Parámetros fisiológicos, Tortugas, Valores normales.

ABSTRACT

Considering the huge diversity of wild species, the determination of some of the multiples physiological variables each one in a natural state or captive it can be difficult, laborious and it can generate wrong data or hardly similarities because of the consequences the stress generates.

In the case of the red footed tortoises (Chelonoidis carbonaria) management there are few reports about it, even though if we considerate the intraspecific differences which depend on life conditions. this study strablished on the red footed tortoises (Chelonoidis

carbonaria)

population

Matecaña’s

zoo,

the

physiologic

parameters of cardiac frequency, breath frequency, oxygen saturation and temperature,

modificating

electrodes

from

the

Multi-parameter

equipment

ZONDAN 120D to the anatomy of the individuals. The achieved results showed variations of the physiologic constants monitored in a normal homogeneous temperature giving a result of equipment standardization and the effectiveness to the use of it on chelonian at the moment of doing a clinic exam. To the obtaining process of the physiologic constant will see factors like good nutrition of the animal, the basal health state (it is evaluated the presence of an anomaly in the external level) no presence of pathologies; analyzing variables like sex and possible changes in the environment; likewise stress can be presented due to the patient management, also it is important the used protocol to the measurement of the physiologic parameters through the use of the equipment on chelonian.

xiii

The obtained data in the studies show the efectivity of the multi-parameter ZONDAN 120D equipment, at the momento of monitoring the physiologic constatn on chelonian.

KEY WORDS

Standardization, Clinic exam, multi-parameter ZONDAN 120D equipment, Physiologic parameters, tortoises, normal values.

xiv

INTRODUCCIÓN

Cada individuo tiene una capacidad y un desempeño fisiológico que varía en todas las especies, de ahí se desprende la necesidad de estudiar las diferencias fisiológicas que se presenten de un animal a otro, con el fin de obtener nuevos métodos para facilitar la evaluación y el diagnostico en diversos animales (Cunningham, 2009). Al evaluar los parámetros normales de un animal como la temperatura, frecuencia cardiaca, frecuencia respiratoria y saturación de oxígeno, se utilizan métodos eficaces para el estudio relacionado con éstos cambios, mediante el empleo de elementos y equipos importantes para el diagnóstico de enfermedades

alteraciones,

estos

elementos

incluyen;

fonendoscopio,

termómetro, sonógrafo, ultra-sonógrafo, equipo medidor de multiparametros.

Al comparar cada equipo se establece la relación que existe entre la correcta medición de las constantes, el correcto uso de los equipos, para determinar su óptimo funcionamiento, empleando equipos análogos que permiten que esta medición sea directa, lo cual accede a un correcto abordaje del paciente y selección de los elementos apropiados para su valoración médica, incluso de las posibles alteraciones que lleguen a presentarse cuando estas constantes se vean afectadas, en un individuo (BRACK EGG, 2000) .

El desarrollo de nuevas técnicas para la toma de las constantes fisiológicas en tortugas morrocoy de patas rojas (Chelonoidis carbonaria), se ven mejoradas mediante la ayuda del equipo multiparametros ZONDAN 120D, se abordaran aspectos como partes anatómicas, para la posición de los electrodos, lo cual ayudara a una buena y correcta medición de las constantes fisiológicas. Este proyecto se desarrolló con el fin de medir y estandarizar las constantes fisiológicas normales de la tortuga Morrocoy (Chelonoidis carbonaria) del Zoológico Matecaña,

mediante el uso del multiparametros ZONDAN 120D, y facilitar el examen clĂnico en estos animales, tratando de dictar un diagnĂłstico rĂĄpido y acertado.

DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA

En la actualidad la información de estudios realizados en monitoreo de frecuencias fisiológicas en tortuga morrocoy (Chelonoidis carbonaria) es muy escasa, al igual que el correcto uso del equipo multiparametros ZONDAN 120D para la toma de constantes fisiológicas en estos animales, ya que se deben tener en cuenta sistemas los cuales ayuden a medir estos parámetros fisiológicos, siendo costoso para el monitoreo correspondiente al examen clínico de esta especie silvestre.

Teniendo en cuenta las problemáticas que pueden afectar a los quelonios como son la temperatura principalmente, ya que el metabolismo de estos animales depende de la termorregulación y al presentar cambios de temperatura todas las constantes fisiológicas varían, alterando los datos arrojados por en la monitorización del paciente. He ahí donde se podría responder ¿cómo el equipo multiparametros ZONDAN 120D permite la correcta medición de los parámetros fisiológicos de la tortuga morrocoy (Chelonoidis carbonaria)?

OBJETIVOS

GENERAL

Estandarizar el uso del equipo Zondan 120D en tortuga Morrocoy (Chelonoidis carbonaria), en el Zoológico de Matecaña, Pereira, Risaralda, (Colombia).

ESPECÍFICOS Evaluar la efectividad del equipo multiparámetros ZONDAN 120 D sobre la medición de constantes fisiológicas.

Establecer rangos de las constantes fisiológicas normales en tortuga Morrocoy (Chelonoidis carbonaria), reportandolos en tablas como referencia hacia otros estudios..

Establecer un protocolo de uso del equipo de multiparámetros Zondan 120D en tortuga Morrocoy (Chelonoidis carbonaria).

MARCO DE REFERENCIA

1.1 ESTADO DEL ARTE Las tortugas se encuentran en peligro de extinción, por lo que merecen un cuidado muy dedicado; al usar equipos como ayuda en el examen clínico de algún quelonio, como lo es un sonógrafo para medir la frecuencia cardiaca y un multiparametros para poder medir la mayor parte de las constantes fisiológicas, se deben tener en cuenta factores como la posición de los electrodos, el adecuado uso del equipo y aspectos físicos del animal. Estos equipos hacen más fácil el monitoreo de estos animales ya que por su grueso caparazón es difícil sentir su frecuencia cardiaca, frecuencia respiratoria, saturación de oxigeno entre otras. Mediante el uso del sonógrafo se podría monitorear la frecuencia cardiaca, pero con el uso del multiparametros Zondan120D se monitorearía la mayoría de constantes fisiológicas al tiempo, teniendo una mayor efectividad y produciendo un menor estrés en el momento de hacer el manejo del paciente.

Los estudios realizados por profesionales en el área de fauna silvestre, han resultado en la publicación de artículos los cuales nos dan diversa información de cada especie con el fin de justificas las investigaciones relacionadas con estos animales. El manejo de tortugas es muy dispendioso gracias a su anatomía y fisiología, las cuales son muy diferentes al resto de animales

Las tortugas terrestres son una familia cosmopolita bastante numerosa que reúne cerca de 42 especies vivientes (agrupadas en 15 géneros), que posee la distribución más amplia de todas las tortugas continentales con representantes en América, Europa, África y Asia y muchas islas oceánicas; esta familia se caracteriza por sus caparazones altos en forma de cúpula o domo, por tener las extremidades gruesas y cilíndricas recubiertas por fuertes escamas y osteodermos

que protegen la cabeza cuando ésta se retrae dentro de la concha. Las extremidades se encuentran adaptadas para vivir en la tierra, soportar el peso del cuerpo y excavar galerías, por lo que tienen forma cilíndrica “elefantina”, carecen de palmeaduras, poseen uñas bien desarrolladas y tienen únicamente dos falanges

cada

dígito,

los

cuales

son

incapaces

moverse

independientemente. Los representantes de esta familia no tienen glándulas de almizcle. Son animales de hábitos diurnos y son vegetarianos (Rueda J, 2007) .

La forma alta del caparazón contribuye a aumentar la capacidad pulmonar, regular la temperatura corporal y reducir el ataque de los predadores; el puente es muy grande como resultado de una menor flexibilidad de los miembros que en las tortugas acuáticas. En las áreas de simpatría entre Chelonoidis carbonaria y C. denticulata, las coloraciones de la cabeza, el caparazón y las extremidades se agudizan, posiblemente como un mecanismo de aislamiento reproductivo (Rueda J, 2007).

Las extremidades de los quelonios terrestres sobresalen de ambos lados del animal y por eso la musculatura se fatiga pronto, haciendo que la marcha resulte un tanto penosa. La parte superior del caparazón se denomina espaldar y la parte ventral se denomina peto o plastrón. El caparazón está formado por huesos dérmicos y se compone por aproximadamente 60 huesos, los cuales se forman por medio de la cintura modificada de los miembros torácico y pelviano, las vértebras del tronco, el sacro y las costillas. Estos elementos quedan recubiertos por escamas epidérmicas, queratinizadas denominadas escudos (McArthur, Wilkinson, & Meyer, 2004).

La tortuga morrocoy (Chelonoidis carbonaria) de tamaño mediano que llega a crecer hasta unos 45 cm y pesar unos 8 kg, si bien la talla promedio para ambos sexos es de 30 cm; pose la ranfoteca maxilar con una superficie trituradora bien desarrollada, apta para macerar la vegetación de la cual se alimenta; el caparazón

de de color negro (en las poblaciones cisoandinas) y café oscuro (en las poblaciones transandinas), con una nítida mancha central amarilla o naranja-rojiza sobre cada escudo vertebral y costal, algunas de las escamas del dorso de la cabeza son amarillo-naranja o (rojas) y muchas de las escamas de las patas tienen los extremos apicales de color rojo brillante o naranja y casi nunca se superponen entre sí; el plastrón rígido tiene un color amarillento y muchas negruzcas en la región abdominal. (Rueda J, 2007).

Cuando los individuos alcanzan un tamaño superior a los 15-18 cm, se hacen evidentes las diferencias sexuales (Rueda J, 2007).

Es una especie que prefiere las áreas abiertas no selváticas, se las encuentra usualmente cerca de los caños y bosques de galería, en las periferias de sabanas, praderas de pastos y bosques secos (Rueda J, 2007).

1.2 MARCO TEORICO Brack Egg (2000) reporta que “denominan signos vitales, a las señales o reacciones que presenta un ser vivo las cuales revelan las funciones básicas de un organismo”. Los signos vitales son: Respiración, Ritmo Cardiaco, Reflejo Pupilar, Temperatura y Presión Arterial. 1.2.1 TEMPERATURA CORPORAL

La temperatura corporal es una condición vital necesaria para mantener la intensidad de los procesos biológicos y es la resultante de un balance entre la producción de calor y su pérdida. El órgano encargado de la regulación de la temperatura es el hipotálamo y se encuentra ubicado en el cerebro. La producción de calor en el organismo depende de la intensidad o velocidad del metabolismo, este a su vez depende de la actividad muscular, el tono muscular y la acción

dinámica específica de los alimentos. La temperatura no es uniforme en todo el cuerpo, y es imposible establecer una temperatura media, por lo que se determinan sitios específicos para la medición de la temperatura, los métodos clásicos para medir la temperatura son: bucal, axilar, inguinal, rectal e intracloacal. La intracloacal es considerada la más segura en comparación con la bucal, la axilar y la inguinal en estos animales, debido a que en su medición no intervienen factores físicos como puede ser el de que el paciente no mantenga la boca completamente cerrada mientras dura el proceso de determinación de la temperatura oral; puede variar diariamente entre individuos de diferentes especies (Hill R., 2006).

Termorregulación:

Los quelonios son heliotermos y su escala de temperatura corporal varía entre los 22 y los 33°C. Muchas especies pequeñas toman el sol para calentarse. Debido a su caparazón les resulta difícil bajar su temperatura y por eso buscan la sombra entre la vegetación. Los quelonios que viven en áreas subtropicales o templadas hibernan durante los meses de invierno al verse afectadas por las bajadas temperaturas (O´Malley, 2007).

1.2.2 SISTEMA CIRCULATORIO

El corazón se sitúa en el plano mediano ligeramente caudal a la cintura torácica en la cavidad pericárdica y separado de la parte craneal de la cavidad ventral corporal. Es tricameral con una separación interventricular incompleta, aunque la circulación sistémica y pulmonar quedan separadas. Hay dos cayados aórticos. La aorta izquierda da lugar a las arterias celiaca, gástrica izquierda y mesentérica antes de unirse a la aorta derecha caudalmente al corazón. Como todos los

reptiles el drenaje venoso de los miembros pélvicos de dirige a los riñones donde forma el sistema porta renal (O´Malley, 2007).

Las tres cámaras del corazón se encuentran en el plano frontal inmediatamente por encima del peto, en la línea media craneal al hígado. Cuenta con dos atrios (izquierdo y derecho) y una sola división funcional del ventrículo. La aurícula derecha tiene una importante pared muscular y recibe la sangre oxigenada de fuentes, incluyendo las venas precava izquierda y derecha, la vena postcaval y la vena hepática izquierda. La sangre entra en la aurícula derecha, a través del seno venoso que también tiene una capa muscular delgada. La aurícula izquierda recibe sangre de las venas pulmonares izquierda y derecha. Mientras que solo un único ventrículo está presente, una serie de pliegues musculares permite el control del flujo de sangre oxigenada y desoxigenada en los diferentes circuitos arteriales del cuerpo.

Las curvas de la aorta van dorso-caudalmente, alrededor del corazón y dos carótidas, los troncos arteriales de la subclavia corren una distancia corta, cranealmente a la división en el borde caudal de la glándula tiroides. Estos son a menudo evidentes en la ecografía. Un pequeño timo se encuentra entre las arterias carótida y subclavia de izquierda a derecha (McArthur, Wilkinson, & Meyer, 2004)

El ventrículo esta subdividido en tres pequeñas cámaras o cavas (cavas arteriosa, venosa y pulmonar, de izquierda a derecha, respectivamente). Dado que las tres cavas no están separadas totalmente por paredes musculares y la contracción cardiaca del ventrículo es de una sola fase (no hay diástole ni sístole), la sangre que esta oxigenada (sistémica) y la desoxigenada se mezclan y salen simultáneamente a través de todos los troncos arteriales. La sangre que se encuentra en la cava pulmonar fluye hacia el tronco pulmonar y la sangre en el cavum venosum fluye hacia la aorta. La estructura del ventrículo puede variar en

algunos grupos de reptiles de acuerdo a las necesidades fisiológicas que demandan.

1.2.3 SISTEMA RESPIRATORIO

El tracto respiratorio superior se introduce el exterior a través de los orificios nasales externos, e internamente a través de la orofaringe, desde el nares se abre a un vestíbulo queratinizado, que se alinea con epitelio olfativo dorsal y ventral del epitelio mucoso.

Este portal se divide craneal por un tabique cartilaginoso en fosas nasales derecha e izquierda. Carece de cornetes y de senos y se extiende caudalmente en un solo paso que está por encima del paladar duro y la apertura a través de una cavidad ventral en la faringe en la coana. No hay paladar blando. (Fig. 1) (McArthur, Wilkinson, & Meyer, 2004).

Fig 1. Corte transversal de una tortuga se observan los pulmones (8)

Fuente: Stuart Mcarthur, Roger Wilkinton y Jean Meyer, 2004

El tracto respiratorio inferior consta de la glotis, laringe, tráquea, emparejados bronquios y los pulmones compartimentados. La tráquea, los bronquios y los pulmones están cubiertos por una ciliadas glandulares, epitelio que es pobre en la eliminación de material extraño. La tráquea se divide en los bronquios pares relativamente craneal en la mayoría de los quelonios y la respiración no se vea obstaculizada cuando la cabeza y el cuello se retiran. El pulmón derecho e izquierdo son de tamaño similar, grandes, en forma de saco, estructuras con tabiques que los divide en sacos periféricos, áreas equivalentes a los alveolos de los mamíferos (McArthur, Wilkinson, & Meyer, 2004). El pulmón derecho puede ser mayor que el izquierdo. Los pulmones están en contra del caparazón dorsal y por encima de las vísceras.

Fig. 2. Anatomía respiratoria de una (Chelonoides pardalis)

Fuente: Stuart Mcarthur, Roger Wilkinton y Jean Meyer 2004

Fig.3. La anatomía respiratoria de (Geochelone pardalis), un solo pulmón y su respectivo bronquio.

Fuente: Stuart Mcarthur, Roger Wilkinton y Jean Meyer 2004

Los alveolos de los quelonios y de los mamíferos difieren en que están compartimentados. El intercambio de oxígeno se produce en la superficie reticulada de estos compartimentos. Los pulmones pueden actuar como un órgano de flotación en muchas tortugas acuáticas y semi-acuáticas. En consecuencia, se producen alteraciones de flotación en algunos casos de enfermedades respiratorias. Las anormalidades de flotación también se asocian con otras condiciones tales como el escape de aire de los pulmones a la cavidad celomica o exceso de gases en el sistema digestivo, por ejemplo, después de la ingestión de un cuerpo extraño como una bolsa de platico (McArthur, Wilkinson, & Meyer, 2004).

Los quelonios no poseen un diafragma funcional muscular que separa la cavidad torácica y abdominal. Los pulmones izquierdo y derecho son sin embargo diferentes y están separados por una membrana vertical fuerte. El caparazón externo rígido, impide la ventilación a travez de movimientos costales, incluido por 26

los movimientos de las vísceras, extremidades y anillos óseos, por lo tanto responsable de las alteraciones en la presión intrapulmonar (McArthur, Wilkinson, & Meyer, 2004). Una membrana horizontal pleuroperitoneal (Horizontal al tabique), o pseudodiafragma, separa la cavidad celomica del espacio aéreo, pero a diferencia de la membrana de los mamíferos, esta membrana no sufre el movimiento muscular para ayudar a la ventilación. Efectivamente el tabique horizontal se tensa y luego se tira a la baja por movimientos de las extremidades (McArthur, Wilkinson, & Meyer, 2004).

Los pulmones son esponjosos y ocupan la mitad dorsal de la cavidad corporal, aunque dicho volumen se reduce a la quinta parte cuando retraen la cabeza y las extremidades. Se encuentran unidos dorsalmente al periostio del espaldar y también finalmente a la cintura torácica y pelviana. No están rodeados por cavidad pleural y están separados de la parte ventral de la cavidad corporal y de las vísceras por un delgado septo pospulmonar no muscular que no toma parte activa en la respiración. Los pulmones de los reptiles son multicamerales, con un bronquiolo intrapulmonar único que se ramifica en una red de bronquiolos y fovéolas (estructuras que cumplen la misma función que los alveolos), ricamente vascularizados (O´Malley, 2007)

Los quelonios son pacientes difíciles desde el punto de la anestesia, ya que pueden desencadenar fácilmente el reflejo de inmersión y hacen uso de la respiración anaerobia. Presentan los niveles más altos de bicarbonato (HCO3) de todos los vertebrados para que actúe como tampón cuando sube el ácido láctico como consecuencia del metabolismo anaeróbico (O´Malley, 2007).

1.3

MARCO LEGAL

Decreto; Ley 2811 de 1974

Art 247: asegura la protección y manejo de la fauna silvestre. Art 248: define el sistema de aplicación. Art 258 (Literales C y D): facultades de administración para la protección de la fauna silvestre. Art 266: asegura conservación, fomento y aprovechamiento de los recursos hidrobiológicos.

Decreto; Ley 1608 de 1978

Regula la conservación, restauración y fomento de la fauna silvestre. Art 1, 2,3: objetivos, ámbito de aplicación. Art 5: especies que no cumplen todo su ciclo de vida en el medio acuático. Art 220: prohibiciones generales. Resoluciones donde se establecen vedas, prohibiciones y restricciones al ejercicio de la caza.

Ley 84 de 1989.

Objetivo: Prevenir y tratar el dolor y el sufrimiento de los animales. Promover la salud y bienestar de los animales. Erradicar y sancionar el maltrato y actos de crueldad contra los animales. Desarrollar medidas efectivas para la preservación de la fauna silvestre.

Ley 99 de 1993.

Desaparece el Inderena, se crea el Ministerio del Medioambiente. Se crean las CARs y los DAMAs, con autonomía para legislar en materia ambiental en sus jurisdicciones.

Dec. 309 de 200: Reglamenta la investigación científica sobre diversidad biológica. Ley 611 de 2000: Se dictan normas para el manejo sostenible de especies de fauna silvestre y acuática.

Resol 1172 de 2000: Por el cual se establece el sistema nacional de identificación y registro de los especímenes de fauna silvestre en condiciones ex situ. Dec 4688 de 2000: Reglamenta la caza comercial.

Derechos y Deberes.

Art 8: protección de riquezas naturales. Art 58: función ecológica de la propiedad. Art 67: educación ambiental. Art 79: derecho de un ambiente sano. Art 80: planificación y manejo sostenible de los recursos naturales por parte del estado. Art 81: regulación por salida e ingreso de recursos genéticos. Art 95: deber de la ciudadanía de proteger los recursos naturales.

1.4

MARCO GEOGRÁFICO

El proyecto se realizara en el Zoológico Matecaña en la ciudad de Pereira, departamento de Risaralda.

Temperatura: Varía entre 15º y 22º Centígrados

Población: 897.509 Habitantes

Economía: Agricultura, ganadería, industria, comercio y turismo

Área del Departamento: 4.140 km²

Localización: El municipio de Pereira está en el centro de la región occidental del territorio Colombiano, en un pequeño valle formado por la terminación de un contra fuerte que se desprende de la cordillera central. Su estratégica localización central dentro de la región cafetera, lo ubica dentro del panorama económico nacional e internacional, estando unido vialmente con los tres centros urbanos más importantes del territorio nacional y con los medios tanto marítimos como aéreos de comunicación internacional (Figura 4).

Al norte: Municipios de Dosquebradas, Santa Rosa de Cabal y Marsella. Al sur: Municipio de Ulloa (Departamento del Valle), Finlandia y Salento (Quindío). Al oriente: Departamento del Tolima con Anzoategui, Santa Isabel, Ibagué y zona de los nevados. Al occidente: Municipio de Cartago, Anserma Nuevo (departamento del Valle), Balboa, La Virginia. Población Animal: se encuentran 139 especies y 535 individuos. Población Animal Muestreo: se utilizaron 18 individuos para la realización del muestreo.

Figura 4. Mapa Satelital Zool贸gico Mateca帽a, Pereira, Risaralda.

Fuente: Googlemaps, 2012

2.1

METODOLOGÍA

Tipo de estudio

Este trabajo es de tipo descriptivo y transversal, sobre el cual las variables fisiológicas objeto de estudio serán registradas y descritas en un momento específico.

2.2

Universo

El estudio se desarrolló en el Zoológico Matecaña, Pereira, Risaralda.

2.3

Población y Muestra

La población objeto de estudio correspondió a 18 individuos de la especie (Chelonoidis carbonaria) tortuga Morrocoy del Zoológico, distribuidos en el Hogar de paso (n= 8) y en exhibición (n=10). Estos individuos son mantenidos en condiciones controladas: sin estrés, alimentación y estado de salud basal normal; fueron muestreados mediante el uso del multiparametros ZONDAN 120D, garantizando la integridad del animal durante su manipulación y la disponibilidad del cuidador, además el equipo se modificó con respecto a la anatomía del animal.

2.4

Diseño experimental

Previamente al análisis los ejemplares muestréales fueron analizados clínicamente para determinar su estado de salud basal mediante la historia clínica de cada animal (Anexo 8.3). Posteriormente se colocaron los electrodos con pinzas (5) en

diferentes posiciones anatómicas: miembros anteriores, miembros posteriores y a nivel de la porción craneomedial del caparazón (Figura 5).

2.4.1. Frecuencia Cardiaca

A) A nivel miembro anterior derecho (MAD) e izquierdo (MAI) en radio y cubito; B). A nivel de miembro posterior derecho (MPD) e izquierdo (MPI) en tibia y peroné (Figura 5).

2.4.2. Frecuencia Respiratoria

El electrodo (C) se ubicó a nivel de las placas costales No. 3 y neural No. 3 del caparazón (Figura 5).

2.4.3. Temperatura y Saturación de Oxígeno

La temperatura y la saturación de oxígeno se midieron intracloacalmente (D), mediante la utilización de un dispositivo convertidor usado para neonatos, este proceso se realizó con cada animal y se efectuaron tres tomas repetidas a intervalos de cinco minutos por cada individuo, se tuvo en cuenta la temperatura ambiental (Figura 5).

En el manejo de estos animales al momento de la colocación de los electrodos, se desarrolló un protocolo de restricción en donde se estiro cada miembro para colocar los electrodos que midieron la frecuencia cardiaca, luego se colocó el electrodo que midió la frecuencia respiratoria, esto se realizó con un ayudante quien levanta el animal, posteriormente se expuso la cloaca y se introdujo el convertidor que toma la saturación de oxígeno y se tomó el primer dato, posteriormente se introdujo el termómetro del equipo y se tomó la temperatura, se realizó este proceso con cada animal al momento de muestrear.

Los datos se observaron por medio de estadística descriptiva, luego se analizaron tomando las medias de los diferentes parámetros, previo test de normalidad. Para ver diferencias entre los muestreos, se realizó un coeficiente de regresión de Pearson.

Figura 5. Disposición anatómica de los electrodos en (Chelonoidis carbonaria) Tortuga morrocoy de patas rojas.

Fuente: Stuart Mcarthur, Roger Wilkinton y Jean Meyer 2004 Electrodos en MA, (A), electrodos de MI, (B), electrodo caparazón o plastrón (C), termómetro, (Cloaca, D), convertidor SPO2 (Cloaca, D).

3. RESULTADOS

3.1.

ANÁLISIS ESTADÍSTICO.

Los datos se analizaron tomando las medias de los diferentes parámetros, previo test de normalidad. Con aplicación de coeficientes de regresión de Pearson para el análisis de los datos. Los valores de todos los parámetros evaluados se expresaron como media  desviación estándar.

3.2

ANÁLISIS DE DATOS

El registro de la actividad cardíaca expresada para el estudio en frecuencia cardiaca (Fc), evidenció una estrecha reciprocidad entre sus datos con una varianza promedio de 21,9 Lpm para los tres muestreos, de los cuales los valores obtenidos presentan una media para la Fc de 74,34,72 Lpm, con intervalos mínimos y máximos entre 65 y 80 Lpm. Para el caso particular de los muestreos 1 y 3, no se observan diferencias estadísticas significativas (p0,05), (Figura 6), con Fc de 74.835.09 Lpm y 74,674,70 Lpm, como si se observa en el Muestreo 2 (73,444,36 Lpm), con respecto a los M1 y M3, como se observa en el Cuadro 1.

Cuadro 1. Descripción estadística de los datos obtenidos de las constantes fisiológicas en (Chelonoidis carbonaria), Tortuga Morrocoy de patas rojas, en relación con los tres muestreos. Variable

Observaciones

Obs. con

Obs. sin

datos

perdidos

Mínimo

Máximo

Media

Desviación típica

FC 1

74,833

5,090

FC 2

73,444

4,355

FC 3

74,667

4,703

FR 1

35,111

2,632

FR 2

32,889

1,937

Variable

Observaciones

Obs. con

Obs. sin

datos

perdidos

Mínimo

Máximo

Media

Desviación típica

FR 3

33,722

1,809

27,939

0,245

27,717

0,154

27,928

0,196

SPO2 A

75,778

3,474

SPO2 B

74,000

3,464

SPO2 C

75,056

2,796

*FC1:

Frecuencia Cardiaca muestreo 1. FC2: Frecuencia Cardiaca muestreo 2. FC3:

Frecuencia Cardiaca muestreo 3. FR1: Frecuencia Respiratoria muestreo1. FR2: Frecuencia Respiratoria muestreo2. FR3: Frecuencia Respiratoria muestreo3. T1: Temperatura muestreo 1. T2: Temperatura muestreo 2. T3: Temperatura muestreo 3. SPO2 A: Saturación de oxígeno muestreo 1. SPO2 B: Saturación de oxígeno muestreo 2. SPO2 C: Saturación de oxígeno muestreo 3.

Figura 6. Comportamiento de la frecuencia cardiaca para muestreos 1, 2, 3, en donde se demuestra la fluctuación de los datos con respecto a los tres muestreos. 300 250 200 3ro FC 3 150

2do FC 2 1er FC 1

100

50 0 1

9 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Frente a los datos obtenidos de la frecuencia respiratoria (Fr) en Chelonoidis carbonaria, se diferencia una variabilidad del muestreo 2 (32,891,94 Rpm) con

respecto al muestreo 3 (33,721,81 Rpm) con un p0,05 (ver Cuadro 1), (figura 7). De manera general la Fr registro un valor promedio para los tres muestreos de 33,912,13 Rpm, con intervalos mínimos y máximos de 29 y 39 Rpm y una varianza de 5,33 Lpm. Cuadro 1. Figura 7. Comportamiento de la frecuencia respiratoria para los tres muestreos, en donde se muestra la fluctuación de los datos con respecto a los tres muestreos. 120 100 80 3ro FR 3 60

2do FR 2 1er FR 1

40 20 0 1

10 11 12 13 14 15 16 17 18

En este estudio se observa como la temperatura es oscilante entre 27.5 a 28.5 °C como intervalos mínimos y máximos, con una temperatura promedio de 27,90,72°C, en donde los tres muestreos (M1, 27.940.25°C, M2, 27,720,15°C y M3, 27,930,20°C) fueron similares estadísticamente (p0,05), (Figura 8). Como se evidencia en el Cuadro 1. Con respecto a la variabilidad u homogeneidad de la temperatura se esperaría la fluctuación de las demás variables analizadas.

Figura 8. Comportamiento de la temperatura para los tres muestreos, en donde se observa la homogeneidad de los datos para los tres muestreos. 90

80 70 60 50

3ro T 3

2do T 2 1er T 1

30 20

10 0 1

10 11 12 13 14 15 16 17 18

Los registros de la saturación de oxígeno arrojaron una similitud en los muestreos 1 y 2, registrando un valor promedio de 74,943,24 Bpm, con intervalos de mínimos y máximos de 69 a 82 Bpm. En los muestreos 1 y 2 los valores promedio (78,53,47 Bpm y 74,003,46 Bpm) fueron similares (p0,05), (Figura 9), al contrario el muestreo 3 (75,062,80 Bpm) con relación a los muestreos 1 y 2 presentaron deferencias significativas estadísticamente como se evidencia en la Cuadro 1, aunque los valores registrados en el muestreo 3 arrojaron una mayor correlación de los datos en su distribución.

Figura 9. Comportamiento de la saturaci贸n de ox铆geno para los tres muestreos, en donde se observa la fluctuaci贸n de los datos para los tres muestreos. 250

200

150

3ro SPO2 C 2do SPO2 B

100

1er SPO2 A

0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18

PROTOCOLO

En el manejo de morrocoy de patas rojas (Cheloniodis carbonaria) al momento de realizar un monitoreo mediante el uso del multiparametros ZONDAN 120D, se debe tener en cuenta el siguiente protocolo, el cual se desarrolló para poder realizar un mejor examen de monitorización de estos animales.

Se determinan los animales para el muestreo.

1. Se recoge cada animal del hábitat y se lleva al lugar del muestreo (Clínica del Zoológico). 2. Se limpia el animal correctamente con clorhexidina, se trata de eliminar materia fecal de cada individuo. 3. Se colocan los electrodos en la posición correspondiente, utilizando alcohol como medio de electroconductividad, posicionando al paciente en una superficie plástica. 4. Se establece un tiempo de 5 minutos para que el animal se relaje. 5. Se procede a tomar los datos del monitoreo de las constantes a evaluar. 6. Se retiran los electrodos de animal y se deja descansar aproximadamente de 5 a 10 minutos. 7. Posteriormente se retoma el muestreo del individuo. 8. Al finalizar se limpia el animal y se devuelve al hábitat. 9. Se realiza el mismo procedimiento para cada individuo utilizado en el estudio.

3.3

DISCUSIÓN

De forma general se describen a los reptiles como individuos de temperatura variable, que termoregulan su cuerpo a través de la energía calórica fluctuante en el ambiente (ectotermos) (Seebacher & Franklin, 2004), proveniente de la exposición al sol como conducta típica (Varela, 2002); su temperatura depende por ende de los medios ambientales, geográficos y nutricionales (otra fuente de calorías) a las que estuviesen expuestos, en donde básicamente los animales modifican las funciones biológicas, fisiológicas y bioquímicas como respuesta a un proceso de compensación (Seebacher F. , 2005) (Bulté & Blouin- Demers, 2010). Para el caso particular del estudio, se encontró una temperatura similar en los tres muestreos con una correlación positiva entre los valores obtenidos, lo cual puede significar que la temperatura ambiente fue homogénea al momento de la evaluación de los datos, considerando el número de animales evaluados (n=18). Adicionalmente y como parte importante para la regulación de la temperatura, los animales utilizados en este estudio estaban sometidos a iguales condiciones de nutrición, bajo dietas formuladas en programas especializados como Zootrition®, Diet call®, además de la vigilancia y control de zootecnistas especializados en el área de nutrición de los animales de colección por lo cual los datos presentaron mayor consistencia al no existir fuentes alternas que alteraran el flujo de calorías y por lo tanto la temperatura.

Según Martínez (1994) en Varela (2002), en condiciones ambientales favorables la temperatura cloacal que un reptil presenta oscila en rangos de 34-36°C. No obstante, los valores están sujetos a las condiciones intrínsecas de cada individuo en función de su medio por lo que para este estudio se registraron temperaturas más bajas oscilantes entre 27,8-27,9°C, valores similares a los reportados por Caycedo en el 2008, en Chelonoidis carbonaria de 28,9°C cuando sometió la especie a diferentes protocolos anestésicos y bajo condiciones ambientales diferentes.

Si bien existe una diferencia entre el número de individuos hembras (n=2) y machos (n=16) analizados, la relación de sexo con respecto a la temperatura no presento variación en sus datos, comportándose a su análisis de manera similar con una alta correlación estadística (p  0.005). Con relación a esto, Bulté & Blouin- Demers, 2010 afirman que usualmente las tazas de confort con respecto a la temperatura, dados los procesos de termorregulación influyen en el rápido crecimiento de los animales más aún en especies pequeñas, y sobre los procesos de maduración sexual, en donde los machos se desarrollan más rápido que las hembras, y las hembras por su diferencia en talla requieren de unas tasas metabólicas mas altas para poder termorregularse, mantenerse y reproducirse (Stamps & Krishnan, 1997) .

En cuanto a los resultados obtenidos en la frecuencia cardiaca se observan variaciones con respecto a los tres muestreos, indicando un posibles cambio en la frecuencia, relacionado con el manejo de los animales al momento de la obtención de los datos. Por las pocas investigaciones en este tema se ha dificultado encontrar reportes de un rango de frecuencia cardiaca, posiblemente porque la valoración de este parámetro mediante la auscultación no tiene aplicación práctica en tortugas, ya que suele ser muy baja y depende de la temperatura (Ignasio, 2005), generando rangos poco precisos. Sin embargo Varela (2002), reporta una ecuación en donde el pulso se relaciona con el peso del animal y la temperatura corporal, al ejecutar esta ecuación las pulsaciones por minuto para tortugas de 10 kg de peso, estarían en un promedio de 19.1 Lpm, lo cual difiere de lo encontrado en este estudio donde la frecuencia cardiaca oscila entre 68-80 Lpm. Los datos obtenidos mediante el uso del multiparametros, podrían ser más confiables que dicha ecuación, ya que la toma de la frecuencia cardiaca se hizo directamente en los animales y no dependió de otros factores como el peso.

Por otro lado Caycedo (2008), reporta una frecuencia cardiaca promedio de 31,15 Lpm, bajo condiciones de anestesia, lo cual difiere con lo obtenido en este estudio,

puesto que la acción de los anestésicos disminuye las frecuencias fisiológicas (González, 2012).

Respecto a las condiciones de manejo la presentación de estrés que se establece mediante el eje hipotalámico-hipofisiario, el sistema simpático y las glándulas adrenales, hacen que se desencadene una serie de factores como la producción de glucocorticoides y catecolaminas que alteran la homeostasia del organismo, afectando las funciones fisiológicas (Dìaz, 2008). La fisiología en los animales relacionada con las funciones hormonales, es similar en todos los individuos pero la respuesta al estrés varía en cada animal, lo que se evidenció con la variación de la frecuencia cardiaca en este estudio.

Al igual que la frecuencia cardiaca los datos obtenidos de frecuencia respiratoria en los tres muestreos indicaron una variación, que podría explicarse al manejo de los animales al momento de los muestreos como anteriormente se explica y a los cambios de temperatura que se presentaron en el ambiente durante el traslado de los animales de su hábitat al lugar de muestreo, que ocasionarían jadeo como mecanismo de eliminación de calor, lo cual aumenta la frecuencia respiratoria notablemente (Andreu, 2009), Teniendo en cuenta otros factores como lo son el incremento del metabolismo basal, el cual se transforma en metabolismo activo y produce un aumento importante en el incremento de calor, con el lógico incremento del consumo de oxígeno (Dìaz, 2008), esto podría explicar la variación de los datos obtenidos para la frecuencia respiratoria mediante el uso del multiparametros. Los datos obtenidos muestran una oscilación en los tres muestreos ya que cuando se posiciona el electrodo se debe tener en cuenta el tamaño del animal, el posible grosor del plastrón, la temperatura y el manejo que se le ha hecho al individuo, por lo cual los datos obtenidos varían en cada individuo muestreado dando a conocer un parámetro de medición distinto para cada animal. Caycedo (2008), reporta una frecuencia respiratoria promedio de 4,7 Rpm, bajo efectos de anestesia, lo cual nos puede indicar que los resultados

obtenidos mediante el uso del equipo multiparametros, varían dependiendo el estado físico de los animales, ya que el muestreo se realizó directamente en condiciones normales en cada individuo.

En la medición de la saturación de oxígeno se debe tener en cuenta la hemoglobina, la cantidad de oxígeno que transporta y una buena lectura del pulso cardiaco (Berruezo Joaquín Aldaz, 2002). Con respecto a la saturación de oxígeno, se evidencia una variación marcada en los tres muestreos, posiblemente esta variación se presenta por el aumento de la temperatura, de igual manera la SPO2 va ligada con la frecuencia cardiaca lo cual nos puede indicar que los resultados son acordes con el muestreo ya que al comparar los datos de frecuencia cardiaca y saturación de oxígeno presentan una similitud en los valores obtenidos de las dos constantes.

El oxígeno disuelto en la sangre es importante tenerlo en cuenta, ya que su presión es la que determina tanto el grado de saturación de la hemoglobina como la difusión o movimiento de oxígeno desde la sangre a los tejidos. La hemoglobina presenta un grupo heme con cuatro núcleos los cuales son capaces de unirse cada uno a un oxígeno, por lo tanto cada molécula de hemoglobina es capaz de transportar cuatro moléculas de oxígeno, convirtiéndose en oxihemoglobina; los mayores cambio que pueden alterar la afinidad de la hemoglobina al oxígeno y alterar la saturación de oxígeno, son las altas temperaturas, los cambios de presión de CO2 y la concentracion de iones H+, esto nos puede indicar que los tejidos reciben más oxígeno (Chile, 2003), teniendo en cuenta que los glóbulos rojos son diferentes en los reptiles debido a su forma nucleada, la cantidad de transporte de oxigeno podría ser inferior. Además Freische et al. (2001) en Trachemys scripta, reporta que las células sanguíneas rojas maduras presentan mayor afinidad al oxígeno, por la alta concentracion de ATP y los componentes fosfatos orgánicos presentes.

Al momento de la obtención de los datos, el posicionamiento de los instrumentos de medición fue adecuado, ya que los datos se presentaron similares de individuo a individuo, con un protocolo realizado para evitar los cambios que se puedan presentar al momento del uso del equipo de multiparametros. La temperatura corporal se obtuvo posicionando el termómetro intracloacal junto a la mucosa evitando las heces presentes, los electrodos medidores de la frecuencia cardiaca y frecuencia respiratoria se ubicaron anatómicamente, esperando una relajación del animal para realizar la toma de datos y con respecto a la saturación de oxígeno se usó un convertidor intracloacal en donde se adaptó el medidor siendo específico para esta especie, esto nos ayudó a obtener mejores resultados al realizar los muestreos.

CONCLUSIONES

El multiparametros ZONDAN 120D es un elemento apropiado en la toma de frecuencias (cardiaca, respiratoria, temperatura y saturación de oxígeno) en quelonios, siempre y cuando se realicen las modificaciones pertinentes para la adaptación a la anatomía de las tortugas.

A una temperatura ambiente estable, la temperatura corporal de los individuos de tortuga morrocoy de patas rojas (Chelonoidis carbonaria) no varía y se mantiene homogénea.

Las condiciones de manejo, se comportan como agentes estresores que modifican la respuesta en los valores

de frecuencia cardiaca, frecuencia respiratoria y

saturación de oxígeno, por tanto un apropiado manejo permite generar datos confiables aminorando el efecto del estrés sobre los mismos y permitiendo un examen clínico valido.

La buena nutrición, el buen estado de salud basal y el evitar el estrés, hacen que los animales mantengan su metabolismo normal llevando a que las constantes fisiológicas demuestren este estado.

Este estudio, sirve como base para la realización de otras investigaciones que generen herramientas como ayuda diagnóstica para la clínica de la fauna silvestre.

IMPACTO

Los datos de referencia generados a partir de este estudio permitirán realizar de manera más confiable el examen clínico y por tanto el diagnóstico de animales sanos y enfermos en zoológico o bajo condiciones de cautiverio.

Los protocolos de monitoreo permitirán a los investigadores, médicos y manejadores la disposición adecuada durante el manejo de los animales, para aminorar el estrés.

Este estudio permitirá mejorar las técnicas de muestreo de los parámetros fisiológicos como la Frecuencia cardíaca, Frecuencia respiratoria, temperatura y saturación de oxígeno de los quelonios a través del equipo multiparámetros ZONDAN 120D.

RECOMENDACIONES

Realizar un manejo adecuado del animal para el correcto uso del multiparametros ZONDAN 120D.

Utilizar las medidas correctas de asepsia en el momento de realizar examen clínico a los quelonios del zoológico.

Incluir el personal necesario para el desarrollo del examen clínico completo, evitando el maltrato del animal.

Realizar el examen clínico en un lugar adecuado para que tanto el médico como el paciente se encuentren en condiciones óptimas.

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ANEXOS

Anexo 8.1. Equipo Multiparametros ZONDAN 120D a y b) Monitor, c) Cable de electrodos. d) Medidor de SPO2 e) El茅ctrodos f) Convertidor de medidor de SPO2, g) Term贸metro. a

Fuente: Silva 2011

Anexo 8.2 IndivĂduos Muestreados. H, I, J, K, L. (Chelonoidis carbonaria), M. (Habitat Chelnoidis carbonaira). H

Fuente: Silva 2011

Anexo 8.3. Procedimiento de la toma de frecuencias, con posicionamiento de os electrodos y respectiva anotaci贸n de los datos obtenidos N, O, P, Q, R, S, T, U, V, W. N

Fuente: Silva 2011

Anexo 8.4. Formato de Historia ClĂnica

Cuadro 2. RANGOS DE FRECUENCIAS FISIOLOGICAS Frecuencias

Rango

Frecuencia

Cardíaca

Respiratoria

68-80 Lpm

35-37 Rpm

Temperatura

Saturación Oxígeno

27.8-27.9°C

75-78 Bpm