Ветеринария-2011-09-листалка by Игорь Чуриков

ПУТЕВОДИТЕЛЬ ДЕЛОВОГО ЧЕЛОВЕКА ЗА РУБЕЖОМ: ИНВЕСТИЦИИ, НЕДВИЖИМОСТЬ, КАПИТАЛ, ГРАЖДАНСТВО Журнал предлагает все необходимые вам сведения для организации бизнеса в выбранной стране, профессиональный и полезный для делового человека страноведческий анализ, исчерпывающую деловую информацию и практические сведения о жизни, условиях предпринимательства за рубежом. Рекомендации и советы экспертов журнала ускорят процесс адаптации к социально-экономическим условиям новой страны и предостерегут от возможных многочисленных ошибок, которые зачастую обходятся очень дорого. Авторские рубрики «Свой взгляд» и «Свое дело» сообщат об особенностях образа жизни и ведения бизнеса в разных странах. Задача журнала – помочь вам сделать правильный выбор, сэкономить силы, время, нервы и деньги на поиск достоверных сведений об условиях переезда, жизни, работы и развития бизнеса за рубежом с тем, чтобы вы совершенно спокойно преодолели все возникающие на этом пути препятствия и добились желаемой цели. Миссия журнала – не только давать дельные советы и помогать россиянам благополучно обустраиваться на новом месте, но и транслировать здоровые импульсы консолидации соотечественников, морального и делового сотрудничества земляков и землячеств за рубежом, взаимоподдержки во имя процветания близких по духу людей и нашей большой Родины – России.

индексы: на полугодие – 11825, на год – 11832

индексы: на полугодие – 46021, на год – 46032

09/2011

ЖУРНАЛ «ВЕСЬ МИР – НАШ ДОМ!»

Ветеринария сельскохозяйственных животных

НОВЫЙ ПРОЕКТ ИЗДАТЕЛЬСКОГО ДОМА «ПАНОРАМА»

Председатель редсовета – Спартак А.Н., д-р экон. наук, проф., директор Всероссийского научно-исследовательского конъюнктурного института. Члены редсовета: Шмелев Н.П., д-р экон. наук, проф., академик РАН, директор Института Европы РАН; Ивантер В.В., д-р экон. наук, проф., академик РАН, директор Института народно-хозяйственного прогнозирования РАН; Титаренко М.Л., д-р ист. наук, проф., академик РАН, директор Института Дальнего Востока РАН; Рогов С.М., д-р ист. наук, проф., член-корр. РАН, директор Института США и Канады РАН; Смитиенко Б.М., д-р экон. наук, проф., председатель УМО «Мировая экономика», проректор Финансовой академии при Правительстве РФ; Клейнер Г.Б., д-р экон. наук, проф., член-корр. РАН, зам. директора Центрального экономико-математического института РАН; Королев И.С., д-р экон. наук, проф., член-корр. РАН, зам. директора Института мировой экономики и международных отношений РАН; Паньков В.С., д-р экон. наук, проф. Государственного исследовательского университета – Высшей школы экономики.

На правах рекламы

Ежемесячное издание. Объем – 80 с. Распространяется по подписке, в международных организациях и зарубежных представительствах. http://mir.panor.ru, http://Политэкономиздат.РФ, http://politeconom.ru

Исчерпывающие ответы на злободневные вопросы адаптации за рубежом в каждом номере журнала «Весь мир – наш дом!» – новом проекте Издательского Дома «Панорама», крупнейшего в России издателя деловых, научных и аналитических журналов для профессионалов. 27 журналов из 100 включены в Перечень ведущих рецензируемых изданий ВАК. Конкретно и компетентно – девиз изданий «Панорамы».

Все материалы журнала основаны на нормативных актах и личном опыте авторитетных международных экспертов, дипломатов и участников ВЭД, снабжены наглядными примерами и актуальными данными для принятия верных решений. Условия приобретения электронных версий отдельных статей, а также полных номеров журнала смотрите в разделе «Электронные продукты» на сайте http://www.panor.ru.

Для оформления подписки через редакцию пришлите заявку по электронному адресу podpiska@panor.ru или по факсу (499) 346-2073, а также звоните по телефонам: (495) 749-2164, 211-5418, 749-4273.

09/2011

Издательский Дом «ПАНОРАМА» – крупнейшее в России издательство деловых журналов. Десять издательств, входящих в ИД «ПАНОРАМА», выпускают 95 журналов.

Издательский Дом «ПАНОРАМА» – это: АФИНА www.Бухучет.РФ, www.afina-press.ru

ВНЕШТОРГИЗДАТ

www.Внешторгиздат.РФ, www.vnestorg.ru

МЕДИЗДАТ

www.Медиздат.РФ, www.medizdat.com

Свидетельством высокого авторитета и признания изданий ИД «ПАНОРАМА» является то, что 27 журналов включены в Перечень ведущих рецензируемых журналов и изданий, утвержденный ВАК, в которых публикуются основные научные результаты диссертаций на соискание ученой степени доктора и кандидата наук. Среди главных редакторов наших журналов, председателей и членов редсоветов и редколлегий – около 300 академиков, членов-корреспондентов академий наук, профессоров и столько же широко известных своими профессиональными достижениями хозяйственных руководителей и специалистов-практиков.

НАУКА и КУЛЬТУРА

www.Наука-и-культура.РФ, www.n-cult.ru

ПОЛИТЭКОНОМИЗДАТ

www.Политэкономиздат.РФ, www.politeconom.ru

ПРОМИЗДАТ

www.Промиздат.РФ, www.promizdat.com

СЕЛЬХОЗИЗДАТ

www.Сельхозиздат.РФ, www.selhozizdat.ru

СТРОЙИЗДАТ

www.Стройпресса.РФ, www.stroyizdat.com

Д А

А Н

Т Т Р

ТРАНСИЗДАТ

www.Трансиздат.РФ, www.transizdat.com

С И З

ЮРИЗДАТ

www.Юриздат.РФ, www.jurizdat.ru

www.ИДПАНОРАМА.pф, www.panor.ru

На правах рекламы

Телефоны для справок: (495) 211-5418, 749-4273, 749-2164 Факс: (499) 346-2073

На правах рекламы

ЖУРНАЛ «ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ» № 9/2011 Åæåìåñÿ÷íûé íàó÷íî-ïðàêòè÷åñêèé æóðíàë çàðåãèñòðèðîâàí Ôåäåðàëüíîé ñëóæáîé ïî íàäçîðó çà ñîáëþäåíèåì çàêîíîäàòåëüñòâà â ñôåðå ìàññîâûõ êîììóíèêàöèé è îõðàíå êóëüòóðíîãî íàñëåäèÿ. Ñâèäåòåëüñòâî î ðåãèñòðàöèè ÏÈ ¹ ÔÑ-01650 îò 01 íîÿáðÿ 2004 ã. ISSN 2074-6830 Ðåäàêòîð-ñîñòàâèòåëü Ë.Ã. Äåìèä÷èê, êàíä. âåò. íàóê, äîöåíò Ïðåäñåäàòåëü ðåäêîëëåãèè Ä.È. Ñêîðîäóìîâ, ïðîôåññîð Ðåäêîëëåãèÿ æóðíàëà: Ñ.Í. Ïðåîáðàæåíñêèé, ïðîôåññîð Ñ.À. Áåðåçêèíà, ïðîôåññîð Í.Ì. Êîñòîìàõèí, ïðîôåññîð Ë.Â. Òîïîðîâà, ïðîôåññîð Ã.Ï. Äþëüãåð, ä-ð âåò. íàóê Êîìïüþòåðíàÿ âåðñòêà Í.À. Ãóðñêàÿ Êîððåêòîð Ã.Ñ. Âîëêîâà Æóðíàë ðàñïðîñòðàíÿåòñÿ ÷åðåç êàòàëîãè: ÎÀÎ «Àãåíòñòâî «Ðîñïå÷àòü», «Ïðåññà Ðîññèè» (èíäåêñ – 84834) è «Ïî÷òà Ðîññèè» (èíäåêñ – 12396), à òàêæå ïóòåì ïðÿìîé ðåäàêöèîííîé ïîäïèñêè. Òåë. îòäåëà ïîäïèñêè: 8 (495) 749-42-73, 749-21-64, 664-27-61 ©ÈÄ «Ïàíîðàìà», ÇÀÎ «Ñåëüõîçèçäàò» http://veterinar.panor.ru Òåë. ðåäàêöèè: 8 (495) 922-60-71 Îòäåë ðåêëàìû: òåë. 8 (495) 922-53-48 reklama@panor.ru Ïî÷òîâûé àäðåñ ðåäàêöèè: 125040, Ìîñêâà, à / ÿ 1, ÎÎÎ «ÏÀÍÎÐÀÌÀ» Àäðåñ ýëåêòðîííîé ïî÷òû ðåäàêöèè: article2005@mail.ru Ïîäïèñàíî â ïå÷àòü: 10.08.2011 Ôîðìàò 60õ88 / 8. Áóìàãà îôñåòíàÿ. Ïå÷. ë. 10 Ðåäàêöèÿ æóðíàëà «Âåòåðèíàðèÿ ñåëüñêîõîçÿéñòâåííûõ æèâîòíûõ» âûðàæàåò íàäåæäó, ÷òî ÷èòàòåëè, ðóêîâîäèòåëè õîçÿéñòâ, ñïåöèàëèñòû ïðîäîëæàò èëè îôîðìÿò âíîâü ïîäïèñêó íà íàø æóðíàë, à òàêæå óñòàíîâÿò âçàèìîâûãîäíîå äåëîâîå ñîòðóäíè÷åñòâî ñ îðãàíèçàöèÿìè è ôèðìàìè, ëþáåçíî ïðåäîñòàâèâøèìè ñâîè ìàòåðèàëû äëÿ ïóáëèêàöèè â äàííîì íîìåðå æóðíàëà. Ìíåíèå ðåäàêöèè íå âñåãäà ñîâïàäàåò ñ ìíåíèåì àâòîðîâ ñòàòåé.

СОД Е РЖ А Н И Е ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ОТРАСЛИ С. Золотухин, Д. Васильев, А. Мелехин, Е. Бульканова, Н. Феоктистова, Б. Пожарникова Бактериофаги малоизученных энтеробактерий и перспективы их применения в ветеринарии ........................................ 4 Распространенность опухолей среди животных ........... 10 ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ Лейкоз крупного рогатого скота ..................................... 12 Н. Ковалюк, В. Сацук, Е. Мачульская Современные методы диагностики лейкоза крупного рогатого скота................................................ 16 Д. Пономаренко, С. Абакин, Е. Калашникова Особенности диагностики и клиникоиммунологического проявления лейкоза крупного рогатого скота................................................ 20 И. Шайсултанова Лейкоз крупного рогатого скота и оздоровительные мероприятия.................................. 25 В. Мадисон Особенности борьбы с лейкозом в личных хозяйствах ..................................................... 27 Применение препарата Лигфол при лейкозе крупного рогатого скота................................................ 32 ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ И. Прохорова Гельминтозы свиней......................................................... 35 Боррелиоз свиней ............................................................. 40 НЕЗАРАЗНЫЕ БОЛЕЗНИ 3. Зелхорст, Й. Дембски, Л. Шилкина Как предотвратить каннибализм свиней........................ 42

АКУШЕРСТВО И ГИНЕКОЛОГИЯ А. Щеголёнкова, Ю. Терентьева, М. Багманов Сравнительная характеристика чувствительности микроорганизмов к антибиотикам и «СПЛ» при остром эндометрите ............................... 46 БОЛЕЗНИ МОЛОДНЯКА О. Котылев, Ю. Шиляева, А. Карелов, В. Иванов, А. Савельчев Кардинальное решение проблемы респираторных и желудочно-кишечных заболеваний животных ................................................. 49 ФАРМАКОЛОГИЯ И ТОКСИКОЛОГИЯ В. Егоров Токсикологическая оценка сочетанного воздействия дециса и Т-2 токсина на организм животных и изыскание профилактических средств ........................................... 51 ВЕТСАНЭКСПЕРТИЗА, ЗООГИГИЕНА, ВЕТЕРИНАРНАЯ САНИТАРИЯ П. Степаненко, Р. Корнелаева, Е. Павлова, Е. Быкова Микробиологическое состояние козьего сырого молока................................................... 56 КОРМА И КОРМОВЫЕ ДОБАВКИ Д. Осепчук, А. Белобров, А. Чиков Использование жирного кизельгура в комбикормах для цыплят-бройлеров ........................ 60 ПРАВОТЕКА Приказ Минсельхоза РФ от 16 ноября 2006 г. № 422 «Об утверждении правил организации работы по выдаче ветеринарных сопроводительных документов» .................................. 63 О БРАТЬЯХ НАШИХ МЕНЬШИХ Л. Бардахчиева, А. Исакова Дегельминтизация кошек ................................................ 69

CONTENTS

PROBLEMS AND BRANCH PROSPECTS S. Zolotukhin, D. Vasil’yev, A. Melekhin, E. Bulkanova, N. Feoktistova, B. Pozharnikova Bacteriophages of the insufficiently studied of enterobacteria and prospects for their application in the veterinary science ..................................4

OBSTETRICS AND GYNECOLOGY A. Shchegolyonkova, N. Terentyevа, M. Bagmanov The comparative characteristic of sensitivity of microorganisms to antibiotics and «candles forming foam with a hazel grove» at the sharp inflammation of a uterus ............46

Prevalence of tumours among the animals ....................................................10

DISEASES OF YOUNG ANIMALS O. Kotylev, Yu. Shilyaeva, A. Karelov, V. Ivanov, A. Savelchev

EXPANDED THEME – LEUCOSES

Cardinal solution of the problem of respiratory and gastrointestinal diseases of animals ........49

Leucosis of cattle ..............................................12

N. Kovalyuk, V. Satsuk, E. Machulskaya Modern methods of diagnostics of leucosis of cattle ........................................ 16

D. Ponomarenko, S. Abakin, E. Kalashnikova Features of diagnostics and clinico-immunological expression of leucosis of cattle ........................................20

I. Shaysultanova Leucosis of cattle and health-improvement measures ........................................................25

V. Madison Features of struggle with leucosis in private farms .............................................27 Application of drug Ligfol at leucosis of cattle ........................................32

INVASION DISEASES I. Prokhorova Helminthiases of pigs .......................................35 Borreliosis of pigs .............................................40

NONCONTAGIOUS DISEASES Z. Zelkhorst, I Dembski, L. Shilkina How to prevent cannibalism of pigs ............................................................42

PHARMACOLOGY AND TOXICOLOGY V. Yegorov Toxicological estimation of mixed influence decis and Т-2 toxin on an organism of animals and search of preventive means .....................51

ZOOHYGIENE, VETERINARY SANITARY AND INSPECTION P. Stepanenko, R. Kornelaeva, E. Pavlova, E. Bykova Microbiological condition of the goat crude milk....................................56

FEED AND FEED ADDITIVES D. Osepchuk, A. Belobrov, A. Chikov Use of fat kizelgur in mixed feeds for chickens-broilers ......................................60

LAW MATTER Order of the Ministry of Agriculture of the Russian Federation of November 16, 2006 № 422 «On approval of rules for the organization of work on the issue of accompanying veterinary documents» ......63

ABOUT PETS L. Bardakhchieva, A. Isakova Dehelminthization of cats .................................69

ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ОТРАСЛИ

УДК 619:579.62

БАКТЕРИОФАГИ МАЛОИЗУЧЕННЫХ ЭНТЕРОБАКТЕРИЙ И ПЕРСПЕКТИВЫ ИХ ПРИМЕНЕНИЯ В ВЕТЕРИНАРИИ С. Золотухин, канд. вет. наук, проф., Д. Васильев, д-р биол. наук, проф., А. Мелехин, вет. врач, Е. Бульканова, Н. Феоктистова, Б. Пожарникова, аспиранты ФГОУ «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия» е-mail: article2005@mail.ru Аннотация. Бактериофаги продолжают оставаться одним из интересных биологических объектов, а бактериофагия – перспективным направлением как для фундаментальных, так и прикладных научных исследований. Ключевые слова: биологические процессы, смешанная кишечная инфекция, этиологическое значение бактерий, биологические свойства бактериофагов.

BACTERIOPHAGES OF THE INSUFFICIENTLY STUDIED OF ENTEROBACTERIA AND PROSPECTS FOR THEIR APPLICATION IN THE VETERINARY SCIENCE S. Zolotukhin, D. Vasil’yev, A. Melekhin, E. Bulkanova, N. Feoktistova, B. Pozharnikova Summary. Bacteriophages continue to remain one of the interesting biological subjects and bacteriophagy - by promising direction both for basic and applied scientific research. Keywords: biological processes, the mixed intestinal infection, the etiological value of bacteria, biological properties of bacteriophages. История развития бактериофагии, как одного из направлений микробиологии, уходит далеко в прошлое. Первые сообщения о растворении микроорганизмов появились в конце XIX – начале XX столетия. В 1898 г. русский ученый Н. Ф. Гамалея обнаружил, что при обработке дистиллированной водой бацилл сибирской язвы выделяется специфическое вещество, которое обусловливает просветление взвеси сибиреязвенных палочек и растворяет свежевыращенную культуру. Это специфическое вещество исследователь назвал бактериолизином и высказал мнение, что оно образуется бактериями

при их распаде. Однако недостаток материала не позволял ему сделать окончательный вывод об этом феномене. Оставалась без внимания и работа F. Twort (1915), который при посеве оспенного детрита на агар обнаружил среди колоний белого стафилококка стекловидные колонии. Фильтрат из последних, разведенный 1:6, давал стекловидные колонии в свежевыращенной стафилококковой культуре. Автор предполагал, что действующим началом является новая форма, более низкоорганизованная по сравнению с бактериями, она могла быть живой протоплаз-

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ОТРАСЛИ

мой или энзимом, способными возникать и размножаться эндогенно. В последующие годы канадский микробиолог Д´Эрелль (1915, 1927, 1935) опубликовал обширные материалы, привлекшие всеобщее внимание к феномену растворения микробов. Ученый обнаружил в фильтрате из испражнений выздоравливающего больного, страдающего тяжелой формой дизентерии Шига, вещество, которое при пересеве растворяло свежевыделенную культуру палочки Шига, при этом активность вещества при пересевах увеличивалась. На основании проведенных исследований Д´Эрелль создал новую, весьма привлекательную теорию о том, что наблюдаемое им растворение дизентерийных бактерий вызывается не веществом, а живым существом, ультрамикроскопическим паразитом бактерий, невидимым в обычном микроскопе даже при самом сильном увеличении. Образуемые им стерильные пятна на газоне агаровой культуры, по представлению исследователя, есть ничто иное, как колонии размножившихся живых существ, которых он назвал бактериофагами, что в переводе с греческого означает «пожиратели бактерий». Это название используется до настоящего времени, хотя оно и не отвечает в полной мере современным представлениям о природе фага и его взаимодействии с бактериями, отражая лишь видимую невооруженным глазом одну из сторон этого сложного процесса – лизис микробной клетки. В специальной литературе наряду с указанным термином можно встретить наименования: фаг, вирус бактерий или просто вирус, фаговые частицы или корпускулы, бляшкообразующие единицы (БОЕ). После открытия явлений бактериофагии Д´Эрелль развил учение о том, что бактериофаги патогенных бактерий, являясь их паразитами, играют большую роль в патогенезе инфекций, обеспечивая выздоровление больного организма, а затем – создание специфического иммунитета. Это положение и привлекло к явлению бактериофагии внимание многочисленных исследователей, которые предполагали найти в фагах важное средство борьбы с наиболее опасными инфекционными болезнями человека и животных. В бывшем СССР одним из центров бактериофагии стал Институт бактериологии, позднее переименованный в Институт вакцин и сыворо-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ток, а в настоящее время – Тбилисский институт бактериофагии, микробиологии и вирусологии. Он был основан в 1923 г. профессором Г. Элиава, который в 1918 г., независимо от Д´Эрелля, обнаружил в воде реки Куры бактериофаги, активные в отношении холерного вибриона. Эти наблюдения явились причиной его встречи с Д´Эреллем в Париже в начале 1920-х годов и решения дальнейшего изучения данного вопроса. В начале 1930-х годов Д´Эрелль дважды приезжал в Тбилиси. В результате общения этих двух ученых была намечена программа по изучению бактериофагов путем создания Всемирного центра бактериофагии. В настоящее время известны фаги почти у всех видов патогенных и сапрофитных бактерий. Всесторонние исследования по изучению бактериофагов, выполненные за последние 40– 45 лет, позволили широко использовать их для решения многих задач в микробиологии, вирусологии, генетике, биохимии, иммунологии, радиобиологии, биотехнологии и других областях биологии. Поэтому бактериофагия, развивающаяся вначале как узкая область медицинской микробиологии, в настоящее время приобрела общебиологическое значение. Исследования с использованием фагов позволили раскрыть механизмы таких фундаментальных биологических процессов, как репликация ДНК, рекомбинация, транскрипция и генная регуляция. Благодаря изучению фагов открылись также возможности разработки многих важных методов и направлений генной инженерии. С помощью фагов проводятся широкие радиобиологические исследования, а также первичный отбор химиотерапевтических средств и некоторых антибиотиков против вирусных болезней и злокачественных опухолей. Фаги используют для важнейших биологических исследований космического пространства. В ветеринарии и медицине практическое использование фагов связано с изучением наследственной изменчивости бактерий (трансдукция, фаговая конверсия), индикацией и идентификацией патогенных бактерий, фаготерапией и фагопрофилактикой. Однако в течение двух последних десятилетий преобладало мнение, что изучение фагов уже не может дать науке ничего принципиально нового. В России в момент возникновения генной инже-

ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ОТРАСЛИ

нерии произошел резкий отход от изучения фагов в пользу лучше финансируемых исследований. Лишь несколько лабораторий в России продолжают до настоящего времени фундаментальные исследования фагов. По мнению большинства специалистов-фагологов, очевидно, что отход от исследования фагов был необоснованным. Так, несмотря на накопленный научный материал по изучению биологических свойств бактериофагов, многие вопросы требуют дополнительных исследований. Например, у большинства, как считалось ранее, прекрасно изученных модельных эшерихиозных фагов Т-серии, несмотря на 40-летний период напряженных исследований, так и не удалось выяснить функцию двух третей продуктов. Кроме этого, нет единой схемы таксономии и морфологической классификации этих микроорганизмов, отсутствуют стандартные наборы бактериофагов многих возбудителей заболеваний животных и человека, а также схемы и параметры их применения. Интерес к фагам возродился недавно по ряду причин. Прежде всего, вспомнили о возможностях фаготерапии в связи с появлением множественно-устойчивых к антибиотикам возбудителей болезней. В настоящее время в результате молекулярно-генетических исследований была обнаружена связь генома патогенности бактерий с профагом и, наконец, предположена возможность генетического обмена не только между бактериями и фагами, но и между фагами и эукариотами (В. Н. Крылов, 2003). Кафедра микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ветеринарно-санитарной экспертизы УГСХА определила одно из приоритетных научных направлений – выделение и изучение бактериофагов. На кафедре в сотрудничестве с ведущими научными центрами страны (ВНИИВСГЭ, ВГНКИ, ВНИИЗЖ, ВНИИВиМ) более тридцати лет ведется научно-исследовательская работа по этой проблеме, в частности, изучение бактериофагов малоизученных в ветеринарии энтеробактерий. Выбор этого научного направления связан с тем, что в последние годы, благодаря работам отечественных и зарубежных исследователей, расширилось представление об этиологическом значении бактерий семейства Enterobacteriaceae в патологии животных и человека. Представители этого семейства широко распространены

в природе и большинство из них является нормальной микрофлорой желудочно-кишечного тракта животных и человека. Однако среди этих микроорганизмов имеются патогенные рода, виды и варианты, способные вызывать у животных и людей как самостоятельные заболевания (эшерихиоз, сальмонеллез, иерсиниоз, клебсиеллез и др.), так и энтериты, нагноение ран, абсцессы, маститы, эндометриты, менингиты, пневмонии, сепсис и т. п., пищевые и кормовые токсикозы и токсикоин-фекции и др. Особого внимания заслуживают работы разных исследователей по изучению роли этих микроорганизмов в этиологии желудочно-кишечных заболеваний молодняка животных, которые продолжают представлять большую проблему, имеют повсеместное распространение и наносят огромный экономический ущерб животноводческим хозяйствам, особенно крупным фермам. Долгое время, особенно в период 1960 г.– 1980-х годов минувшего столетия, почти все заболевания новорожденных животных с клиническими симптомами диареи относили к незаразным функциональным болезням, называемым диспепсиями, несмотря на наличие всех признаков эпизоотического процесса. Хотя уже тогда в мероприятиях по лечению и профилактике этих «диспепсий» присутствовали меры, направленные на микробный агент и разрыв эпизоотической цепи (применение антибактериальных препаратов, дезинфекция, периодическая смена помещений на основе принципа «все пусто – все занято» и др.). К настоящему времени накоплен огромный фактический материал, свидетельствующий о том, что в преобладающем большинстве случаев желудочно-кишечные заболевания молодняка животных имеют инфекционную природу и обусловлены разнообразными агентами. Особое место в этиологии заболеваний новорожденных животных занимает так называемая «стойловая» условно-патогненная микрофлора, которая, в отличие от возбудителей «классических инфекций», ежедневно поступает с экскрементами клинически здорового маточного поголовья (животных-бактерионосителей), а при возникновении первых случаев болезни – с фекалиями больного молодняка в помещения, где рождаются животные и проводится их выращивание в первые недели жизни.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ОТРАСЛИ

К такой микрофлоре, наряду с некоторыми другими микроорганизмами, относятся бактерии семейства Enterobacteriaceae, знания о которых как возбудителях заболеваний животных и человека в последние десятилетия расширились благодаря работам многих исследователей. До начала 90-х годов прошедшего столетия ветеринарные лаборатории нашей страны бактериологические исследования патологического материала от больного и павшего молодняка животных сводили к выявлению в нем только патогенных эшерихий и сальмонелл, не принимая во внимание наличия представителей других родов семейства Enterobacteriaceae ввиду отсутствия нормативных документов по диагностике болезней, вызываемых этими микроорганизмами. Они были впервые разработаны и утверждены в конце 1991 года. (Методические указания по бактериологической диагностике смешанной кишечной инфекции молодняка животных, вызываемой патогенными энтеробактериями) и затем переработаны в 1999 году, согласно этим документам бактерии родов Proteus, Morganella, Citrobacter, En-terobacter, Klebsiella, Yersinia и др. получили официальное признание возбудителей болезни. В конце прошлого и в начале настоящего века также было установлено, что диарею у молодняка животных с признаками геморрагического гастроэнтерита, а также отечную болезнь у поросят могут вызывать штаммы эшерихий серогруппы 0157 (серовары 0157: Н7 и 0157Н-), считавшиеся ранее непатогенными для животных (О. А. Тугаринов, М. К. Пирожков, Ю. А. Малахов, 2001; С. Н. Золотухин, Л. С. Каврук, Д. А. Васильев, 2005). Контаминируя пищевое сырье и продукты питания, вышеперечисленные энтеробактерии представляют опасность и для людей, вызывая у них тяжело протекающие токсикоинфекции. Эффективность лечебных мероприятий во многом зависит от своевременной диагностики болезни, поэтому совершенствованию методов лабораторной диагностики заболеваний, вызываемых патогенными представителями энтеробактерий или протекающих с их участием, уделяется большое внимание. При постановке диагноза бактериологическим методом существует ряд трудностей. Одна из них состоит в том, что основой идентифика-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ции этих бактерий являются их биохимические свойства. Трудоемкость и длительность изучения ферментативных свойств не позволяет быстро и точно идентифицировать названные микроорганизмы. Современные методы лабораторной диагностики (ПЦР, ИФА, РИА), которые могут быть использованы для этих целей, хотя и являются высокоспецифичными и чувствительными, но сложность методик, высокая стоимость оборудования и реактивов для постановки этих реакций делает их пока недоступными для большинства ветеринарных лабораторий. В связи с этим возникла необходимость в поиске альтернативных методов лабораторной диагностики, которые были бы менее трудоемкими, более быстрыми и доступными. Одним из таких методов является фагодиагностика. Методы фагодиагностики, разработанные в середине прошлого века, являются специфичными, не требует больших затрат времени, материалов и доступны лабораториям всех уровней. Ввиду отсутствия в нашей стране стандартных наборов фагов для диагностики заболеваний, вызываемых патогенными энтеробактериями, одной из задач наших исследований явилось выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов, конструирование из них диагностических препаратов и разработка методов их практического применения. В результате исследований проб сточных вод, фекалий животных, воды открытых водоемов, патологического материала от больных и павших телят и поросят нами было выделено и селекционировано более 130 изолятов фагов, лизирующих штаммы патогенных для животных и человека энтеробактерий следующих родов: Proteus, Citrobacter, Enterobacter, Klebsiella, Providencia, видов: Yersinia enterocolitica, Yersinia pseudotuberculosis, Morganella morganii и E. coli серогруппы 0157 (ceроваров 0157: H7 и 0157Н-). Ведется поиск новых изолятов фагов, активных в отношении бактерий родов Pseudomonas, Aeromonas, Pasterella, Enterococcus, Serratia и др., представители которых имеют этиологическое значение в патологии животных и могут вызывать пищевые токсикоинфекции у людей. У выделенных фагов изучены основные биологические свойства. Определено классификационное положение изученных изолятов согласно современной классификации и таксо-

ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ОТРАСЛИ

номии вирусов (С. Н. Золотухин, Д. А. Васильев, Л. С. Каврук и др., 2005). Четырнадцать перспективных штаммов фагов (Phagum Morganella morganii M17 УГСХА – ДЕП., Phagum Morganella morganii M20 УГСХА – ДЕП., Phagum Escherichia coli 0157 E-61 УГСХА – ДЕП., Pagum Escherichia coli 0157 E-67 УГСХА – ДЕП., Phagum Citrobacter C-61 УГСХА – ДЕП., Phagum Citrobacter C-66 УГСХАДЕП.,Phagum Citrobacter C-52 УГСХА – ДЕП., Yersinia enterocolitica Y/9 УГСХА-ДЕП., Phagum Proteus П-16 УГСХА-ДЕП., Phagum Proteus П-261 УГСХА-ДЕП., Phagum Enterobacter En-2 УГСХАДЕП., Phagum Enterobacter En-13 УГСХА-ДЕП., Phagum KlebsiellaK-10 УГСХА-ДЕП., Phagum Klebsiella K-81 УГСХА-ДЕП.) депонированы в ВГНКИ ветеринарных препаратов и рекомендованы для изготовления диагностических и лечебно-профилактических препаратов. С использованием строгой специфичности селекционированных бактериофагов, нами разработаны методы идентификации вышеперечисленных энтеробактерий, которые позволяют определить родовую, видовую и даже серогрупповую принадлежность выделенной культуры микроорганизмов без изучения ферментативных и серологических свойств в течение 48 часов вместо 5–7 суток, что позволяет значительно сократить сроки и затраты на диагностические исследования. Ускоренное обнаружение возбудителя болезни в патологическом материале, кормах, пищевых продуктах и объектах внешней среды рекомендуем проводить при помощи реакции нарастания титра фага (РНФ) с использованием тех же наборов бактериофагов. Сущность РНФ заключается в том, что если в исследуемом материале присутствует искомый возбудитель заболевания, то добавленный к такому материалу гомологичный фаг, вступая во взаимодействие с ним, интенсивно размножается, и последующее увеличение концентрации свободного внеклеточного фага указывает на присутствие в исследуемом субстрате гомологичного возбудителя. РНФ с применением предлагаемых нами наборов фагов по технике выполнения является простым, чувствительным и специфическим методом диагностики, позволяющим за относительно короткий срок (11–22 ч.) обнаружить

искомые бактерии в концентрации 102–104 микробных клеток в 1 г (мл) исследуемого материала в присутствии посторонней микрофлоры, без выделения чистых культур энтеробактерий. Бактериологическим методом такую концентрацию микроорганизмов обнаружить, как правило, не удается. Диагностические исследования рекомендуем проводить в соответствии с разработанными нами методиками, изложенными в семи методических рекомендациях по ускоренной индикации и идентификации энтеробактерий родов Klebsiella, Citrobacter, Proteus, Enterobacter, видов Morganella morganii, Yersinia enterocolitica и энтерогеморрагической кишечной палочки Е. coli 0157: Н7 и 0157Н – в патологическом материале, кормах, пищевом сырье и объектах внешней среды с применением специфических бактериофагов, утвержденных отделением ветеринарии РАСХН (2004, 2006). К сожалению, биологическая промышленность страны в настоящее время не изготовляет специфических средств для профилактики и терапии кишечных инфекций, вызываемых вышеперечисленными энтеробактериями или протекающих с их участием (за исключением эшерихиозных вакцин и сывороток), что существенно снижает эффективность мероприятий по борьбе с этими заболеваниями. Применение антибиотиков и нитрофурановых препаратов для лечения и профилактики инфекционной диареи молодняка в ряде случаев не дает ожидаемого положительного результата, что связано с приобретением устойчивости условно-патогенных микроорганизмов к 3–5 и более антибиотикам. Об этом свидетельствуют результаты наших исследований (С. Н. Золотухин, 2002, 2004), которые согласуются с литературными данными многих отечественных и зарубежных авторов (Е. С. Воронин и др., 1989; Е. Т. Парайко, 1990; М. Barben, Р. Н Waer-Worth, 1964; Н. Trollenir, 1980; P. M. Hawekey и др., 1983). Первые попытки использовать бактериофаги для лечебно-профилактических целей были предприняты в медицине. В литературе имеются сообщения, свидетельствующие о положительном лечебно-профилактическом действии препаратов бактериофагов при использовании их во время эпидемии холеры, при дизентерии и других желудочно-кишечных болезнях.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ОТРАСЛИ

Отдельные попытки использования различных бактериофагов при инфекционных болезнях животных были предприняты еще в 1920–30-х годах. Д´Эрелль (1928, 1935) пытался использовать фаги при пуллорозе-тифе у кур. В связи с возрастанием уровня устойчивости возбудителей болезни к антибиотикам и отрицательным влиянием последних на организм животных, а через продукты питания и на человека, фаготерапия и фагопрофилактика инфекционных заболеваний вновь стала привлекать к себе внимание многих исследователей. Поэтому разработка и изготовление лечебно-профилактических фаговых препаратов для нужд ветеринарии в настоящее время приобретает большую актуальность для практики. Преимуществом этих средств является их экологическая безопасность, безвредность, даже в больших дозах, и отсутствие побочных действий на организм животных (дисбактериоза, аллергических реакций, угнетения функций иммунной системы). В то же время фаготерапия и фагопрофилактика не исключают применения симптоматического лечения, серотерапии и серопрфилактики, пробиотиков, антибиотикотерапии, вакцинопрофилактики, а также всего комплекса ветеринарно-санитарных и зоогигиенических мероприятий.

В настоящее время мы изучаем возможность применения бактериофагов для лечения и профилактики желудочно-кишечных заболеваний молодняка животных, а также ликвидации скрытого бактерионосительства. Ведутся научные исследования по разработке технологических параметров получения и контроля новых биопрепаратов, подбор оптимальных дозировок, схем и способов их применения. Для этих целей используем выделенные и селекционированные нами изоляты фагов вышеперечисленных энтеробактерий из коллекции УГСХА в различных комбинациях, в зависимости от этиологии заболевания и чувствительности к ним идентифицированных возбудителей болезни, циркулирующих на конкретной ферме. С целью повышения эффективности научноисследовательской работы в Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии в 2006 г. с использованием материально-технической, научно-методической базы и кадрового потенциала кафедры микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ветеринарно-санитарной экспертизы создан Научно-исследовательский центр микробиологии и биотехнологии, одним из структурных подразделений которого является лаборатория экспериментальной микробиологии и бактериофагии.

Ветаптека СУСПЕНЗИЯ «ДОКСИМЕТРИН» Суспензия «Доксиметрин» (Suspensio «Doxymetrinum») для внутриматочного введения, в состав суспензии входит: Доксициклин – 2,0 г; Метронидазол – 4,0 г; Наполнитель – до 100,0 г. Выпускается в пластмассовой таре по 500,0 мл, 1000,0 мл. Фармакологическое действие. Препарат обладает широким спектром действия как на грамположительные, так и грамотрицательные бактерии, анаэробы, риккетсии, хламидии, простейшие и др. Входящие в состав препарата компоненты обеспечивают эффективный репаративный эффект, а также оказывают стимулирующее воздействие на гладкую мускулатуру матки. Показания. Препарат «Доксиметрин» применяют для лечения и профилактики эндометритов у крупного рогатого скота. Дозы и способ применения. Препарат вводят в полость матки в дозе 10–15 см3 на 100 кг живой массы животного, с интервалом 48–72 часа до выздоровления. Побочные действия. Возможно проявление аллергических реакций у чувствительных животных. При соблюдении дозировок побочных реакций не наблюдалось. Противопоказания. Повышенная чувствительность к антибиотикам группы тетрациклина. Особые указания. Использование молока и мяса в пищу разрешено не ранее, чем через 18 дней после применения.

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ОТРАСЛИ

РАСПРОСТРАНЕННОСТЬ ОПУХОЛЕЙ СРЕДИ ЖИВОТНЫХ Спонтанно возникающие опухоли наблюдаются у разных представителей животного мира. Ими поражаются пойкилотермные (рыбы, рептилии, моллюски, лягушки) и теплокровные (млекопитающие, птицы) животные. Особо большое внимание в последние 10– 15 лет стали уделять опухолевым заболеваниям после того, как окончательно выявилась вирусная природа гемобластозов (лейкоза, лимфосаркомы) крупного рогатого скота – основной формы злокачественных новообразований у этого вида домашних животных. Острый и хронический лимфолейкоз крупного рогатого скота представляет собой системное заболевание лимфоидной (иммунокомпетентной) ткани. Лейкозные изменения регистрируют в красном костном мозге, наружных и внутренних лимфоузлах, селезенке, иногда в печени. Лимфосаркома – злокачественная опухоль, локально поражающая лимфоузлы без системного вовлечения лимфоидных органов. Из общего количества животных, спонтанно пораженных гемобластозами, на лейкозы приходится 81–85 %, на гематосаркомы – 15–19 %. Особая опасность этой формы злокачественных новообразований заключается в возможности перезаражения здоровых животных от вирусоносителей. Зарегистрирована даже вероятность перезаражения животных при манипуляции инъекционной иглой, контаминированной кровью от больной лейкозом коровы. На гемобластозы у крупного рогатого скота приходится около 67 %; на опухоли кожи, в основном папилломы, – 14 %; легкие, печень, половые органы поражаются в 4–5 % случаев. Среди 14 пород собак наиболее часто опухоли выявляют у овчарок и боксеров в возрасте около 8 лет. Поражена, преимущественно, кожа и подкожная клетчатка (32 %), причем 2/3 случаев приходится на рак и саркому. На втором месте – молочные железы (20 %), с преобладанием раковых новообразований, на третьем – половые органы (14 %), пораженные, как правило, трансмиссивной венерической саркомой. Участились случаи рака щитовидной железы, лейкозов, лим-

фосарком. Согласно статистическим данным, поражаемость собак опухолевой болезнью с годами существенно возрастает. У свиней гемобластозы составляют около 80 % общего количества опухолевых заболеваний с преобладанием лейкозов. В остальных случаях спонтанные опухоли представляли собой различные типы сарком, аденом, фибром, недифференцированных бластом и рака с локализацией в легких, молочной железе, печени, репродуктивных органах. У овец обнаруживают спонтанные случаи лейкоза, его лимфоидную форму. Доказана вирусная этиология заболевания. Оно протекает бессимптомно, течение хроническое, наиболее часто выявляется у животных в 5–6-летнем возрасте. Другие формы гемобластозов – лимфосаркома, лимфогранулематоз, миелоидный лейкоз – встречаются редко. Аденокарцинома легких овец принимает иногда характер энзоотии. У лошадей опухоли встречаются реже, чем у животных других видов. В 80 % случаев у них регистрируют гемобластозы (лимфо- и миелолейкоз) и ретикулезы (ретикулосаркома). Среди

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ОТРАСЛИ

опухолей другого генеза у лошадей выявляют папилломы, рак полового члена, фибросаркомы, гемангиомы. У птиц преобладают контаминированные вирусами гемобластозы. РНК-содержащие вирусы из семейства Retraviridae являются этиологическим фактором развития у птиц лейкоза, сарком и карцином. Лейкоз птиц – системное заболевание лимфоидных органов бластоматозного происхождения. По преимущественному поражению рассматривают такие формы лейкоза, как лимфолейкоз, на долю которого приходится до 80 % болеющей лейкозом птицы, миелоидный лейкоз (миелолейкоз, миелобластоз, миелоз) с увеличением в органах малодифференцированных миелоидных клеток, эритроцидный лейкоз (эритробластоз, эритролейкоз) с преимущественным поражением красного костного мозга, обильным появлением в крови недифференцированных про- и эритробластов и резко выраженной анемией. Лейкоз кур регистрируют во всех странах с развитым промышленным птицеводством, которому он наносит существенный экономический ущерб. Чаще наблюдаемый у кур, лейкоз диагностируют и у других видов домашних (индейки, гуси, утки) и, значительно реже, диких (голуби, чайки, лебеди, страусы, орлы и др.) птиц. Саркомы – злокачественные опухоли птиц мезенхиматозного происхождения. Поражают соединительную ткань кишечника брыжейки, поджелудочной железы, любого другого паренхиматозного органа и мышц. Характеризуются локальностью процесса. Карциномы – злокачественные опухоли (рак) птиц, поражающие эпителиальную ткань. У кур наиболее часто наблюдают поражение серозной поверхности желудка, кишечника, брыжейки, яйцеводов, яичников. Доброкачественные опухоли у птиц встречаются довольно редко, к ним относят липомы, образующиеся из жировой ткани, фибромы – из соединительной ткани, миомы – из гладких и поперечнополосатых мышц, гемангиомы – из стенок кровеносных сосудов, остеомы – из костной ткани, другие разрастания бластоматозного происхождения. Повышение интереса, проявляемого ветеринарными специалистами к различным аспектам опухолевого роста, привело к созданию (1980 г.)

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

Единой международной системы классификации злокачественных опухолей домашних животных. Эта система получила название TNM, от первых букв следующих латинских терминов: Т – tumor – опухоль; N – nodus – лимфатический узел; М – metastasis – метастазы. Таким образом, система TNM основана на анализе степени распространения опухолей по трем категориям: распространению первичной опухоли (Т), состоянию лимфатических узлов (N), наличию или отсутствию отдаленных метастазов (М). Принятая унификация учета степени распространения, клинической стадийности, локализации новообразований у гомойотермных животных, лечебной эффективности позволит теоретикам и практикующим врачам более целенаправленно использовать имеющиеся и перспективные возможности для достижения прогресса в борьбе с разными формами опухолевой болезни. Опухоли рыб наблюдают у свободноживущих особей, а также разводимых в прудах и аквариумах. Сравнительно легко новообразования моделируются при введении в корм аквариумным рыбам (гуппи, данио) таких канцерогенов, как диэтилнитрозамин и дичметиламиноазобензол, нитрозморфолин, других химических бластомогенов. Спустя 11–25 нед. после начала их скармливания, у рыб регистрировали новообразования в печени, кишечнике, брюшной стенке с преобладанием злокачественных форм. Среди прудовых рыб особенно часто наблюдают новообразования у форелей, иногда принимающие характер эндемий. Описаны также опухоли у рыб, свободно живущих в пресной и соленой воде: щук, окуней, карпов, угрей, сельдей, трески, камбалы, акул и др. У рыб, так же как у млекопитающих, выявляют злокачественные и доброкачественные бластомы с преимущественной локализацией в печени, щитовидной железе, коже, хотя возможны поражения всех групп тканей, имеющихся в организме. Характер поражений зависит от многих факторов: принадлежности к определенным классам и подклассам, возраста, среды обитания, насыщенности ее канцерогенами, возможности контаминации вирусами и т. д. Исследователи отмечают, что микроскопическое строение новообразований у рыб почти не отличается от такового у млекопитающих, за исключением наличия ядерных эритроцитов.

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

ЛЕЙКОЗ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА (LEUCOSIS, ГЕМОБЛАСТОЗ) Лейкоз КРС (Leucosis, гемобластоз) – хроническая инфекционная болезнь, характеризующаяся неопластической пролиферацией клеток кроветворной и лимфоидной тканей с появлением в крови малодифференцированных клеток лимфоидного или миелоидного ряда. ИСТОРИЧЕСКАЯ СПРАВКА Первые случаи лейкозов были описаны в Германии: у человека (Р. Вирхов, 1845), лошадей и свиней (Лейзеринг, 1858) и крупного рогатого скота (Зидамгродский, 1876). К настоящему времени лейкозы диагностированы как у теплокровных, так и холоднокровных животных. В разное время эту болезнь называли белокровием, лейкемией, раком крови, лейкозом и др. В последнее время ее стали называть гемобластозом, что наиболее полно отражает патогенетическую сущность болезни. Большой вклад в изучение лейкозов внесли отечественные исследователи. А. Толаров (1862), К. Славянский и А. Щастнов (1867–1876) впервые указали на патоморфологическое и биологическое сходство лейкозного и опухолевого процессов. Вирусогенетическая теория происхождения злокачественных опухолей Л. А. Зильбера в настоящее время – доминирующая; она подтверждается результатами исследования лейкозов крупного рогатого скота. В настоящее время лейкоз крупного рогатого скота объединяет опухолевые болезни кроветворных органов, а также лимфоидный, миелоидный и слабодифференцированный (гемоцитобластоз) лейкозы, лимфосаркому, ретикулосаркому, лимфогрануломатоз. Возбудитель болезни – РНК-содержащий онкогенный вирус типа С (онкорна-вирус), относящийся к роду Oncovirus С, семейства Retrovindae. Вирус лейкоза крупного рогатого скота, или бычий лейкозный вирус (БЛВ), морфологически сходен с возбудителями лейкоза у других видов животных. Однако имеются существенные различия в антигенном строении.

Устойчивость вируса лейкоза во внешней среде небольшая. Вирус в клеточных культурах при нагревании до 60 °С погибает через минуту, быстро обезвреживаетеся 2–3 %-ными растворами едкого натра, формальдегида и другими дезинфицирующими веществами в общепринятых концентрациях. Инактивация вируса в молоке достигается нагреванием его до 74 °С в течение 17 с. или скисанием (рН 4,75). Вирус лейкоза может длительное время находиться в клетке в частично или полностью связанном состоянии с ее геномом. Патогенное действие он проявляет при снижении обменных процессов и иммунологической реактивности организма животных. ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ДАННЫЕ Лейкозы наиболее распространены среди крупного рогатого скота. Болезнь диагностируют на всех континентах мира. Наиболее широко она распространена в Германии, Польше и США. Отмечена неравномерность поражения животных в отдельных странах и хозяйствах. Лейкозом болеют как молодые, так и взрослые животные всех разводимых пород и их помеси, но чаще он отмечается у животных 4–8-летнего возраста. Болезнь обычно наблюдается среди скота красной и черно-пестрой пород. К лейкозу крупного рогатого скота восприимчивы также овцы и козы. Эпидемиологическими и эпизоотологическими исследованиями не установлена связь между заболеваниями лейкозом человека и животных. Источником возбудителя лейкоза является больное животное. Уже на ранних стадиях болезни онкорнавирус выделяется из организма коров с молозивом и молоком. Имеются сведения о возможном выделении возбудителя со слюной. Внутри стад возможны вертикальный (через плаценту, молозиво и молоко) и горизонтальный механизмы передачи возбудителя, однако конгенитальное заражение происходит

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

сравнительно редко. Телята заражаются, главным образом, постнатально. Значение кровососущих насекомых, инфицированных предметов и других факторов в механизме передачи возбудителя лейкоза требует экспериментального подтверждения. Передачи вируса через сперму, по-видимому, не происходит. В возникновении болезни существенное значение имеет гено- и фенотипическая предрасположенность животных к лейкозу. Время года, климатические и природно-географические условия не оказывают влияния на возникновение и распространение болезни. Основным фактором распространения возбудителя лейкоза в благополучных хозяйствах служит завоз молодняка из хозяйств, неблагополучных по этой болезни. Напряженность эпизоотического процесса связана с породой крупного рогатого скота и интенсивностью использования животных. В отдельных хозяйствах заболеваемость составляет 3–20 %, а летальность – до 15 %. Патогенез лейкоза крупного рогатого скота определяется взаимоотношением вируса и клетки. Болезнь чаще протекает в латентной форме. Под влиянием различных экзогенных и эндогенных факторов происходит активация возбудителя, проявляющаяся у отдельных животных медленным расстройством регуляторной функции органов кроветворения. Основным признаком лейкоза является нарушение нормального процесса пролиферации и дифференциации клеток кроветворной ткани. Чаще поражаются лейкобластические клетки, что приводит к интенсивной пролиферации различных типов лейкоцитов в кроветворных органах, в костном мозге, селезенке, лимфоузлах. Неконтролируемо размножающиеся клетки крови распространяются по организму и попадают в различные органы и ткани, образуют опухоли, вызывающие изменение структуры и функции пораженных органов вследствие атрофии специфических клеток. Появляются нарушения на молекулярном, клеточном и органном уровнях, что приводит к расстройству кроветворения, увеличению количества лимфоцитов. ТЕЧЕНИЕ И СИМПТОМЫ Инкубационный период (до появления изменений в периферической крови) при экспериментальном заражении длится 60–750 дней,

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

а при спонтанном – 2–6 лет. В течении лейкозов выделяют предлейкозную, начальную, развернутую и терминальную стадии болезни. С развитием патологического процесса указанные стадии следуют одна за другой. Предлейкозную стадию диагностируют при помощи серологических и вирусологических исследований, при этом никакие гематологические изменения еще не выявляются. При начальной стадии лейкоза отмечают количественные и качественные сдвиги в составе клеток крови. Увеличивается количество лейкоцитов, повышается процент лимфоцитов, появляются малодифференцированные, незрелые, различной величины патологические формы клеток. Развернутая стадия болезни характеризуется, кроме гематологических сдвигов, разнообразием неспецифических и специфических клинических признаков. Их проявление зависит от морфологических форм лейкоза и места локализации патологического процесса. У животного ухудшается общее состояние, отмечается быстрая утомляемость, плохо усваиваются корма, снижаются удои, прогрессирует истощение, нарушается пищеварение (диарея, запоры, атония, тимпания преджедков), ослабляется сердечная деятельность. Наблюдают цианоз и желтушность слизистых оболочек, ухудшается дыхание, появляются отеки области подгрудка, живота, вымени, хромота на одну или обе тазовые конечности, затрудняется выделение мочи, возникают аборты, наступает яловость, увеличивается одна или несколько долей вымени. Специфическими признаками лейкоза являются увеличение поверхностных (предлопаточных, околоушных, надколенных, подчелюстных, надвыменных) внутренних (доступных ректальному исследованию) лимфоузлов; явление опухолевых разрастаний в различных областях тела, экфтальмия (пучеглазие), увеличение селезенки и печени. Лимфоузлы имеют величину от грецкого ореха до детской головы, они безболезненны, подвижны, эластичной или плотной консистенции. При сильном увеличении лимфоузлы становятся болезненными. Внутренние лимфоузлы поражаются чаще поверхностных. У молодняка наблюдаются также опухолевые разрастания в нижней части

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

шеи, поражается тимус и возникают фильтративные поражения кожи. При терминальной стадии болезни быстро развивается патологический процесс. Отчетливо проявляются неспецифические признаки. Количество лейкоцитов в периферической крови иногда снижается, при этом преобладают их патологические формы. Это приводит к крайнему истощению кроветворных органов, блокаде иммунной системы и заканчивается смертью животного. У молодняка лейкоз протекает преимущественно остро; животное погибает через несколько недель после появления признаков болезни У взрослого скота иногда смерть наступает внезапно вследствие разрыва селезенки. У таких животных не всегда замечают изменения в общем состоянии и продуктивности. ПАТОЛОГОАНАТОМИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ При вскрытии трупа, в зависимости от формы и стадии течения лейкоза, обнаруживают диффузную или очаговую инфильтрацию в органах кроветворения, на серозных покровах, в кишечнике, сердце, печени, почках, в матке и других органах. Основными формами лейкоза являются собственно лейкозы и ретикулозы. К собственно лейкозам относят лимфомиелолейкоз; гемобластоз, а ретикулозам – лимфо-, ретикуло-саркому, системный ретикулез, лимфогранулематоз и плазмоцитому. Эта классификации основана на патоморфологической характеристике разрастаний (новообразований), результатов цитологического и гематологического исследований циркулирующих в крови клеточных элементов (степени их созревания). Для гистологического исследования направляют от павших или убитых животных кусочки (2 x 2 см) измененных органов, фиксированных 10 %-ным р-ром формалина. Диагноз на лейкоз ставят на основании результатов эпизоотологического, клиникогематологического, серологического, вирусологического, патологоанатомического и гистологического (обязательно) исследований. При гематологическом исследовании на лейкоз используют различные критерии, названные

лейкозными ключами. Определяют отклонения от нормальных количеств лейкоцитов и молодых клеток, абсолютное число и процентное отношение лимфоцитов. Следует также учитывать, что по мере развития патологического процесса животных может происходить снижение числа лейкоцитов, иногда даже ниже нормы Кроме того, в 8–30 % случаев лейкоз может протекать алейкемически (количество лейкоцитов 5,5–9,5 тыс/мкл). Все животные, у которых установлен персистентный (длительный) лимфоцитоз (ПЛЦ), являются носителями вируса лейкоза, но персистентный лимфоцитоз бывает не у всех инфицированных животных (15–72 %). Поэтому с помощью лейкозного ключа выявляют только больных лейкозами животных – с гематологическими изменениями. Для инфицированных вирусом лейкоза животных используют иммунологические методы исследования (РДП, РИФ, РСК, радиоиммунологический метод). Наиболее простая в постановке РДП позволяет обнаруживать в сыворотке крови специфические антитела к глюкопротеидному и полипептидному антигенам вируса лейкоза через 2–4 мес. после инфицирования животных. У телят материнские антитела выявляются до 6-месячного возраста, поэтому диагностическое значение у них имеют лишь антитела, обнаруживаемые с 6-месячного возраста. Вспомогательными методами диагностики лейкоза могут быть: исследование пунктата грудной кости и лимфоузлов, биопсия печени и селезенки. Дифференциальный диагноз. Необходимо учитывать, что многие остро и хронически протекающие болезни (туберкулез, бруцеллез, паратуберкулез, актиномикоз, некоторые инвазионные болезни, травматический перикардит, ретикулит, метриты, маститы, гепатиты и др.) нередко сопровождаются значительными изменениями крови, которые имеют защитный характер и определяются как лейкемоидная реакция организма (ЛР), отражающая функционально-реактивные изменения Изменения в крови при лейкозе носят органический характер. Лейкемоидная реакция является временной, она исчезает с изменением состояния животного. Для ее исключения проводят со-

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

ответствующие микробиологические, серологические, гистологические, копрологические, повторные гематологические и другие исследования. Лечение не разработано. Иммунитет. Вопросы иммунитета и иммунизации при лейкозе мало изучены. В организме зараженных вирусом лейкоза животных с гематологическими и клиническими признаками болезни выявляют преципитирующие и комплементсвязывающие антитела. Профилактика и меры борьбы направлены на охрану благополучных хозяйств от заноса возбудителя лейкоза, на своевременную диагностику и ликвидацию лейкоза в неблагополучных хозяйствах. Для осуществления профилактических противолейкозных мероприятий необходимо достоверно знать эпизоотическую ситуацию. В благополучных хозяйствах (стадах) животных старше 2-летнего возраста исследуют на лейкоз один, а быков-производителей – 2 раза в год. В эту группу хозяйств не допускают завоза скота из неблагополучных по лейкозу стад. При установлении лейкоза у двух и более животных хозяйство объявляют неблагополучным по заболеванию, вводят ограничения и организуют в нем оздоровительные мероприятия. В зависимости от эпитизоотической ситуации и конкретных хозяйственно-экономических условий, оздоровление хозяйств проводят двумя методами: а) систематическим (2 раза в год) исследованием животных на лейкоз с последующим удалением из стада больных и их потомства; б) полной заменой неблагополучного стада. Первый способ используют в крупных хозяйствах. Он дает возможностъ в течение 3–5 лет снизить заболеваемость скота до 0,1 %, а в хозяйствах с незначительным распространением лейкоза добиться полного оздоровления стада. Эффективность этого способа повышается при выращивании на обособленной ферме с 10-дневного возраста молодняка, полученного от здоровых родителей. В племенных хозяйствах следует проводить селекцию крупного рогатого скота на устойчивость к лейкозу. Для

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

воспроизводства стада используют коров из благополучных по лейкозу семейств и быковпроизводителей, оцененных по способности передавать потомству устойчивость к болезни. Молоко от больных лейкозом коров кипятят 5 мин. и используют на корм животных. Молоко животных, подозрительных по заболеванию, можно использовать в пищу людям после кипячения (5 мин.) или пастеризации (при 85 °С в течение 10 мин.). Молоко здоровых коров благополучного стада используют на месте (после пастеризации) или на молокозавод, где его используют после обычной пастеризации. Туши лейкозных животных при генерализованном поражении внутренних лимфоузлов и скелетных мышц направляют в техническую утилизацию. Если скелетные мышцы не поражены, мясо и неизмененные внутренние органы обезвреживают проваркой. После вывода больного или подозрительного по заболеванию скота животноводческие помещения очищают и дезинфицируют 2–3 %-р-ром едкого натра. Неблагополучное по лейкозу хозяйство (отделение) считают оздоровленным по истечении двух лет после сдачи на убой последнего больного животного. Затем, в течение двух лет, весь скот подвергают гематологическому диагностическому исследованию раз в год.

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

СОВРЕМЕННЫЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ ЛЕЙКОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА Н. Ковалюк, канд. биол. наук, зав. лабораторией биотехнологии СКНИИЖ, проректор Краснодарского регионального института агробизнеса, В. Сацук, канд. с.-х. наук, директор ООО ИПСХП «Астер», Е. Мачульская, младший научный сотрудник лаборатории биотехнологии СКНИИЖ ДНК – обязательный компонент любого живого организма (исключение составляют лишь РНК- содержащие вирусы на определенных стадиях своего существования). У мыши и человека, кишечной палочки и слона ДНК устроена по одному принципу – это полимерная макромолекула, состоящая из звеньев – нуклеотидов. Нуклеотиды бывают 4 видов: А, Т, G и С. У всех живых существ A, T, G, C-нуклеотиды встречаются в составе ДНК, но в различных комбинациях. Чем ближе друг к другу виды расположены на эволюционной лестнице, тем сильнее похожи их последовательности ДНК, в то же время даже у представителей одной семьи можно найти такие участки ДНК, которые будут строго индивидуальны. Использование этого биологического свойства легло в основу метода полимеразной цепной реакции (ПЦР), который, по оценке американского журнала «Science», является самым выдающимся открытием последних лет. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) – это метод копирования участка ДНК, с помощью которого в течение нескольких часов можно выделить и размножить определенную индивидуальную последовательность ДНК в количестве, превышающем исходное в 10 миллионов раз. Некоторые области применения ПЦР – выявление вирусных и бактериальных патогенов и высокоэффективный анализ вариаций нуклеотидных последовательностей (В. И. Глазко и др., 2000; Р. А. Волкова и др., 2000; А. А. Приймак, 1995).

Лейкоз крупного рогатого скота – хроническая инфекционная болезнь с длительным латентным периодом, поражающая органы кроветворной системы (А. П. Кузнецова, В. П. Смирнов 1998). Вирус лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС) является этиологическим фактором (первопричиной) лейкоза у коров, телят, реже у других животных: овец, коз и кроликов (Л. Б. Прохватилова и др., 2001; Н. В. Замараева, М. И. Гулюкин, Н. Н. Снежков, 1996; C. Olson et al., 1981). Имеются данные об экспериментальном заражении обезьян (Н. М. McClure, М. Е. Killing, P. Ph. Custer, 1974). Передача ВЛКРС восприимчивому крупному рогатому скоту может осуществляться со всеми секретами и экскретами при попадании в них лимфоцитов, зараженных ВЛКРС. Установлено, что для экспериментального заражения телят достаточно ввести им внутрикожно 2500 лимфоцитов крови от зараженного животного (такое количество лимфоцитов содержится, примерно, в 0,0005 мл цельной крови). Среди основных факторов, обусловливающих передачу вируса лейкоза, наибольшее значение имеет перенос возбудителя через кровь и препаратов из нее, при ветеринарных и зоотехнических обработках, т. е. ятрогенный способ передачи инфекции (В. М. Авилов, В. М. Нахмансон, 1995). В сперме инфицированных быков-производителей ВЛКРС не выявлен. Не наблюдается определенного влияния передачи ВЛКРС потомству от серопозитивных быков-произво-

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

дителей при естественном оплодотворении серонегативных коров. Однако у быков с воспалением генитальных органов в сперме могут быть лимфоциты, инфицированные ВЛКРС. Экспериментально установлено, что коров можно инфицировать путем нанесения таких лимфоцитов на слизистую оболочку матки. Изучение возможности передачи вируса лейкоза при эмбриопересадках подтвердило отсутствие передачи ВЛКРС от коров-доноров коровамреципиентам через эмбрионы (Апалькин В. А., Гулюкин М. И., Петров Н. И., 2005). Вирус лейкоза крупного рогатого скота относится к семейству ретровирусов (в это же семейство входят родственные ВЛКРС вирусы Т-клеточного лимфолейкоза и ВИЧ). Ретровирусным инфекциям свойственен ряд общих признаков: длительность инкубационного периода, хроническое или латентное течение, пожизненное вирусоносительство и строго ограниченный круг восприимчивых животных (Б. Г. Орлянкин, 1996; П. Н. Смирнов, В. В. Храмцов, В. В. Смирнова, 2000). Ретровирусы проникают в клетку, РНК освобождается и превращается в двухцепочечную ДНК – копию, которая встраивается как провирус в ДНК клетки хозяина (Б. Г. Орлянкин, 1996). Встроенный в геном хозяина провирус остается не доступным для воздействия специфических антител и в организме на протяжении всей жизни животного. В благоприятных условиях встроенный провирус формирует новые вирионы, которые отпочковываются от клеточной мембраны для инфицирования новых клеток. Для диагностики лейкоза применяют клинический, патологоанатомический, гистологический, гематологический, серологический и молекулярно-биологический методы. Все разнообразие клинических признаков лейкоза можно подразделить на специфические и неспецифические. Большинство исследователей указывают на первичное появление неспецифических признаков, а затем появляются специфические, по которым можно поставить диагноз (Н. В. Румянцева, Т. М. Шатерникова, 1963; Г. А. Симонян, 1963; Э. М. Ным и др., 1970). По мере развития заболевания у отдельных животных развивается понижение реактивности, вялость. Срав-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

нительно рано у больных лейкозом животных регистрируют нарушение сердечно-сосудистой деятельности (глухие тоны сердца, иногда их раздвоенность), пульс слабого наполнения, возможна аритмия. К числу неспецифических признаков лейкоза относятся нерегулярная жвачка, поносы, запоры. Специфические клинические признаки характеризуются прогрессирующим увеличением поверхностных (околоушных, подчелюстных, предлопаточных, коленной складки, надвыменных), а также внутренних лимфатических узлов, экзофтальмии. (В. М. Лемеш и соавт., 1987). Гематологический метод позволят диагностировать лейкоз на более ранних стадиях развития заболевания. Сущность его заключается в обнаружении в периферической крови повышенного числа лейкоцитов (в основном лимфоидного ряда), слабо дифференцированных клеток, а также полиморфных, атипичных клеток кроветворных органов (Б. Г. Панков, 1980; М. И. Гулюкин и др., 1996). Для оценки результатов исследований в различных странах предложено несколько вариантов «лейкозных ключей». В нашей стране в 1965 году был разработан отечественный «лейкозный ключ». Все димфоидные диагностические «ключи» основаны на количественных показателях. Заражение животных ВЛКРС сопровождается выработкой антител к структурным белкам вируса. Антитела и вирус циркулируют в организме у зараженных животных на протяжении всей жизни. Это позволяет применять серологические методы для диагностики инфекции, вызываемой этим вирусом (Т. С. Костенко и др., 1989; А. Г. Берзяк, B. C. Ковалючко, В. С. Гротевич, Л. И. Киричук, 1990). Однако, как и любой диагностический метод, РИД не лишен недостатков. Так, наличие у лейкоза латентной стадии, когда в крови отсутствуют антитела к вирусу, усложняет диагностику заболевания. Экспериментально установлено, что после заражения скрытый период инфекции (период от момента заражения до появления антител к вирусным антигенам) продолжается от 2 недель до нескольких месяцев, поэтому, постепенно выводя из стада РИД-позитивных животных, теоретически возможно добиваться полного оздоров-

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

ления хозяйства от лейкоза (A. Burny, Bruck С, Cleuter Y., 1985). Тем не менее в оздоровленных стадах, не имевших контактов с другими, через несколько месяцев или даже лет выделяют животных с антителами к ВЛКРС (В. М. Нахмансон, 1986). Это можно объяснить характерным для лейкоза явлением иммунологической толерантности, когда наблюдают вирусоносительство без антителообразования. Иммунологическая толерантность – это частичная или полная утрата способности организма вступать в иммунную реакцию со специфическим антигеном. При лейкозе КРС состояние толерантности может развиваться в случае внутриутробного заражения плода инфицированными лимфоцитами матери в период до проявления иммунной компетенции, то есть, в первые 3 месяца развития эмбриона; у отдельных животных, например, у глубоко стельных коров, когда иммуноглобулины накапливаются в секрете молочной железы, и т. д. Кроме того, бывают случаи серонегативности при наличии сопутствующих инфекций, например, вирусной диареи (В. А. Белявская и др., 2003). Метод непрямого иммуноферментного анализа (ИфА), основанный на применении антивидового конъюгата с использованием ферментов-маркеров, обладает значительно большей чувствительностью, по сравнению с РИД, позволяет автоматизировать процесс, то есть уйти от субъективной оценки результатов реакции. Кроме того, с помощью ИФА можно обнаружить антитела к ВЛКРС в молоке и моче (Н. Т. Джапаралиев, Л. Б. Прохватилова, А. И. Ломакин, П. К. Аянот, 2000; К. Т. Carli, et al. 1993; K. T. Carli, Sen А., Н. Batmaz, E. Kennerman, 1999). Несмотря на очевидные достоинства, достоверность ИФА все же связана с иммунологическими реакциями и поэтому не всегда адекватна. В связи с изложенным выше, с целью ускорения полного оздоровления стад КРС от лейкоза, целесообразно совместно с РИД и непрямым ИФА использовать методы, выявляющие непосредственно вирус или провирус у инфицированных животных. Перспективной в этом плане является полимеразная цепная реакция (ПЦР) (Мальцева Н. А. и др., 2004). Этот метод позволяет вы-

являть провирусную ДНК или вирусную РНК в образце крови животного. Анализ литературных данных позволяет расположить методы диагностики лейкоза в порядке возрастания чувствительности, точности и специфичности в следующий ряд: РИД < ИФА < ПЦР В настоящее время широкое применение метода ПЦР в диагностике лейкоза, на наш взгляд, сдерживается следующими факторами: высокой стоимостью оборудования и реактивов для ПЦР, отсутствием на рынке сертифицированных диагностикумов и не до конца осознанным местом ПЦР-диагностики в системе противолейкозных мероприятий. Важно понимать, что ни один из существующих методов не лишен недостатков. Так, ряд авторов D. Beier, P. Blankenstein,, Н. Fechner, (1992); P. Blankenstein, Н. Fechner, A. Looman, A. Beier, A. Marguardt, D. Ebner (1998) сообщают, что довольно часто выявляется несоответствие результатов ПЦР и РИД: ПЦР-позитивные особи выявляются среди РИД-отрицательных животных, а ПЦР-негативные – среди РИДпозитивных. Вполне вероятно, что, несмотря на очень высокую чувствительность ПЦР, в развитии лейкозного процесса бывают такие периоды, когда уровень провирусной ДНК минимален. В таких случаях РИД оказывается более информативна. Поэтому имеет смысл «дочищать» ПЦР-, РИД- и ИФА-негативных животных, при таком комбинированном использовании диагностических методов гарантировано быстрое и эффективное оздоровление стада. Учитывая то, что ПЦР обеспечивает выявление непосредственно провируса, то есть, результат анализа не зависит ни от возраста, ни от состояния животного, этот метод можно использовать для разделения телят на инфицированных и здоровых в возрасте до 5 месяцев, то есть до того момента, когда использовать РИД нет смысла. Обнадеживающие результаты получены В. В. Макаровым, Д. П. Гринишиным (2005), которым удалось доказать, что использование комбинированной РИД/ПЦР диагностики более чем в два раза ускоряет процесс оздоровления стада от лейкоза, чем использование только РИД-диагностики. Важной областью применения ПЦР является исследование импортированного скота, на-

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

Таблица Данные об инфицированности животных ВЛКРС в различных хозяйствах Исследовано образцов крови

Возраст животных

ПЦР “+” результаты, %

«Дружба» Калининский район

3–4 мес.

25,7

«Бейсуг» Пр.-Ахтарский район

2–3 года

58,6

«Дружба» Пр.-Ахтарский район

3–4 года

72,0

СЗАО СКВО Рост. область

117

3–4 года

ЗАО «Суворова» Пр.-Ахтарский район

121

3–4 года

47,9

ОАО «Племзавод «Кубань»

354

3 года

0,004

«Привольное» Каневского р-на

3-6 мес.

44,5

ЗАО «Племзавод Гулькевичский»

3–4 года

58,3

«Урожай» Каневского р-на

3–4 года

25,0

ООО «Животноводческий комплекс «Ольгинский»

1–5 лет

32,9

Учхоз «Краснодарское»

3–5 лет

100,0

Название хозяйства

ходящегося в карантине, с целью предотвращения завоза ВЛКРС из одной страны в другую. Таким образом, возможны, по крайней мере, три области успешного применения метода ПЦР в диагностике лейкоза: выявление носителей провирусной ДНК среди РИД- и ИфА-отрицательных животных, исследование вновь завозимых в хозяйство животных и выявление зараженных телят в раннем возрасте. В лаборатории биотехнологии СКНИИЖ с использованием метода ПЦР исследовано 1013 образцов крови на наличие провирусной ДНК ВЛКРС. В таблице приведены данные по инфицированности животных различных хозяйств ВЛКРС. Анализируя полученные результаты, хотелось бы отметить следующее. Животные лишь одного из хозяйств (СЗАО СКВО) оказались полностью свободны от носительства провирусной ДНК ЛКРС. Телки голштинской черно-пестрой породы в это хозяйство были завезены из Голландии и не имели контактов с местными животными. Среди других импортных животных (ОАО «Племзавод «Кубань» n = 354, завезены из Венгрии) методом РИД не были выявлены положительно реагирующие, а с помощью ПЦР уда-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

лось обнаружить 1 носителя провирусной ДНК ЛКРС. Более того, провирусную ДНК выявили и в пробе крови теленка, полученного от ПЦРпозитивного животного. Носители провируса были удалены из стада. В хозяйстве ООО «Животноводческий комплекс «Ольгинский» из 97 проанализированных образцов 67 были получены от РИДотрицательных животных. 15 из них оказались ПЦР-положительными. Анализируя данные по носительству провируса, установили, что процент инфицированных телят к 3–4 месяцам (на основании ПЦР-исследований) практически соответствует проценту РИД-позитивных животных того же хозяйства, но в более позднем возрасте (к 3 годам). Это, вероятнее всего, свидетельствует о том, что заражение животных происходит в ранние сроки жизни (трансплацентарно и до 3 месяцев), а первые иммунологические признаки болезни появляются у большинства животных после первой лактации. Следовательно, если проводить разделение телочек методом ПЦР на носителей провируса и здоровых в первые 2–3 недели жизни животного, можно оздоравливать хозяйства значительно быстрее.

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

ОСОБЕННОСТИ ДИАГНОСТИКИ И КЛИНИКО-ИММУНОЛОГИЧЕСКОГО ПРОЯВЛЕНИЯ ЛЕЙКОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА Д. Пономаренко, С. Абакин, Е. Калашникова, ГНУ «Ставропольский научно-исследовательский институт животноводства и кормопроизводства» Ветеринарная лейкозология, изучающая этиологию и патогенез лейкозов сельскохозяйственных животных, разрабатывающая методы борьбы с ними, за последние годы значительно обогатилась принципиально новыми данными, представляющими как теоретический интерес, так и практический научно обоснованный фундамент для системы оздоровления и обеспечения благополучия по лейкозу животных. Несмотря на то, что достигнуты значительные успехи в изучении лейкоза у крупного рогатого скота, данная патология – крайне актуальная проблема ветеринарной науки и практики, требующая принципиально новых, экспериментально доказанных научных сведений. В настоящее время самыми распространенными серологическими методами выявления уровня антител к вирусу лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС) является реакция иммунодиффузии (РИД) и иммуноферментный анализ (ИФА). Результаты многих исследователей указывают, что, зачастую, серологические тесты исследования не эффективны, особенно при диагностики инфицированности молодых животных или особей с низким уровнем содержания антител против ВЛ, а также беременного и иммунизированного поголовья, что нередко является определяющим, так как раннее выявление инфицированных животных имеет важнейшее значение при проведении оздоровительных мероприятий в хозяйствах. В подобных ситуациях рационально и научно обоснованно применение методов исследования генетического материала (полимеразная цепная реакция ПЦР), однако, в связи с биологической законо-

мерно-непрерывной модификационной изменчивостью всех биологических объектов, в том числе и генома ВЛКРС, однозначного решения в этой области лейкозологии пока нет. Нередко в хозяйствах Ставропольского края, Северного Кавказа и в целом по России из-за высокого (РИД и ИФА) процента пораженности стада и невозможности замены здоровыми животными, поголовья не выбраковывают, однако систематически проводят гемато-морфологический контроль крови (лейкозный ключ, лейкограмма) с последующим убоем. Однако большое число исследователей указывают, что на фоне хронизации лейкоза у больных животных наблюдается возникновение и массовое прогрессирование острых и хронических патологий инфекционной и незаразной этиологии, а также ухудшение качества продукции и снижение жизненного потенциала получаемого потомства. Из вышеизложенного становится очевидным, что в настоящее время весьма актуальным является изучение вопросов сравнительной эффективности серодиагностики в РИД и ИФА, установление уровня инфицированности поголовья в возрастном аспекте, определение общего клинико-гематологического и

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

Таблица 1 Сравнительный анализ эффективности тест-систем реакции иммунодиффузии № п/п

Наименование района Ставропольского края

Исследовано проб сыворотки крови

РИД + (кол-во/%)

ИФА+ (кол-во/%)

Кочубеевский

143

39/27,2

95/66,4

Новоалександровский

167

61/36,5

88/52,6

Шпаковский

293

71/24,2

116/39,6

Георгиевский

105

26/24,7

34/32,4

Левокумский

243

72/29,6

186/76,5

ИТОГО

951

269/28,2

519/54,6

иммунологического статуса инфицированных животных. Проанализировав результаты исследования 950 проб сыворотки (табл. 1) крови от крупного рогатого скота 5 районов Ставропольского края в реакции иммунодиффузии и иммуноферментного анализа, можно сделать вывод, что ИФА выявляет на 26,3 % больше инфицированных животных, в сравнении с РИД. Особенный интерес представляют данные по изучению уровня инфицированности ВЛ КРС (РИД и ИФА) в различных половозрастных группах по хозяйствам со средним уровнем инфицированности от 49 до 71 %. Так, результаты массового эксперимента выглядят следующим образом: в группе телок 6 мес. возраста уровень инфицированности ВЛ составил 32,05 %, у телок случного возраста – 35,4 %,

средняя инфицированность нетелей составила 39,6 %; коровы 3–4 лет – 55 %; 5–6 лет – 65–76 %; от 7 лет и старше – 71–90 %. Проведенные исследования по выявлению сравнительной эффективности РИД и ИФА с визуальной интерпретацией и расчетом коэффициента в эксперименте на исследуемом поголовье от 6 хозяйств из различных природноклиматических зон Ставрополья указывают, что из исследованных 199 проб сыворотки положительно в РИД – 58 проб (29,1 %), ИФА (визуально) – 133 пробы (66,8 %), ИФА (коэффициент) – 178 проб (89,4 %). Данные таблицы 2 свидетельствуют о низкой чувствительности реакции иммунодиффузии против иммуноферментного анализа, сравнивая различные способы учета ИФА-реакции, т. е. визуальный и с применением коэффициТаблица 2

Данные по выявлению антител к ВЛ КРС сыворотки крови в РИД и ИФА Кол-во исслед. проб сыворотки

РИД + (кол-во/%)

ИФА+ визуально (кол-во/%)

ИФА+ коэфф. (кол-во/%)

6/33,3

9/50

17/94,4

7/26,9

22/84,6

25/96,1

3/21,4

6/42,8

12/85,7

отриц.

8/42,1

13/68,4

10/52,6

18/94,7

100

32/32

70/70

93/93

199

58/19,1

133/66,8

178/89,4

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

ента, можно сказать о высокой чувствительности – на 22,6 % – второго способа. Подобные данные имеют уникальную ценность для врачей-серологов и практикующих специалистов. В настоящее время в системе клинической диагностики различных патологических состояний инфекционного и незаразного генеза, а также при оценке проводимых терапевтических мероприятий, гематологические исследования приобрели важнейшее фундаментальное теоретическое и прикладное значение. Анализируя данные экспериментальных исследований на дойном поголовье КРС 4–6-летнего возраста, красной степной и черно-пестрой пород, принадлежащих стационарно неблагополучному по лейкозу КРС хозяйству (превалентность 46,7 %). На основании предварительно проведенных серологических исследований (РИД, ИФА) было сформировано 2 группы: контрольная – у животных которой клиническими, серологическими и биохимическими исследованиями не выявлено отклонений от показателей здоровья; опытная – особи, инфицированные ВЛКРС, при общем клиническом осмотре которых не установлено различного рода сопутствующих патологий. Из данных таблицы 3 следует, что у животных опытной группы наблюдается скрытый, но характерный для данной патологии лимфоцитарный лейкоцитоз, эритропения, такое явление может провоцировать кислородное голодание клеток тканей, провоцируя наслоение вторичных заболеваний.

Установлен сдвиг лейкограммы влево, указывающий на омоложение нейтрофильного гранулоцитоза крови, что предположительно обусловлено фоновыми патологиями бактериального происхождения, так как основное заболевание в различной степени инициирует ослабление естественной реактивности организма. При изучении биохимического состава крови испытуемого поголовья большое внимание мы уделили исследованию белкового спектра, уровню некоторых сигнальных ферментов и метаболитов. Так, анализируя данные таблицы 4, видно, что на фоне общей белковой нормпротеинемии в опытной группе наблюдается дисбаланс во фракционном составе (А:Г – 0,44+0,09). Так, у инфицированных животных установлено незначительное повышение β-фракции, что, вероятно, связано с токсикозом и гепатопатией, на это указывает также достоверное повышение уровня аланина-минотрансферазы в крови. Наблюдается увеличение уровня γ-глобулинов, что, по нашему мнению, вызвано активным антителообразованием к вирусу и, возможно, иммунологической реакцией на проникновение секундарной микрофлоры на фоне вероятного ослабления естественной резистентности организма. Анализируя данные биохимических исследований крови инфицированных коров (табл. 5), необходимо отметить, что уровень мочевины в 3 раза превышал таковой в контрольной группе, количество липопротеидов высокой плотности (ЛПВП) оказалось ниже на 44,5 %. Выявили более чем двукратное увеличение концентраТаблица 3

Гематологические показатели КРС инфицированного (опыт.) и неинфицированного ВЛ (контр.) Неитрофилы, % ю

п/я

с/я

Лимты, %

10,8 ± 0,7

3,7 ± 0,2

9,3 ± 1,3

15,6 ± 0,4

3,2 ± 0,3

57,9 ± 1,5

3734,4 ± 138,5

8,4 ± 0,7

8,2 ± 1,3

17,6 ± 0,6

7,8 ± 0,6*

3,65 ± 0,31

57,8 ± 1,5

5404 ± 171,5*

Группа

Эр-ты х 1012

Лей-ты х 109

Б, %

Э, %

Контр. (n = 20)

8,02 ± 0,12

6,4 ± 0,15

0,1 ± 0,1

Опыт. (n = 20)

5,3 ± 0,07*

9,3 ± 0,17*

0,15 ± 0,1

Абс. кол-во лимф.

Абс. кол-во лей-тов

*Р<0,05 – в сравнении с данными контрольной группы животных.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

Таблица 4 Показатели белковой картины и некоторых сигнальных ферментов крови КРС, инфицированного (опыт.) и не инфицированного ВЛ (контр.) Группа

Глобулины, г/л

Об. белок, Альбум., г/л г/л

АсТ, мкат/л

АлТ, мкат/л

А:Г, у. е.

0,74 ± 0,07

0,4 ± 0,04

0,29 ± 0,02

Контр. (n = 20)

76,4 ± 1,52 32,8 ± 2,16 9,82 ± 1,46 9,57 ± 1,31

24,5 ± 1,9

Опыт. (n = 20)

78,1 ± 1,16 24.2 ± 1,52 9,08 ± 1,37

31,7 ± 1,4* 0,44 ± 0,09 0,34 ± 0,03 0,37 ± 0,01*

13,5 ± 1,2

*Р<0,05 – в сравнении с данными контрольной группы животных. Таблица 5 Биохимические показатели крови КРС инфицированного (опыт) и не инфицированного ВЛ (контр. ) Группа

Мочевина, ммоль/л

ЛПВП, ммоль/л

ЛПНП, г/л

Об. липиды

Контр. (n = 20)

1,87 ± 0,22

8,27 ± 1,3

1,51 ± 0,17

3,17 ± 0,28

Опыт. (n = 20)

5,5 ± 0,41*

4,59 ± 0,21*

3,56 ± 0,23*

3,89 ± 0,27

*Р<0,05 – в сравнении с данными контрольной группы животных. Таблица 6 Показатели естественной резистентности КРС Группа

БАСК, %

ЛАСК, %

ФА, %

Контр. (n = 20)

46,8 ± 5,46

65,03 ± 7,5

34,8 ± 2,7

Опыт. (n = 20)

39,5 ± 4,9

29,9 ± 2,26*

14,1 ± 1,45*

*Р<0,05 – в сравнении с данными контрольной группы животных. ции β-липопротеидов (ЛПНП), подобные изменения могут провоцировать возникновение деструктуризирующих сосудистых патологий, так как указанные биологические компоненты способны накапливаться в клетках иммунной системы, провоцируя их патологическую трансформацию. Степень насыщения крови общими липидами разнилась недостоверно. Данные, полученные в ходе изучения уровня естественной резистентности (табл. 6), указывают на явную ареактивность защитных сил инфицированного организма. Подобная тенденция может провоцировать возникновение и

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

массовое вовлечение контаминированного поголовья в активный эпизоотический процесс с инициацией патологических агентов различного происхождения, что, в свою очередь, приведет к ассоциированному течению лейкоза. Таким образом, установлено, что иммуноферментный анализ, в сравнении с реакцией иммунодиффузии, является наиболее эффективным – на 26,3 %, при этом экспериментально доказано, что серодиагностику лейкоза КРС при помощи ИФА эффективнее производить с использованием расчетного коэффициента, так как визуальная интерпретация реакции являет-

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

ся на 22,6 % менее эффективной. При определении инфицированности поголовья в анализе по 6 хозяйствам Ставропольского края в возрастном аспекте указывается, что уже в полугодовалом возрасте степень инфицированности молодняка превышала 30 %, а с увеличением возраста повышался и уровень зараженности – до 71–90 %, что связано с контаминацией и постоянным заражением восприимчивого поголовья. Для эффективного проведения оздоровительных мероприятий необходима ранняя (3,5–4,0 мес.) диагностика инфицированности молодняка КРС с применением современных средств исследова-

ния. При изучении основных гематологических, биохимических и иммунологических показателей у инфицированных ВЛ животных диагностировано: лимфоцитарный лейкоцитоз, эритропения, сдвиг лейкограммы влево. Установлен белковый дисбаланс крови, увеличение концентрации аланинаминотрансферазы, мочевины, липопротеидов низкой плотности. Выявлено снижение уровня естественной резистентности, обнаружено ослабление фагоцитарной активности нейтрофилов крови и уменьшение лизоцимной активности сыворотки.

Ветаптека ВЕЛЕС 6.59 Велес 6.59 содержит бактерии Lactobacillus plantarum и Propionibacterium freudenreichii, выращенные на жидкой питательной среде. Не содержит генно-модифицированных организмов. В 1 мл Велеса 6.59 содержится не менее 1 x 10 КОЕ (колониеобразующих единиц) живых микробных клеток. Представляет собой жидкость от бежевого до темно-коричневого цвета, без запаха, кислого вкуса. Бактерии, используемые для изготовления Велеса 6.59, отличаются устойчивостью к пищеварительным сокам и ферментам желудочно-кишечного тракта млекопитающих. Размножаясь, они выделяют в окружающую среду ферменты, витамины, другие биологически активные вещества. Под воздействием биологически активных веществ нормализуется видовой состав микрофлоры, пищеварение, кислотность среды в желудочно-кишечном тракте, всасывание и метаболизм железа, кальция, жиров, белков, углеводов, триглицеридов, аминокислот, дипептидов, сахаров, солей желчных кислот. В результате процессов, протекающих в желудочно-кишечном тракте под воздействием бактерий, оптимизируется работа гуморального и клеточного иммунитета, повышается неспецифическая резистентность организма к условно патогенным бактериям, устойчивость к стресс-факторам, мутагенам, свободным радикалам. Назначают для стимуляции роста и развития молодняка, повышения сохранности и увеличения продуктивности животных. Для получения дополнительных привесов, повышения естественной резистентности организма животных к инфекционным заболеваниям и в качестве профилактической добавки к основному рациону домашних, сельскохозяйственных и диких животных, в т. ч. пушных зверей и птиц. Велес 6.59 вводят животным внутрь индивидуально или групповым методом с кормом, молоком, молозивом, кипяченой остуженной водой, а также можно вводить ректально после очистительной клизмы. Растворы готовят непосредственно перед применением. Суточная доза биологически активной добавки Велес 6.59 составляет от 0,1 до 0,5 мл на 1 кг веса животного. Повышенная индивидуальная чувствительность к Велесу 6.59. Не рекомендуется использовать Велес 6.59 совместно с антибиотиками, сульфаниламидами и другими бактериальными препаратами. Не следует подвергать термической обработке корма, кормосмеси и жидкости с введенной в них биологически активной добавкой. Продукты животноводства после применения Велеса 6.59 используются в пищевых целях без ограничений.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

ЛЕЙКОЗ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА И ОЗДОРОВИТЕЛЬНЫЕ МЕРОПРИЯТИЯ И. Шайсултанова, ветврач-гематолог Лейкоз КРС – хроническая инфекционная болезнь, вызываемая особым вирусом (ВЛКРС), который находится в лимфоцитах крови. Источник возбудителя инфекции – больные и инфицированные лейкозом животные. Вирус передается через кровь, молоко и др. секреты, содержащие инфицированные клетки. Лейкозом болеет молодняк КРС всех возрастов, но клинически он проявляется, чаще всего, у животных в 4 года и старше. В возникновении и распространении лейкоза существенное значение имеют наследственные факторы. Эпизоотологическими наблюдениями выявлено, что вирус может передаваться от родителей к потомству и контактно – при совместном содержании здоровых животных с больными и инфицированными ВЛКРС. Установлено, что наибольшее распространение это заболевание получило среди красных (бурая латвийская, красная эстонская, красная степная) и черно-пестрой породы скота. При завозе племенных животных из неблагополучных по лейкозу регионов необходимо обращать самое серьезное внимание на возможное инфицирование животных этим вирусом, обязательно проводить серологические исследования проб крови. Из серологических методов выявления инфицированных животных самым доступным для массовых исследований в производственных условиях является реакция иммунодиффузии (РИД) в геле агара. Экономический ущерб, причиняемый лейкозом животноводству, достигает значительных размеров вследствие широкого распространения болезни, вынужденной выбраковки или падежа больных животных, утилизации туш и органов с опухолевыми изменениями, проведения диагностических и противолейкозных мероприятий, ограничений в реализации племенного скота и сдачи его на мясокомбинат, нарушения племенной работы и т. д.

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

В ранее благополучных стадах вирусная инфекция возникает при контакте с инфицированным поголовьем, завезенным из неблагополучных по лейкозу хозяйств. В производственных условиях заражение может происходить при попадании в организм животного лимфоцитов, содержащих вирус лейкоза: при взятии крови, вакцинации, лечебных мероприятиях, хирургических операциях, кастрации, ампутации рогов и хвостов с нарушением правил асептики и антисептики. Не исключается возможность передачи вируса кровососущими насекомыми (слепнями). От 5 до 13 процентов случаев – это внутриутробная передача от больной лейкозом и инфицированной ВЛКРС матери теленку. Лейкозом в сильной степени поражены высокопродуктивные породы скота (например, чернопестрая). В большинстве молодняк этих пород продается для повышения продуктивности местных животных, что способствует распространению лейкоза в ранее благополучные хозяйства. В неблагополучных по лейкозу хозяйствах сохранению определенного числа коров, свободных от вируса, способствует постоянное обновление животных. Однако при длительном совместном содержании гематологически больных и инфицированных животных число последних может достигать 80–90 %. Это свидетельствует об отсутствии абсолютно устойчивых к заражению лейкозом семейств и пород скота. Степень инфицированности животных в стаде зависит не только от продолжительности его неблагополучия, но и от беспривязного содержания скота, частого перемещения животных между скотными дворами, общими пастбищами и др., при которых отмечается частое общение здоровых животных с больными и инфицированными ВЛКРС. Было установлено, что заболеваемость лейкозом в стадах снижается при содержании телят

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

вдали от коров и комплектовании их небольшими группами. Вместе с тем у части телят элиминация материнских (молозивных) антител начинается с 2–3 месяцев и заканчивается к 6-месячному возрасту. Следовательно, большинство телят как с преждевременно элиминированными антителами, так и рожденные без антител от свободных от вируса матерей остаются под угрозой заражения. Не исключается при этом заражение обезличенными молочными продуктами. Оздоровительные мероприятия в неблагополучных по лейкозу хозяйствах, в т. ч. фермерских (отделение, ферма, скотный двор), проводят путем изоляции зараженных ВЛКРС и немедленной сдачи на убой больных животных. В сельхозпредприятиях, где выявлено до 10 % зараженных и больных лейкозом животных, их немедленно сдают на убой. Последующие серологические исследования животных этого стада проводят через каждые 3 месяца с обязательным удалением инфицированных животных. В хозяйстве, где выявляют более 30 % коров и нетелей, зараженных ВЛКРС, и нет условий проводить оздоровительные мероприятия, всех взрослых животных исследуют только гематологическим методом через каждые 6 месяцев. Одновременно организуют работу по созданию стада, свободного от ВЛКРС, путем замены инфицированных коров здоровыми животными. Во всех категориях сельхозпредприятий, где установлена инфекция, вызываемая вирусом лейкоза, организуют выращивание племенных и ремонтных телок отдельно от взрослого поголовья в обособленных телятниках, контролируя их благополучие по отношению к инфекции се-

рологическим методом. Первое серологическое исследование сывороток крови животных проводят в 6-месячном возрасте, а последующие – через каждые 6 месяцев. Из отделений, ферм, хозяйств, оздоравливаемых от лейкоза, разрешается реализация животных в возрасте не моложе 9 месяцев при условии, что их выращивали изолированно от взрослых животных в обособленных помещениях и исследовали их серологическим методом с получением отрицательных результатов. При выявлении больных животных в индивидуальных хозяйствах их подвергают убою, а остальное поголовье содержат изолированно от животных, принадлежащих другим владельцам неблагополучного населенного пункта. Молоко и молочные продукты запрещается реализовывать в свободной продаже. В оздоравливаемых от лейкоза хозяйствах (фермах) проводят дезинфекцию животноводческих помещений и оборудования согласно установленному порядку проведения ветеринарной дезинфекции объектов животноводства. Для дезинфекции применяют 2 %-ный горячий раствор формальдегида, 2 %-ный горячий раствор едкого натра и др. Особое внимание обращают на места и предметы, загрязненные кровью. Навоз и сточные воды утилизируют в установленном порядке. Хозяйства, в том числе ЛПХ граждан, считаются оздоровленными после вывода всех больных и инфицированных животных и получения двух подряд, с интервалом в 3 месяца, отрицательных результатов при серологическом исследовании всего поголовья животных старше 6-месячного возраста.

Ветаптека МАЗЬ ПИХТОВИТИН Пихтовитин наносят тонким слоем на чистую белую ткань или марлевую салфетку, которой предварительно покрывают пораженный участок тела, затем салфетку с препаратом укрепляют бинтом или специальным клеем. Перевязку производят 1–2 раза в день. Мазь можно наносить тонким слоем непосредственно на пораженный участок, слегка втирая ее в окружающие этот участок ткани. При ушибах, маститах накладывают согревающие повязки. Показания к применению. Раны, ожоги, травматические повреждения тканей, экземы, дерматиты, бурситы, ушибы, маститы, папилломы и язвы на сосках вымени.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

ОСОБЕННОСТИ БОРЬБЫ С ЛЕЙКОЗОМ В ЛИЧНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ В. Мадисон, канд. биол. наук, г. Переяслав-Хмельницкий Киевской обл. Заболевание лейкозом крупного рогатого скота, мероприятия по борьбе и меры профилактики на сельскохозяйственных предприятиях подробно освещены в литературе. Главные ее выводы: вирус лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС) не несет прямой угрозы человеку и представляет лишь экономическую проблему в связи с необходимостью оздоровления поголовья. Чтобы не лишиться значительной его части накануне вхождения в общеевропейский рынок, необходимо вести методическое и целенаправленное оздоровление животных от лейкоза по методу «мягкой зачистки» поголовья. Она включает: – немедленную сортировку и изолированное содержание инфицированных (серопозитивных по РИД) животных; – срочную выбраковку клинически больных; – инфицированных (без клиники) высокопродуктивных животных выбраковывают по окончании продуктивного периода и получения от них приплода; – несложные методы получение здорового молодняка от инфицированных коров и постепенная замена инфицированного поголовья позволят обойтись без неоправданных потерь поголовья крупного рогатого скота; – на племенных предприятиях от особо ценных и исчезающих пород животных, серопозитивных по ВЛКРС, организуют сбор эмбрионов и их пересадку свободным от инфекции реципиентам; – закупки эмбрионов по импорту может компенсировать выбраковку зараженного поголовья. Оздоровление поголовья методом «мягкой зачистки» пораженного вирусом поголовья, его замена здоровым молодняком и животными европейского уровня продуктивности через пересадку эмбрионов – единственный путь, который может сохранить остатки украинского стада коров и проводить систематическую борьбу с ВЛКРС.

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

В этом материале мы даем разъяснение часто возникающим конфликтным ситуациям на селе, связанным с мероприятиями по борьбе с лейкозом коров. ЛЕЙКОЗ И ЕС Убыль крупного рогатого скота в Украине составляет, примерно, 200 тысяч коров в год, из них 154 тысячи – по лейкозной статье. На сегодняшний день из 10 млн стада коров осталось менее 3 млн животных. В ближайшей перспективе объемы ликвидации инфицированного поголовья могут достигнуть 200–300 тысяч голов в год. Мы оказались не только плохими наследниками Советского Союза, но и никудышными врачевателями. Парадокс состоит в том, что в то время, как правительство Украины ломает голову над проблемой остановки сокращения поголовья, разрабатывает систему мер и дотаций для стимулирования скотоводства, современные «айболиты» в мундирах не долго думая, решают проблему чистоты коровьих рядов «по-европейски», без всяких научных заморочек и без заметного успеха. Под лозунгом – в Европу без лейкоза и…скота! Когда нашими лейкозными проблемами делишься со скотоводам из США, они пожимают плечами и не понимают причин нашего беспокойства по этому поводу. Современные ковбои, как и их предки, всю жизнь жили со скотом и о нынешних новомодных болезнях слышать не хотят. По их мнению, у коров, особенно молочных, есть по-настоящему серьезные заболевания, в том числе опасные для человека. Но гоняться за каждым вирусом – гриппа, паратифа, диареи, пневмонии телят, лейкоза, ринотрахеита, везикулярного стоматита и прочих – настоящий ковбой не будет. Он просто сдаст инфицированную группу животных на мясо и отправится в банк за материальной компенсацией. Контролировать личные подво-

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

рья гораздо труднее, чем предприятия, и здесь упор в борьбе с лейкозом должен быть сделан на разъяснительную работу. Не пугать бабушек лейкозными «ужастиками» в виде рака крови, а популярно разъяснять им меры профилактики и избавления от неприятной хворобы. Сельчанин – не враг своей скотине, надо только подсказать ему правила поведения в борьбе с лейкозом. Что важно знать сельскому ветврачу? Существующая (еще со времен СССР) концепция борьбы с лейкозом путем жесткой выбраковки, а по сути поголовного истребления инфицированных животных, не соответствует уровню сегодняшним знаний об этиологии и патогенезе заболеваний. Несмотря на «драконовские» способы борьбы, до 60 % коров частного сектора (75 % дойного стада Украины) в некоторых регионах остаются пораженными злосчастным вирусом. По большому счету, лейкоз (как и туберкулез) – это заболевание бедных. Легко бороться с заболеванием в благополучной Европе, когда владелец стада может заменить зараженное стадо на «чистое», получить компенсацию и страховку за возникшее заболевание. В нашей действительности общегосударственные мероприятия по борьбе с инфекционными заболеваниями в значительной мере возложены на плечи производителя продукции. Государственная ветеринарная служба, в этих условиях, не имеет морального права требовать от селян немедленной сдачи на мясо зараженной коровы или телки. Нужен компромисс: – с одной стороны, объяснять владельцу, что зараженные ВЛКРС животные пожизненно неизлечимы и обречены; – выявление скрытых форм заражения лейкозом по реакции иммунодиффузии (РИД) – очень точный и высокочувствительный современный способ диагностики. Ошибок при повторной диагностике РИД почти не бывает; – организация изолированного содержания инфицированных животных от других и от всего сельского стада – главное условие для продления жизни животных; – продлять жизнь инфицированной ВЛКРС высокопродуктивной коровы имеет смысл до момента получения от нее «чистого» от инфекции приплода. В этом главный смысл «мягкой зачистки» стада от лейкоза;

– пастеризация молока от зараженных животных или его использование в переработку – обязательное мероприятие. Абсолютно стойких к лейкозу животных нет. Если в окружающей среде (на ферме, на селе, в стаде) существует источник инфекции, заражение животных – лишь дело времени и подходящих условий для зараження. Повторим, что ВЛКРС не несет прямую угрозу для человека и представляет лишь экономическую проблему в связи с необходимостью оздоровления поголовья. Проще говоря, вирус лейкоза коров угрожает здоровью только корове селянина и животным его односельчан. Другое утверждение о гибели, потере продуктивности инфицированными животными и ухудшении качества их молока также не соответствует действительности. По-настоящему больных животных при запущенном лейкозе выявляется относительно немного (от 0 до 7 % от инфицированных), остальные вирусоносители могут длительное время или пожизненно ничем не выявлять признаков зараженности. Не в интересах вируса быстро расправляться со своим хозяином. Инфицирование ВЛКРС происходит (по аналогии со СПИДом) через кровь, при проникновении в организм лимфоцитов, содержащих вирус лейкоза. Фактором передачи инфекции также являются – молоко, слюна, влагалищные и другие выделения, которые могут содержать белые клетки крови. Заразившись однажды ВЛКРС, животные остаются источником инфекции на многие годы или пожизненно. У каждого десятого инфицированного животного в течение нескольких лет происходит обострение заболевания с летальным исходом. Другие 90 % коров остаются инфицированными ВЛКРС пожизненно. Часто владельцы животных не согласны с запретом совместного выпаса инфицированных и здоровых животных. Это и, в самом деле, недопустимо. Инфицированные ВЛКРС животные неопасны для других коров односельчан, пока они находятся вне общих стад, во дворе или пасутся на индивидуальной привязи. Главная опасность – в контактах животных, так как ВЛКРС, подобно вирусу СПИДа у человека, передается только с кровью (лейкоцитами крови) животного.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

Какой контакт, казалось бы, может быть при «мирной» пастьбе вирусоносителя в общественном стаде? Оказывается, может и самый тесный. Совместная пастьба инфицированных и здоровых животных может обернуться бедой во время проявления коровами признаков охоты. Эта беда заключается в том, что коровы в состоянии охоты близко и «охотно» соприкасаются кожным покровом друг с другом. Странно, что этот «нетрадиционный» фактор горизонтальной передачи ВЛКРС не учитывается современной эпизоотологией лейкозов. Из собственных наблюдений: отсутствие быков в современных стадах приводит к «нетрадиционным» играм коров и телок в состоянии охоты в виде запрыгивания друг на друга. Такие «розовые» забавы часто приводят к повреждению кожного покрова на корне хвоста, маклоках и грудине возбужденных животных. Это – возможный путь передачи вируса лейкоза с лейкоцитами крови у коров в охоте. Трущиеся в охоте «подруги» через ранки обмениваются форменными элементами крови, в том числе и лимфоцитами, несущими ВЛКРС. Менее чем за месяц инфицированное животное способно войти в контакт через кровь на ранах и царапинах со всей нестельной частью стада. В таком случае заражение вирусом в состоянии охоты можно считать состоявшимся. Поэтому требование ветеринарных специалистов о раздельном выпасе инфицированных и здоровых коров, либо выпасе зараженных животных на привязи, следует считать вполне профессиональным и правильным. Настоящая опасность передачи инфекции от больной коровы к здоровой возникает также при внутривенных введениях лекарств, разных вакцинациях, витаминизациях и прочих уколах, выполненных нестерильными инструментами и растворами. Экономия на одноразовых перчатках при ректогенитальном обследовании также может привести к передаче ВЛКРС. Судя по статистике, проблема заболевания коров лейкозом может коснуться каждого второго владельца коровы. Как действовать? Если ветеринарная служба на селе при плановых исследованиях крови ставит диагноз – лейкоз – и советует (или настаивает) на сдаче коровы на мясо, требуйте повторных исследований крови через 30–45 дней для исключения диагности-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ческой ошибки («Інструкція по профілактиці та оздоровленню великої рогатої худоби від лейкозу», № 15–15/220 от 28.09.92). Если корова стельная – через два месяца после отела животного. Подключите к своей проблеме ветеринарного врача, который обслуживает ваше поголовье. Он поможет взять кровь, получить сыворотку и правильно составить сопроводительный лист в районную ветеринарную лабораторию на повторную экспертизу. Внеплановое исследование крови является недорогой платной услугой. Киевская областная ветеринарная лаборатория в пос. Вишневое и центральная лаборатория ветеринарной медицины, помимо РИДдиагностики лейкоза, имеют оборудования для иммуноферментного анализа (ИФА). Исследование методом ИФА, в отличие от РИД, дадут окончательный приговор или опровергнут наличие антител к ВЛВРХ в сыворотке крови. Эти исследования также платные и требуют предварительной договоренности. Направление на исследование в областную или центральную ветеринарную лабораторию помогут составить в районной ветеринарной лечебнице. Но надо отметить, что добросовестно проведенная РИДдиагностика ошибается редко. Если владелец животного адекватно принимает диагноз лейкоза, требуется ему пояснить, что это заболевание неизлечимое и самое время думать об изоляции и замене инфицированной коровы. Следующим шагом будет составление плана мероприятий для снижения последствий заражения животного ВЛКРС. Слабым утешением владельцу коровы может служить лишь тот факт, что в этой беде он не одинок. По крайней мере, половина рогатого парнокопытного стада Украины (и других стран СНГ) может быть инфицирована этим злосчастным вирусом. Последствия ВЛКРС имеют два решения: немедленная сдача на мясо или отсроченная выбраковка. Немедленная сдача целесообразна, если владелец не хочет дополнительных хлопот с изоляцией коровы. Ее продуктивность хозяина давно не устраивает, и нет смысла получать от коровы приплод. Излечения от лейкоза не происходит. Животные остаются пожизненно вирусоносителями лейкоза, из которых каждое десятое погибает в течение нескольких лет в

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

результате обострения заболевания. Если корова нестельная, недавно покрыта и не отличается высокими удоями – ее лучше сразу сдать на мясо. Помещение следует очистить, продезинфицировать (можно через опрыскиватель) и побелить. При покупке новой коровы требуйте справку о состоянии ее здоровья, а еще лучше – проведите внеплановую диагностику отсутствия лейкозной инфекции по РИД. Отсроченная выбраковка. Зараженная ВЛКРС корова обречена. К тому же она на второй половине стельности. У коровы хорошая родословная и высокие удои. Такие вводные предполагают, что самое время подумать о ее замене на здоровый приплод женского пола. Ради этого от владельца потребуются некоторые жертвы и хлопоты. Животное отныне будет существовать изолированно в хлеву или выпасаться на привязи. На нее постоянно будут коситься представители ветеринарной службы, сельского совета и односельчане. И они – правы, так как животное будет оставаться источником вирусной инфекции. Задача владельца – «дотянуть» корову до получения от нее здоровой телочки и взять от коровы максимум молочной продукции. Это и следует пояснять. Главная защита владельца прореагировавшей на РИД коровы от необоснованных нападок в том, что вирус лейкоза коров абсолютно безопасен для человека. За всю историю от обнаружения ВЛКРС (1903 г.) и по сегодняшний день не зафиксировано ни одного (!) случая, чтобы инфекция как-то проявила себя в отношении человека. Проведенные многочисленные исследования лейкоза во многих странах мира не выявили зависимости между заболеваемостью животных и людей. К нашему счастью, сведения о «людоедстве» ВЛКРС, как говорят в Одессе, сильно преувеличены. Никто из скотоводов мира (включая автора этих строк) за минувшее столетие не только не заболел коровьим лейкозом, но даже не чихнул вследствие постоянного контакта с вирусом. Возможность человека «подхватить» ВЛКРС так же невероятна, как заразить корову вирусом человеческого СПИДа. Эта вялотекущая инфекция не требует радикальных мер по ликвидации инфицированных животных, и существующая инструкция по борьбе с лейкозом к этому не обязывает.

Но и долго жить под одной крышей с инфицированной коровой – резона нет. На этих постулатах следует строить отношения и объясняться с заинтересованными лицами. Задача номер один – получить здоровую телочку. Внутриутробное заражение приплода от инфицированной ВЛКРС коровы-матери почти невозможно, и его вероятность составляет, по статистике, несколько процентов. Главный фактор риска заражения – выпойка новорожденной телочке необеззараженного молозива и молока, в которые попадают лимфоциты из кровяного русла. Это главный источник заражения молодняка по вертикали Не верьте инструкции. В пункте 4.4.6. говориться: «Телят до 7-дневного возраста выпаивают материнским молозивом, а далее – пастеризованным молоком». Нельзя выпаивать телят необеззараженным молозивом и молоком в любом возрасте! Поэтому главное правило для получения здорового приплода – предупредить колостральное (через выпойку) заражение ВЛКРС. Молозиво и молоко от зараженной коровы обязательно пастеризовать или брать у владельцев РИДотрицательных коров. Есть еще один простой прием: молозиво и молоко от здоровых коров можно намораживать в запас в пластиковых бутылках, которые, по необходимости, размораживают и разогревают перед дачей теленку. Молоко. С реализацией молока от РИДинфицированных коров проблемы улаживаются в каждом регионе по-своему. Часто зависят от квалификации и служебного рвения ветеринарных специалистов. Перестраховщики есть везде, и на них иногда действует только суд. Инструкция требует обязательной пастеризации, сепарирования и тепловой обработки молока. Запрещений к реализации в таком виде – нет. Простая пастеризация молока (полчаса при 60 ºС или 45 сек. при 70 ºС) убивает вирус лейкоза, а заодно – и возбудителей брюшного тифа, паратифа, туберкулеза и др. Поэтому молоко с рынка лучше употреблять в пищу в виде топленого или пастеризованного продукта. Еще ВЛКРС не любит прямой солнечный свет и УФ-излучение (гибель за 4 часа и 30 мин. соотв.). Даже невероятное разбавление спирта до 2 % убивает вирус за 4 часа.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

Из этого следует, что свет и слабая концентрация спирта избавляют кисломолочную продукцию (простокваша, ряженка) от вируса. Молочную посуду можно обеззараживать горячей водой. А вот в жидком азоте (внимание техникам искусственного осеменения) лимфоциты с провирусной ДНК сохраняют патогенность в течение нескольких лет. Еще, для данной разновидности

ретровирусов характерна низкая заразительность и высокая резистентность макроорганизма по отношению к вирусу, о чем, собственно, мы и писали. Он, вроде бы, и не агрессивен, но очень коварен, если его запустить и не заниматься его зачисткой. В этом отношении о ВЛКРС можно сказать – мой ласковый и нежный зверь.

Ветаптека ЛЕВОМАСТ Левомаст – препарат, содержащий в своем составе левомицетин, сульфадимезин, преднизолон и масляную основу. Препарат имеет гелеобразную консистенцию, цвет – от белого до светло-серого – и не имеет запаха. При температуре 35–39 °С у препарата снижается вязкость и повышается текучесть. Назначение. Лечения различных форм маститов. Биологические свойства. Препарат обладает широким антибактериальным спектром, эффективен в отношении грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов, кроме того, профилактирует и устраняет аллергизацию и сенсибилизацию организма, значительно снижает воспалительную реакцию при маститах. Левомицетин уничтожает подавляющее большинство микроорганизмов, вызывающих различные формы маститов у животных (стрептококки, стафилококки и др.). Сульфаниламид эффективен в отношении микроорганизмов, устойчивых к антибиотикам. Дозировка и способ применения. Препарат применяют для лечения различных форм маститов у животных, внутрицистернально, так и наружно, помня, что препарат водорастворим. Перед введением препарата выдаивают молоко (секрет) из больной четверти вымени, сосок дезинфицируют 70 % этиловым спиртом. Препарат перед применением подогревают до 35-39º С и тщательно встряхивают. Препарат набирают из флакона стерильным шприцем и при помощи катетера вводят в сосок пораженной четверти вымени. При использовании шприца канюлю плотно прижимают к отверстию соскового канала и вводят препарат: – при острых формах маститов – 5 см3; – при затяжных (хронических) патологиях – 10 см3. После введения проводят массаж соска снизу вверх, начиная с сосковой цистерны, вплоть до основания пораженной доли, при этом профилактируя выделение препарата из соска. При отсутствии заметного улучшения, после однократного введения обработку повторяют через каждые 24 часа до полного выздоровления. В профилактических целях обработку сухостойных коров проводят за 3 недели до отела. Противопоказания. Противопоказаний к применению препарата не установлено. Примечания. Во время лечения коров молоко из пораженных четвертей вымени выдаивают в отдельную посуду, обезвреживают кипячением и утилизируют, а из остальных – скармливают животным после кипячения. Для пищевых целей молоко используют через 8 суток после последнего введения препарата (при условии полного исчезновения признаков мастита, подтвержденных маститными тестами). Убой животных и использование мясопродуктов в пищу разрешается через 8 суток после последнего введения препарата. Применение препарата не исключает использование других лекарственных средств.

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

ПРИМЕНЕНИЕ ПРЕПАРАТА ЛИГФОЛ ПРИ ЛЕЙКОЗЕ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА Одной из актуальных задач ветеринарной науки является решение проблемы лейкоза КРС. Доказано, что этиология заболевания связана с наличием в лимфоцитах крови больных лейкозом коров РНК-содержащего вируса экзогенного происхождения, онковируса типа С, получившего название бычий лейкозный вирус, или ретровирус лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС). У инфицированных животных появляется гуморальный ответ на структурные белки вируса, с персистентным лимфоцитозом. В крови увеличивается количество циркулирующих В-лимфоцитов, которые составляют 40– 80 % от общей популяции лимфоцитов, у здоровых они составляют 15–20 %. Важное диагностическое значение для выявления лимфолейкоза имеет качественный состав лимфоидных элементов крови, которые отражают скрыто протекающие патологические изменения. Показано, что все формы гемобластозов у крупного рогатого скота проявляются лишь относительным и абсолютным лимфоцитозом в крови. Это дает возможность диагностировать всех больных лейкозом животных, в том числе в инкубационном периоде. Среди путей воздействия на лимфолейкоз КРС существует возможность снижения вирулентности заболевания путем стимуляции иммунологической резистентности организма, особенно находящегося в инкубационном периоде. С этой целью целесообразно использовать препараты, способные контролировать пролиферацию вируса в клетках за счет стимуляции эффекторных клеток иммунитета и проявляющих свойства стресс-корректоров. Решающее диагностическое значение гематологических показателей в выявлении и прогнозе заболевания открывает возможность достоверной оценки эффективности такого воздействия. Учитывая изложенное, возникла идея изучить эффективность применения Лигфола для

улучшения качества жизни и продуктивных свойств животного, снижения лимфоцитоза и, как следствие, включения его в комплекс мероприятий по профилактике и борьбе с лейкозом. Исследователи остановились на Лигфоле по следующим обстоятельствам. В основе фармакологической активности Лигфола лежат иммуно-антиоксидантные механизмы. В ряде экспериментальных и клинических исследований на домашних животных Лигфол проявил высокую противоопухолевую и противовирусную активность. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ Исследование выполнено в 2005 году специалистами факультета ветеринарной медицины Донского ГАУ и ВНИВИ патологии, фармакологии и терапии Россельхозакадемии в ГУСХП «Ленинградское» МО РФ. В исследование были включены взрослые коровы. Все животные разделены на 3 группы в соответствии с выраженностью лейкозного процесса: Группа 1 – условно здоровые животные без каких-либо клинических или серологических признаков заболевания (инкубационный период). Группа 2 – больные животные с серологическим подтверждением болезни без клинических проявлений лейкоза. Группа 3 – больные животные с серологическим подтверждением болезни и клиническими проявлениями лейкоза. Обследование коров проводили 1 раз в 3 месяца и определяли клинические, серологические, гематологические и патоморфологические показатели заболевания. Лигфол вводили взрослым животным в разовой дозе 5,0 мл на корову 1 раз в месяц в течение 10 месяцев. Курсовая доза 50 мл. Животные контрольных групп получали физиологический раствор. В каждой группе – от 4-х до 15 коров.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

РЕЗУЛЬТАТЫ В группе 1 (условно здоровые животные, инкубационный период болезни) на фоне 10 месяцев применения Лигфола в разовой дозе 5,0 мл абсолютное число лимфоцитов в периферической крови было достоверно в 1,5 раза ниже, чем в группе контроля, и составило к концу наблюдения 4,025 ± 0,6 109/л против группы контроля 6,29 ± 0,86 109/л (Р < 0,05) (рис.). В остальных группах предложенная схема применения препарата не показала статистически значимого отличия от контроля. Для этих групп животных, по-видимому, требуется более интенсивная терапия препаратом Лигфол. Мы планируем уточнение схем его применения для повышения эффективности действия и достижения стабильности результатов.

% к норме

ЗАКЛЮЧЕНИЕ Лигфол в разовой дозе 5,0 мл/животное, примененный 1 раз в месяц в течение 10 месяцев условно здоровым животным в стаде с вирусом лейкоза крупного рогатого скота, вызывает положительную динамику основного гематологического показателя развития лейкозного процесса – абсолютного лимфоцитоза в периферической крови. Это свидетельствует о том, что Лигфол существенно задерживает развитие клинических проявлений хронического лимфолей-

150,0 140,0 130,0 120,0 110,0 100,0 100,0 90,0 80,0 70,0 60,0 50,0 0

коза коров. Мы опубликовали результаты исследования в ряде отраслевых изданий. За короткое время после публикаций к нам обратились представители 14 регионов Российской Федерации с вопросами и предложениями по применению Лигфола на животных, инфицированных лейкозом. Возникла необходимость разъяснения ситуации для всех заинтересованных лиц. ПРЕДПОЛОЖЕНИЯ Полученные результаты исследования и предыдущий опыт применения Лигфола в качестве противоопухолевого и противовирусного средства у различных групп животных позволяют нам предположить, что более интенсивная схема его применения даст возможность значительно улучшить достигнутый результат не только для условно здоровых животных, но и для больных животных с серологическим подтверждением болезни без клинических проявлений лейкоза. РЕКОМЕНДУЕМЫЕ СХЕМЫ ПРИМЕНЕНИЯ: Группа 1 – условно здоровые животные без каких-либо клинических или серологических признаков заболевания (инкубационный период). Схема 1: Инъекции внутримышечно взрослым животным в разовой дозе 5,0 мл на корову

143,4 130,0 120,0 108,6

1-е

2-е

3-е

4-е

взятие крови Физ. р-р

Лигфол

Рис. Тенденции динамики уровня лимфоцитов в крови условно здоровых коров в связи с применением Лигфола

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ТЕМА НОМЕРА: ЛЕЙКОЗЫ

1 раз в 7 дней в течение месяца. Курсовая доза 20 мл. Схема 2: Инъекции внутримышечно взрослым животным в разовой дозе 5,0 мл на корову 1 раз в 14 дней в течение месяца. Курсовая доза 10 мл. Группа 2 – больные животные с серологическим подтверждением болезни без клинических проявлений лейкоза. Схема 3: Инъекции внутримышечно взрослым животным в разовой дозе 5,0 мл на корову – 5 инъекций (на 1-й, 4-й, 7-й, 10-й, 13-й день), затем 1 раз в 7 дней в течение месяца. Курсовая доза 45 мл. Схема 4: Инъекции внутримышечно взрослым животным в разовой дозе 5,0 мл на коро-

ву – 5 инъекций (на 1-й, 4-й, 7-й, 10-й, 13-й день). Курсовая доза 25 мл. Для всех схем применения: По завершении курса требуется провести необходимые исследования крови. Дальнейшее применение препарата впрямую зависит от результатов этих анализов. Но даже при самых благоприятных результатах мы предлагаем продолжить применение препарата по следующей схеме: Схема 5: Инъекции внутримышечно взрослым животным в разовой дозе 5,0 мл на корову 1 раз в месяц в течение 3-х месяцев. Курсовая доза 15 мл. Мы готовы сотрудничать со всеми, кто выразит желание применять препарат Лигфол в своем хозяйстве для оздоровления стада от лейкоза.

Знаете... ПАТИ ХАРН ПОЯВИЛСЯ НА СВЕТ В РЕЗУЛЬТАТЕ ИСКУССТВЕННОГО ОПЛОДОТВОРЕНИЯ. ПО СТАТИСТИКЕ ЭТА ПРОЦЕДУРА В ДВА РАЗА УМЕНЬШАЕТ ШАНСЫ ЗАРОДЫША НА ВЫЖИВАНИЕ В мире осталось не более 33 тыс. особей азиатских слонов. Австралийские зоопарки, расположенные в Мельбурне и Сиднее, последовательно выполняют правительственную программу по спасению этих животных. Детеныш тайской слонихи, ставший знаменитым сразу после появления на свет в сиднейском зоопарке Таронга, получил новое имя, сообщает агентство Ассошиэйтед Пресс. За несколько дней до родов слонихи сотрудники зоопарка заметили, что плод находится в неправильном положении в матке и не подает признаков жизни. После многочисленных обследований с помощью ультразвука ветеринары констатировали смерть слоненка в утробе матери. Но после тяжелых родов, длившихся почти девять суток, на свет появился здоровый слоненок мужского пола. По предположению врачей, детеныш естественным образом перевернулся в родовых путях. Малыш тут же стал проявлять интерес к окружающему миру и принялся обследовать окрестности своего вольера. За неуклюжую походку его прозвали Мистер Шаффлз – Шаркающий. Новорожденный слоненок сразу стал всеобщим любимцем. Буддийские монахи благословили слоненка и предложили дать ему новое имя на тайском языке. В результате голосования, в котором принимали участие 10 тыс. австралийцев, из семи предложенных монахами имен было выбрано одно – Пати Харн, что в переводе с тайского означает «чудесный». Пати Харн появился на свет в результате искусственного оплодотворения. По статистике эта процедура в два раза уменьшает шансы зародыша на выживание. По мнению зоологов, рождение этого слоненка заставит переписать учебники по ветеринарии, ведь после трудной недели родов, которую плод провел в утробе матери в перевернутом положении, шансы на выживание у него были равны нулю. В мире осталось не более 33 тыс. особей азиатских слонов. Австралийские зоопарки, расположенные в Мельбурне и Сиднее, последовательно выполняют правительственную программу по спасению этих животных.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

ГЕЛЬМИНТОЗЫ СВИНЕЙ И. Прохорова, канд. вет. наук, руководитель отдела продаж НПО НАРВАК Большую опасность для свиноводства представляют паразитарные болезни свиней, приносящие большие убытки хозяйствам. Будучи всеядными, свиньи часто страдают различными паразитарными болезнями, возбудители которых (половозрелые черви или их личинки) попадают в желудочно-кишечный тракт, а оттуда – в места постоянной локализации: трихинеллы и цистицерки – в мышцы, аскариды – в кишечник, метастронгилюсы – в бронхи и трахею и т. д. Некоторые паразиты живут на коже или в ее толще и причиняют животным огромный вред – чаще всего клещи или вши. АСКАРИДОЗ – чаще хроническое заболевание поросят и подсвинков, проявляющееся прогрессивным истощением, изменчивостью аппетита, поносом, иногда нервными припадками, кожной сыпью. Возбудитель – нематода Ascaris suum. Цикл развития. В яйцах, выделяемых свиньями во внешнюю среду с фекалиями, при +20–32 °С и наличии влаги через 15–30 дней формируются личинки. В кишечнике свиньи личинки вылупляются, проникают в ее кровеносные сосуды и затем током крови заносятся в печень и легкие. Личинки разрывают кровеносные капилляры и проникают в альвеолы, бронхиолы и мелкие бронхи и остаются там до 7 дней, затем отхаркиваются с мокротой, попадают в ротовую полость, а при проглатывании – в кишечник, где медленно растут и через 2 месяца превращаются в половозрелых самцов и самок. В кишечнике свиньи они живут не более 1 года. Яйца аскарид сохраняют жизнеспособность во влажной почве более года и могут перезимовывать под снегом. Эпизоотологические данные. Болезнь распространена в местностях с повышенной влажностью (центральные и южные районы страны). Животные заражаются чаще на выгульных двориках и реже – в свинарниках, содержащихся в антисанитарном состоянии. Легче инвазируются и тяжелее переболевают поросята в возрасте 2–6 месяцев. Аскаридоз наблюдают в любое время года, но наи-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

больший процент больных поросят – в конце лета и осенью. Переболевшие поросята становятся относительно устойчивыми к заражению. Источником возбудителя болезни являются зараженные аскаридами свиньи. Факторами передачи возбудителя являются корма, вода и вымя свиноматок, загрязненные инвазионными яйцами аскарид, иногда дождевые черви (резервуарные хозяева), содержащие в своем теле личинок аскарид и поедаемые свиньями. Течение и симптомы. В начале болезни у поросят развивается бронхит и бронхопневмония. Отмечается кашель, учащенное дыхание, плохой аппетит, иногда – повышение температуры тела. Болезнь длится до 2-х недель, и обычно свиньи выздоравливают. Через 1,5 месяца (с развитием аскарид до половозрелой стадии) у поросят развиваются симптомы гастроэнтерита, понос, запор, рвота, изменчивость аппетита, истощение, задержка роста и развития, аллергия, приступы эпилепсии. У взрослых свиней аскаридоз протекает бессимптомно. Свиньи старше 1 года не болеют аскаридозом, но часто остаются гельминтоносителями. Диагноз ставят по клиническим признакам, уточняют его путем диагностических вскрытий поросят и выборочного исследования фекалий методом Фюллеборна или Щербовича. Профилактика. В небольших свиноводческих хозяйствах свиней рекомендуется содер-

ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

жать в сухих помещениях с твердыми исправными полами. Выгульные дворики устраивают с твердыми покрытиями. Свинарники и выгульные дворики систематически очищают от навоза. Летние лагеря делают переносными и размещают на сухих местах. Животных (особенно молодняк и подсосных маток) обеспечивают достаточным количеством витаминов и минеральной подкормкой. Подсосных маток выпускают на прогулку только на площадки с твердыми покрытиями. Если нельзя предусмотреть эти условия, назначают химиопрофилактику Новомеком в лечебной дозе подсосным поросятам: 1-й раз в возрасте 35–40 дней, 2-й раз – через 2 недели и 3-й раз – в 3-х месячном возрасте. При поступлении в специализированные откормочные хозяйства молодняк дегельминтизируют в период карантина. При массовом распространении аскаридоза дегельминтизируют все свинопоголовье. Через 10–15 дней после этого выборочно обследуют копрологически и при обнаружении инвазированных животных им дополнительно назначают Новомек. МЕТАСТРОНГИЛЕЗ – сезонное (летнеосеннее) заболевание, преимущественно, молодняка свиней, проявляющееся кашлем, затрудненным дыханием. Возбудитель заболевания – нематода Metast-rongylus clongatus, M. pudendotectus, M. salmi, локализующаяся в бронхах, в основном, в диафрагмальных долях. Цикл развития. Метастронгилюсы развиваются с участием промежуточных хозяев – разных видов дождевых червей. Самки выделяют в просвет бронхов яйца со сформировавшимися личинками. При откашливании со слизью яйца проглатываются животными, а затем вместе с фекалиями выделяются во внешнюю среду, где их и заглатывают дождевые черви. В организме червей яйца превращаются в личинки, дважды линяют и становятся инвазионными. При поедании дождевых червей свиньями, личинки метастронгилюсов освобождаются и внедряются в стенку слепой и ободочной кишок, проникают в мезентериальные лимфатические узлы, остаются в них на

3–5 дней, дважды линяют, затем по лимфатическим сосудам и малому кругу кровообращения заносятся в легкие. В легких они разрывают капилляры и стенки альвеол, попадают в просвет бронхов и через 3–5 недель превращаются в половозрелых самцов и самок. Метастронгилюсы живут в организме свиней от 3–5 месяцев до 1 года. В свинарниках и высушенных фекалиях яйца сохраняются 7–9 месяцев, а во влажных фекалиях и навозе – до 18–20 месяцев. На затененных местах пастбища и выгульных двориков яйца сохраняются до 26–36 месяцев (в условиях северной и центральной зон страны), а на открытых участках – 22–26 месяцев. В теле дождевых червей инвазионные личинки сохраняют жизнеспособность в течение всей жизни червей, то есть до 5–7 лет. Эпизоотологические данные. Болезнь распространена повсеместно. Но чаще встречается в местностях с более увлажненными почвами в конце лета и осенью. Чаще болеют поросята в возрасте 2–9 месяцев. У взрослых свиней (старше 1 года) болезнь протекает почти бессимптомно. Животные заражаются на территории свиноферм, выгульных двориков и в свинарниках с земляными или деревянными полами. Источник возбудителя заболевания – больные свиньи и гельминтоносители, выделяющие с фекалиями во внешнюю среду яйца метастронгилюсов. Факторы передачи возбудителя – дождевые черви, инвазированные личинками метастронгилюсов. Течение и симптомы. При высокой степени инвазии у поросят после отъема заболевание может протекать в подострой форме и через 4–6 недель закончиться летальным исходом. Но чаще оно протекает хронически. Симптомы заболевания появляются через 7–10 дней или позднее – после интенсивного заражения. Поросята становятся угнетенными, дыхание учащенное, появляется кашель. Вначале он слабый и редкий, а затем становится более сильным, частым. Дыхание становится напряженным, менее глубоким, более частым (60–80 движений в минуту) и брюшным затрудненным растянутым выдохом (характерно для метастронгилеза). При аускультации прослушиваются влажные хрипы. В дальнейшем животные сла-

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

беют, худеют, отстают в росте, плохо поедают корм или полностью от него отказываются, но охотно пьют воду. Температура тела, в основном, нормальная. Смерть наступает при картине резкого угнетения и явлениях асфиксии. При выздоровлении симптомы постепенно исчезают, появляется аппетит, но поросята длительное время отстают в росте. При низкой степени инвазии признаки болезни стертые или не выявляются (у взрослых свиней). После переболевания животные становятся устойчивыми к повторному заражению. Диагноз при жизни ставят на основании клинических и эпизоотологических данных, а также обнаружением яиц метастронгилюсов в фекалиях свиней методом Щербовича. После смерти – на основании патологоанатомического вскрытия. Профилактика. Тщательная ежедневная уборка навоза из свинарников и вывоз его в навозохранилище. В свинарниках и на выгульных двориках должны быть цементные полы или деревянные, но настланные на цементное основание, чтобы дождевые черви не могли проникать в станки для свиней. Территорию свинарника постоянно содержат в чистоте и в сухом состоянии. Поступающий в хозяйство молодняк для племенных целей или откорма в период карантина исследуют на метастронгилез. В случае обнаружения инвазии, их лечат и только после этого допускают в общее помещение. При установлении в хозяйстве случаев метастронгилеза и падежа от него, молодняку 3–9 месячного возраста назначают Новомек. Осенью животных дегельминтизируют с профилактической целью. СТРОНГИЛОИДОЗ – весенне-летнее заболевание поросят раннего возраста, проявляющееся поносом, кашлем, покраснением кожи в области живота, конечностей, отставанием в росте и развитии, катаральным воспалением тонкого кишечника. Возбудитель – партеногенетические самки нематод вида Strongyloides ransomi, локализующийся в слизистой оболочке тонкого кишечника. Цикл развития. С фекалиями поросят яйца гельминта попадают во внешнюю среду, где че-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

рез 3–13 часов вылупляются рабдитовидные (с двумя расширениями на пищеводе) личинки, которые развиваются двумя путями: прямым и непрямым. При развитии прямым путем личинки дважды линяют и через 24–36 часов – 4–6 дней – превращаются в инвазионных личинок. При непрямом пути развития личинки через 24–40 часов превращаются в свободноживущих самцов и самок. Самки откладывают яйца, и через 4–16 часов из них выходят рабдитовидные личинки. Через 1–2 дня эти личинки становятся филяревидными и быстро мигрируют из фекалий на окружающие (влажные и теплые) предметы. В организм поросят инвазионные личинки проникают через неповрежденную кожу или заглатываются с загрязненным кормом и с сосков свиноматок. При проникновении через кожу личинки внедряются в венозные и лимфатические сосуды и током крови в подкожной клетчатки и током крови заносятся в легкие. При проглатывании с кормом они попадают в лимфатические и кровеносные сосуды стенки желудка и кишечника и с током крови попадают в легкие. Затем со слизью попадают в глотку, проглатываются и в тонком кишечнике поросят через 5–10 дней превращаются в партеногенетических самок, способных откладывать яйца без оплодотворения их. Самки паразитируют в организме свиньи не более 5–9 месяцев. Инвазионные личинки при наличии влаги сохраняют жизнеспособность на поверхности навоза и на полу свинарников 30–60 дней, но большинство их погибает через 3–4 недели. Яйца, личинки, свободноживущие самки и самцы в высыхающих фекалиях погибают через 1,5 часа – 2–3 дня (в зависимости от температуры). Дезинфицирующие вещества (3 %-й раствор карболовой кислоты и лизола, 5 %-й раствор едкого натра и эмульсии креолина) убивают яйца и личинок стронгилоидеса. Эпизоотологические данные. Распространение стронгилоидоза изучено недостаточно. Встречается в хозяйствах центральных областей РФ и на Дальнем Востоке. Болеют поросята 2–5-месячного возраста. Источник возбудителя заболевания – больные животные. Факторы передачи возбудителя – активное вселение личинок в кожу, вымя свиноматок и корм, загрязненный инвазионными личинками.

ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

Течение и симптомы. У поросят болезнь протекает остро и хронически. При высокой степени инвазии у поросят появляются клинические признаки: вялость, пониженный аппетит, понос, рвота, кашель. Они отстают в росте, худеют. Иногда появляется гиперимия кожи или экзематозный дерматит (на конечностях и животе), сопровождающийся зудом и беспокойством. Учащается дыхание, слизистые оболочки бледные, при тяжелом течении – цианотичные. Острый стронгилоидоз длится 2–3 недели и может заканчиваться летально у поросят 4–6-недельного возраста. При хроническом течении указанные симптомы выражены слабо. В естественных условиях наблюдается стойкий возрастной иммунитет. Свиньи старше года не заражаются и не болеют стронгилоидозом. Диагноз ставят с учетом клинических, эпизоотологических данных и результатов исследования фекалий методом Фюллеборна. Профилактика. Поросят с матками и после отъема содержат в чистых сухих помещениях на ежедневно сменяемой подстилке. При установлении стронгилоидоза молодняк свиней (до 4–6-месячного возраста) дегельминтизируют Новомеком, помещения тщательно механически очищают с последующей дезинвазией кормушек, полов, нижней части стен, перегородок свинарника и предметов ухода горячими (7080оС) 3–5 %-ными водными растворами едкого натра. В неблагополучных по стронгилоидозу хозяйствах свинарники перед переводом в них маток для опороса механически очищают и дезинвазируют. ТРИХОЦЕФАЛЕЗ – заболевание, протекающее бессимптомно у взрослых свиней, а у молодняка после отъема проявляется поносом, истощением, задержкой роста, катаральным воспалением толстого отдела кишечника и наличием в нем возбудителей. Возбудитель – нематода Trichocephalus suis, локализующийся в толстом отделе кишечника. Цикл развития. Зараженные свиньи с фекалиями выделяют яйца трихоцефалюсов во внешнюю среду. При наличии влажности, кислорода и высокой температуре через 3–5 недель

в них сформировываются личинки и яйца становятся инвазионными. В кишечнике свиньи личинки вылупляются и внедряются головным концом в слизистую оболочку ободочной и слепой кишок и через 1,5–2 месяца превращаются в половозрелых самцов и самок. В кишечнике свиней они паразитируют не более 6–8 месяцев. Яйца трихоцефалюсов длительно сохраняются во внешней среде. В южных зонах они могут перезимовывать. Высушивание губительно действует на них. На открытых участках пастбища при высыхании фекалий яйца погибают через 1–2 недели. Эпизоотологические данные. Болезнь распространена повсеместно, проявляется чаще в конце лета и осенью в дождливые годы, а также в хозяйствах с плохими условиями содержания и кормления животных. Источник возбудителя заболевания – свиньи, выделяющие с фекалиями яйца трихоцефалюсов. Факторы передачи возбудителя – корм, вода и вымя свиноматок, загрязненные инвазионными яйцами. Течение и симптомы. При слабой степени инвазии (десятки паразитов) выраженные признаки болезни отсутствуют. При сильной степени инвазии (сотни и тысячи гельминтов) отмечается угнетенное состояние и пониженный аппетит. Перистальтика кишечника усилена, появляется понос, упитанность снижается, поросята отстают в росте. Видимые слизистые оболочки бледные, температура тела нормальная или слегка повышенная. Иногда наблюдаются эпилептические припадки с признаками астмы (удушья). Переболевшие поросята и взрослые свиньи остаются гельминтоносителями. После переболевания свиньи приобретают иммунитет и становятся устойчивыми к повторному заражению. При нормальных условиях содержания животные старше 10–12-месячного возраста трихоцефалезом не болеют. Диагноз в отдельных случаях ставят на основании обнаружения яиц трихоцефалюсов в фекалиях свиней с учетом эпизоотологических данных и симптомов болезни. Фекалии исследуют методами Фюллеборна или Калантарян. При энзоотических вспышках используют метод диагностических вскрытий.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

Профилактика такая же, как и при аскаридозе свиней. ЭЗОФАГОСТОМОЗ – осеннее, иногда энзоотическое заболевание молодняка свиней, проявляющееся истощением, анемией, профузным поносом, геморрагическим воспалением, наличием мелких язвочек и узелков на слизистой оболочке слепой и ободочной кишок, содержащих возбудителей. Возбудителем болезни являются нематоды вида Oesophagostomum dentatum и реже O. longicaudatum, локализующиеся в слепой и ободочных кишках. Цикл развития. Инвазионные личинки нематод, попав в организм свиней с кормом или водой, внедряются в слизистую оболочку слепой и ободочной кишок, инцистируются, растут и через 3–4 недели выходят в просвет кишечника, где через 1,5–2 месяца достигают половой зрелости и самки начинают выделять яйца. Эпизоотологические данные. Болезнь распространена повсеместно. Молодняк заражается при заглатывании инвазионных личинок с кормом и водой на пастбищах и выгульных двориках. Максимальная степень инвазии отмечается в конце лета и осенью. Источником возбудителя заболевания являются свиньи, выделяющие во внешнюю среду яйца эзофагостом. Факторами передачи возбудителя являются: трава, вода, другие корма, загрязненные инвазионными личинками эзофагостом. Течение и симптомы. При слабой степени инвазии (десятки и сотни гельминтов) признаки болезни отсутствуют. При сильной инвазии (тысячи паразитов) болезнь проявляется у молодняка плохим аппетитом, периодическим, иногда профузным, поносом, угнетенным состоянием, задержкой роста и снижением упитанности. Кожа становится неэластичной, бледной, с матовым оттенком, видимые слизистые оболочки анемичны. Болезнь длится 4–6 недель и заканчивается выздоровлением. При тяжелом течении болезни отмечается диарея, про-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

грессирующее истощение, кахексия, возможен смертельный исход. Диагноз ставят посмертно по обнаружению в толстом кишечнике свиней значительного количества личинок (узелков), половозрелых эзофагостом и соответсвующих патологоанатомических изменений. Профилактика. Свиней содержат в чистых помещениях с твердым покрытием. Поят колодезной или водопроводной водой, выпасают только на сухих, часто сменяемых пастбищах. При установлении болезни рекомендуется дегельминтизировать все поголовье хозяйства Новомеком. Лечение. Для лечения метастронгилеза, аскаридоза, эзофагостомоза, трихоцефалеза, стронгилоидоза свиней рекомендуется применять Новомек 1 % подкожно, однократно в дозе 1,0 мл на 50 кг массы тела; саркоптоза – подкожно, двукратно (с интервалом 8–10 дней) в дозе 1,5 мл на 50 кг массы тела; гематопиноза – подкожно, однократно в дозе 1,0 мл на 50 кг массы тела. НОВОМЕК – противопаразитарный препарат, действующим веществом которого является ивермектин (22,23- дигидроавермектина В1), полученный на основе продуктов ферментации почвенного гриба Streptomyces avermytilis. Это бесцветная или слегка желтоватого цвета прозрачная жидкость со слабым запахом, представляющая собой раствор ивермектина в органических растворителях. Новомек 1 % может быть отнесен к группе малотоксичных веществ (IV класс опасности по ГОСТ 12.1.007.76). ЛД50 Новомека при оральном введении белым мышам составила 3700 мг/кг. Введение подкожно 0,6 мг/кг ивермектина однократно перед случкой и свиноматкам дважды в течение 30 дней супоросности не оказало влияния на оплодотворяемость и клиническое состояние родившихся поросят (E. S. Brokken). Опыты по изучению токсичности Новомека для свиней показали, что испытанные дозы (0,2–1,0 мг/кг, подкожно) животные переносили без неблагоприятных последствий, в т. ч. и дозу 1,0 мг/кг, в 3,5 раза превышающую терапевтическую, равную 0,3 мг/кг.

ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

БОРРЕЛИОЗ СВИНЕЙ ОПРЕДЕЛЕНИЕ Боррелиоз свиней (трепанемоз, спирохетоз) – остро протекающая болезнь, которая характеризуется профузным поносом с примесью крови и слизи в фекалиях и некротическими изменениями в толстом кишечнике и желудке. Чаще описывается как боррелиозная (трепанемозная) дизентерия свиней. К борелиям восприимчивы, в основном, свиньи 2–3-месячного возраста, но могут поражаться животные и старших возрастов. ВОЗБУДИТЕЛЬ ЗАБОЛЕВАНИЯ Боррелиоз свиней вызывает В. (Trepanema) hyodisenteria. Возбудитель в морфологическом отношении аналогичен возбудителю Б. у птиц. ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ДАННЫЕ Болезнь имеет широкое распространение почти повсеместно и наносит большой экономический ущерб. Он связан с большим падежом свиней, снижением прироста тела, затрат на проведение лечебных и профилактических мероприятий. Переболевшие дизентерией свиньи пожизненно остаются носителями возбудителей этой болезни, а поэтому не могут использоваться для племенной цели. Они остаются основным резервуаром боррелий. Заражение происходит, в основном, алиментарно – с кормом или водой, загрязненными слизисто-кровавыми фекалиями, в которых находятся возбудители. Их может переносить обслуживающий персонал с предметами ухода и др. Наблюдается стационарность болезни, которая обусловлена широко распространенным явлением носительства боррелий переболевшими свиньями. Как показали наши исследования (Ятусевич А. И., 1979–1985), носителями боррелий могут быть здоровые свиньи (до 20 %). Как правило, сначала появляются единичные больные. Если не проводятся меры по предотвращению распространения болезни, то уже через 3–5 дней она может наблюдаться почти у всех животных. Особенно большую опасность представляет боррелиоз на свиноводческих комплексах, когда сюда передают животных из неблагополучных хозяйств.

ПАТОГЕНЕЗ И КЛИНИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ ЗАБОЛЕВАНИЯ Инкубационный период – 5–12 дней, иногда и больше. Главный признак болезни – кровавый понос. Цвет содержимого кишечника, которое выделяется из него, становится красно-бурым, темно-вишневым. В фекалиях много слизи, кусочков слизистой оболочки кишечника. Свиньи отказываются от корма, апатичные, у них может повышаться температура тела на 0,5–1,0 °С. Поросята быстро худеют, не поднимаются на ноги. Гибнет около 40–50 % заболевших, иногда до 85 % (Притулин П. И., 1976). В стационарно неблагополучном хозяйстве болезнь характеризуется более медленным течением. Наблюдаются также продолжительные кровавые поносы, истощение животных, которые, как правило, выбраковываются. Хроническое течение продолжается 1,0–3,5 месяца. Животные дают слабые приросты, нередко наблюдается нарушение деятельности кишечника, поносы сменяются атонией. Подострое и хроническое течения наблюдаются у животных старших возрастов. Трупы павших свиней истощенные, кожа имеет синеватый цвет, особенно около ушей, на животе; тело, особенно задняя его часть, загрязнено

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

фекалиями. При остром течении – слизистая оболочка кишок и желудка красная, отечная, с единичными и в виде полос кровоизлияними. Они могут быть в мезентериальных лимфоузлах, под эпикардом и эндокардом. На ней много слизистофибринозного экссудата. Содержимое толстого кишечника красно-грязного цвета. Сначала некрозы могут быть на поверхности, а затем почти достигают серозной оболочки. Печень увеличена в размерах. Поверхность ее бугристая, темно-бурого или красного цвета. Селезенка, как правило, в размерах не увеличена, но иногда под капсулой выявляют кровоизлияния. В почках имеет место гиперемия, они темно-красного цвета. Диагноз ставят на основании эпизоотологических, клинических, патологоанатомических и лабораторных исследований. Из лабораторных методов применяют микроскопию в препарате «висячая капля» из содержимого толстого кишечника или из тканей подслизистого слоя. Наилучший результат от павших свиней дает исследование в первые 30 минут после гибели; можно использовать фазово-контрастную микроскопию. Хорошо выявляются боррелии при исследовании мазков из толстого кишечника, окрашенных по методу Бури (черной тушью). Разработаны также методы посевов на искусственные среды (триптозно-соевый агар и др.), серологические реакции. Дифференцируют от чумы, вирусного гастроэнтерита, балантидиоза, кампилобактериоза, сальмонеллеза, колиэнтеротоксемии и др. ЛЕЧЕНИЕ Для лечения больных свиней, в основном, применяют химические препараты. Фармазин используют в виде раствора или вводят внутримышечно в виде 3 %-ного раствора. Растворяют 0,25–0,5 г препарата в одном литре воды и дают животному в течение 3–5 дней. При тяжелом течении болезни фармазин вводят внутримышечно в виде 3 %-ного раствора в следующих дозах: поросятам до 10-дневного возраста – 2 мл, 10–30-дневного возраста – 5–6 мл, 30–60-дневного возраста и старше – 8–10 мл. Тилан (тилазин) применяют с кормом взрослым животным или с водой, по 1,25–2,5 мг/кг 2 раза в день 3 дня подряд. Метранидозол (трихопол) назначают в дозах, как и при балантидиозе, или вводят внутримы-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

шечно в виде 10 %-ного раствора на изотоническом растворе натрия хлорида – по 0,1 мл/кг массы тела 1–2 раза в сутки. Особенно эффективно применение свиньям, которые не принимают корм и воду. Ветдипасфен назначают с кормом или водой по 125–725 мг/животное, в зависимости от массы, 1 раз в день 3 дня подряд. Нифулин применяют с кормом 2 раза в день 7 дней подряд по 5 кг на тонну корма. Авиопен. Растворяют 10 г препарата в 100 мл питьевой воды и дают поросятам по 1 мл раствора в течение 2–4 дней. Микс-10 задают внутрь с кормом или водой в течение 6–10 суток, прибавляя 3–4 кг препарата на 1 т корма. Эмгал необходимо применять в смеси с кормом 3–4 дня по 4 кг на тонну корма. Ригедазол-25 %-ный гранулят содержит действующее вещество – диметранидозол. Применяют его вместо питьевой воды в виде раствора, приготовленного из расчета 50–100 г препарата на 100 л воды. Можно применять это лекарство и с кормом – 1 г на 10 кг живой массы поросят. МОФ содержит метранидозол, окситетрациклин и фуразолидон. Применяют для лечения свиней по 4 кг препарата на 1 тонну корма в течение 5–10 дней. После лечения проводят химиопрофилактику болезни, чтобы избежать рецидива. Для этого применяют вышеназванные лекарства. Для профилактики боррелиоза нужно строго соблюдать ветеринарно-санитарные правила ввоза и содержания свиней в хозяйствах, из которых завозят свиней для комплектования ферм, их обследуют на наличие возбудителей этого заболевания. Если среди свиней находятся носители возбудителей боррелиоза, то их необходимо отправлять на убой. Помещения дезинфицируют 4 %-ным раствором едкого натрия, известью или 2 %-ным формальдегидом, 5 %-ным раствором дезанола. Особое внимание уделяют рациональному кормлению и содержанию животных. Нельзя допускать резкого изменения рациона, нарушений технологии производства свинины. За животными нужно вести клиническое наблюдение и своевременно выявлять больных. В настоящее время налажено производство и применение вакцины против боррелиоза.

НЕЗАРАЗНЫЕ БОЛЕЗНИ

КАК ПРЕДОТВРАТИТЬ КАННИБАЛИЗМ СВИНЕЙ 3. Зелхорст, Й. Дембски, Л. Шилкина, «Миавит», Германия Агрессивное поведение свиней – результат стресса и нарушений в кормлении и содержании. Необходимо выявить причины конкретных форм агрессивного поведения и устранить их. Каннибализм и другие формы агрессивного поведения ухудшают уровень здоровья популяции на откорме. Различают три вида каннибализма: обгрызание хвоста, боков и краев ушей. Каннибализм обычно связан со стрессом, с нарушением обмена веществ, содержанием в корме микотоксинов, наличием паразитов в крови (табл. 1). Из-за стресса в организме свиней повышается концентрация глюкокор-тикоидов, выделяется адреналин, что ведет, с одной стороны, к беспокойству животных, с другой – к сужению кровеносных сосудов, которое предотвращает периферическое кровотечение, и повреждение тканей можно сразу не заметить. Поэтому необходимо избегать стрессовых ситуаций или свести их к минимуму (создать оптимальные условия содержания и кормления, иметь игрушки для отвлечения животных). Наиболее распространенная форма агрессии у свиней – обгрызание хвоста. Вначале животные только сосут или облизывают хвост других особей, который кровоточит, а затем полностью отгрызают. Важный фактор при этом – длина купирования хвоста. Так как конец хвоста не очень чувствителен, раны вначале незаметны. Из последних исследований следует, что купирование хвостов снижает агрессивность животных с 8,5 до 2,4 %. Экономический ущерб от каннибализма достигает заметных величин. Так, в разных хозяйствах Дании за 2005 г. мясокомбинаты забраковали 37 500 свиней из-за следов сильного каннибализма.

В откормочном хозяйстве на 2500 голов ежегодный ущерб из-за каннибализма может достигать 17 тыс. евро (даже с оптимальными условиями содержания). Частая причина возникновения каннибализма, кроме стресса, – дисбаланс обмена веществ. Дефицит питательных веществ, вызванный недостаточностью витаминов, микроэлементов и несбалансированным кормлением как свиноматок в период супоросности, так и поросят в послеродовой период, вызывает каннибализм. Обычно обгрызают хвосты слабые поросята, так как им не хватает питательных веществ и они ищут доступный источник питания, богатый белками и энергией, которым является кровь других животных. Наличие инфекций с последующей активацией иммунной системы и обгрызание хвоста часто взаимосвязаны. Если организму нужно бороться против патогенных бактерий, вирусов или грибов, то ему необходимо повысить потребление белков для создания антител и противовоспалительных медиаторов. В таблице 2 показано влияние активированной иммунной системы на продуктивность свиней. Хорошо видно, что снижается прирост протеина: действие уровня болезней на продуктивность свиней (высокая активация равна болезни). Во время инфекций и после них возрастает потребность животных в протеинах. И быстро образуется их дефицит, который животные компенсируют каннибализмом. В полевом исследовании установлена связь между статусом здоровья и проявлением агрессивности. При респираторных заболеваниях повышается риск агрессивного поведения в 1,6 раза. Если

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

НЕЗАРАЗНЫЕ БОЛЕЗНИ

мортальность после отъема достигает уровня 2,5 % или выше, то риск каннибализма повышается в 3,9 раза. Специальные кормовые добавки снижают степень агрессивности у свиней. В некоторых хозяйствах, добавляя в рацион кормовую соль, добились хорошего эффекта (табл. 3). Наименьшее количество укусов – в группе с высокой концентрацией соли в корме во время всего периода наблюдения. Наиболее агрессивное поведение свиней на откорме проявляется в первую неделю после создания новой группы, и затем животные успокаиваются. В этом эксперименте удалось снизить агрессивное поведение животных, но полностью его подавить не смогли. В дополнительных исследованиях так и не установили прямой связи между содержанием соли в рационе и количеством укушенных поросят. Если решать проблему агрессивности повышением концентрации соли в корме, то необходим контроль за снабжением животных водой, так как в вышеу-

казанной группе с концентрацией соли 1 % использование ниппелей поднялось на 200 %. Магний также снижает агрессивное поведение животных, поскольку участвует в механизме передачи раздражений в нервной системе. Дефицит магния увеличивает раздражимость. Добавляя легкодоступный магний (например, фумарат магния), можно получить успокоительный эффект. Но в практике часто используют дешевый оксид магния, который почти не растворим в воде. Это сильно снижает его биодоступность и, соответственно, успокоительный эффект. Кроме этого, применение оксида магния часто приводит к диарее. Желательно использовать препараты, в которых сочетается несколько питательных и активных веществ (например, Кани-плюс). Этим достигается более широкий спектр действия. Кроме успокоения, у животных выравнивается дефицит питательных веществ и улучшается заживление ран. Дополнительно необходимо поТаблица 1

Факторы стресса Нарушения микроклимата

Ошибки в условиях содержания

Низкая температура после отъема

Недостаточное количество кормомест

Сквозняк

Перенаселение помещения

Переменная влажность

Недостаточное снабжение водой, плохое качество (гигиена) воды

Недостаточный обмен воздуха в помещениях

Зараженность паразитами

Большие колебания температуры

Нерегулярное и недостаточное кормление

Таблица 2 Влияние иммунитета на продуктивность свиней Показатель

Активация иммунитета низкая

высокая

разная

Поедание корма, кг/день

0,97

0,86

12,8 больше

Ежедневное прибавление в весе, г

677

477

Использование корма, к. ед.

1,44

1,88

Прирост протеина, г/день

105

Прирост жира, г/день

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

НЕЗАРАЗНЫЕ БОЛЕЗНИ

Таблица 3 Действие кормовых добавок на степень агрессивности у свиней Показатель

Количество укусов при добавлении в рацион 1% соли

0,25% соли

Время после переселения: 1 -я неделя

6,6

10,3

2-я неделя

2,4

5,1

Суммарно

4,6

6,7

высить содержание сырого белка в рационе, особенно когда активирована иммунная система. Другая форма агрессивного поведения – это укусы по бокам. После перевода животных на доращивание через некоторое время образуются кровавые раны на боках или задних ногах. Развитие некроза на боках похоже на некроз краев ушей. Причины проявления некроза у некоторых животных на боках, а у других на краях ушей – пока не установлены. Укусы ушей тоже расценивают как агрессивное поведение, но чаще имеет место отмирание ушной ткани с края (некроз краев ушей). Обгрызание ушей – это последствие некроза. Заживление ран вызывает зуд, и обгрызание поначалу доставляет животным удовольствие. Существует несколько причин возникновения некрозов ушей. Одна из них – рожок спорыньи в зерне (особенно во ржи). Содержащиеся в них алкалоиды сужают периферические кровеносные сосуды и затрудняют кровоснабжение краев ушей. Сильное загрязнение зерна спорыньей ведет к отмиранию краев ушей. На это влияют паразитоз крови Eperytho-zaoon suis и нарушение обмена веществ, которое ведет к образованию и резорбции эндотоксинов. Если это не учитывать, то лечить такие некрозы очень трудно. Подробно рассмотрим вопросы нарушения обмена веществ. Поедаемость корма у поросят в первые восемь дней неравномерна. Первые три дня поросята недостаточно поедают корм, а на пятый день – переедают. Ту же картину наблюдают и после перевода на откорм. Потребляемое количество корма так велико, что нет равномерного подкисления содержимого желудка. Из этого следует, что вырабатываемого количества соляной кислоты недостаточно для обеззараживания микроорганизмов и нет оптимального

первичного расщепления крахмала. Таким образом, непереваренные питательные вещества переходят в тонкую и толстую кишку, где становятся хорошей питательной средой для кишечной палочки и других бактерий. Следовательно, имеет место рост кишечной палочки в первые десять дней после отъема или перехода на откорм. При хорошем кормлении, менеджменте или медикаментозном лечении нет клинических проявлений, поэтому часто в хозяйстве даже не замечают, что была очень высокая нагрузка бактериями. Но в организме остаются так называемые эндотоксины, которые в здоровом организме обеззараживаются в печени и выделяются через кишечник, легкие или вымя. Но это происходит только пока печень работает нормально. Если печень перегружена или повреждена, эндотоксины обеззараживаются не полностью, они переходят в кровь и там активируют фактор свертываемости крови. Поросята в течение двух недель после отъема или переведения в группу откорма часто начинают чихать. Если рассмотреть их уши, то можно увидеть сильно наполненные кровеносные сосуды – индикаторы повышенного давления и температуры. У животных с массовыми проявлениями некроза краев ушей увеличивается средняя температура поросят после отъема в течение трех недель. Две недели после отъема у многих животных сохранялась высокая температура (39,4 °С). У поросят с повышенной температурой печень еще неделю способна обеззараживать эндотоксины. После этого срока ее защитные функции ослабевают, ядовитые вещества попадают в кровь и активизируют фактор свертыва-

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

НЕЗАРАЗНЫЕ БОЛЕЗНИ

емости. Из-за этого кровь густеет и застаивается, особенно в периферических мелких сосудах и капиллярах, что вызывает некроз краев ушей. Еще через неделю свертываемость крови прекращается и края ушей начинают кровоточить. При таких некрозах необходимо вводить специальные добавки в корм. Специальный корм и добавки к нему (например, Цирколин ® или Кани-плюс) повышают питательность корма и поддерживают печень, что приводит к полному выздоровлению или минимальному клиническому проявлению не-

кроза краев ушей. Эта диета должна содержать хорошо усвояемые компоненты, так как в организме животных под воздействием высокой температуры образуется меньше ферментов. Содержание жира и сырой клетчатки в рационе сводят к минимуму. При этом надо иметь в виду, что некрозы – как «вершины айсберга» скрытых болезней животных. Повышенная температура или нарушение кровообразования и свертываемости крови присущи всей популяции, что снижает продуктивность свиней.

Коротко о важном НИЖЕГОРОДСКАЯ ОБЛАСТЬ: КОЗА НА ПОДВОРЬЕ – ЭТО ВЫГОДНО Знакомьтесь: Татьяна Данилова – хозяйка мини-фермы, где не первый год занимается разведением разных пород коз. А началось все с того, что семья Даниловых несколько лет назад переехала из Нижнего Новгорода на постоянное жительство в село Мотовилово, на былую свою родину. Почему отдали Даниловы предпочтение козам? На это хозяйка фермы отвечает так: – Мы тогда особенно здоровьем не блистали, хотелось выбраться ближе к природе, как говорится, на свежий воздух. Особенно сильно болела моя мама – рук она не могла поднять. Мы, конечно, слышали про чудодейственное козье молоко, потому купили несколько беспородных коз. Представьте, такое молоко буквально поставило маму на ноги – теперь она на ферме вместе со мной управляется, словно и не было никакой хвори. Позже Даниловы стали заниматься чистопородными козами. Так на их подворье появилось несколько коз зааненской породы. А для этого пришлось проехать не близкий путь – в Московскую область, где познакомились с женщиной, державшей на подворье четыре десятка таких коз. Тогда же удалось прикупить и животных нубийской породы. Прослышали про калмыцкую породу, которая дает молоко несравненного вкуса. За такими козами съездили в Воронежскую область. Сегодня на подворье Даниловых 72 козочки. Вроде бы можно и остановиться – дел с таким немалым стадом буквально невпроворот. Но вот зародилась у хозяйки новая идея – расширить свое необычное дело, довести поголовье животных до двух сотен. Конечно, разместить такое стадо на прежнем подворье уже не удается. Потому Даниловы, прикопив от продажи целебного козьего молока денег, решаются на новый смелый шаг – выкупили в Мотовилове здание бывшей столовой, которую решено превратить в новую ферму. Для этого взяли банковский кредит. Что касается сбыта молока, то за ним чуть ли не со всей области к Даниловым приезжают покупатели. Но один факт просто разительный. Дело в том, что к Даниловым обратились врачи из нижегородского научно-исследовательского кожного института, многим детям не помогают обычные лекарства, вот и решено было использовать здесь в лечебных целях целебное козье молоко. Конечно, пришлось предварительно пройти разные проверки, чтобы поставлять сюда козье молоко. Известно, что козы – большие любители полакомиться молодыми ветками деревьев. Однако у Даниловых и с этим с самого начала все обстоит благополучно – их стадо содержится летом на собственном выгуле за селом. А на зиму хозяева припасают обычные корма – сено, дробленку, разные отходы с огорода. Анатолий Ершов, Нижегородская область, «Крестьянские ведомости»

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

АКУШЕРСТВО И ГИНЕКОЛОГИЯ

УДК 619:618.1

СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ МИКРООРГАНИЗМОВ К АНТИБИОТИКАМ И «СПЛ» ПРИ ОСТРОМ ЭНДОМЕТРИТЕ А. Щеголёнкова, Н. Терентьева, М. Багманов, Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия е-mail: selhozizdat@mail.ru Аннотация. Острое воспаление мочеполовой сферы в постнатальный период связано с широким распространением патогенной микрофлоры. Заболевание в настоящее время трудно поддается лечению при использовании традиционных методов в связи с устойчивостью микроорганизмов к большинству антимикробных средств. В этой связи существует необходимость исследования новых антимикробных препаратов с широким спектром действия. Ключевые слова: острый эндометрит, устойчивость микроорганизмов, антимикробные свойства, штаммы микроорганизмов.

THE COMPARATIVE CHARACTERISTIC OF SENSITIVITY OF MICROORGANISMS TO ANTIBIOTICS AND «CANDLES FORMING FOAM WITH A HAZEL GROVE» AT THE SHARP INFLAMMATION OF A UTERUS A. Shchegolyonkova, N. Terentyevа, M. Bagmanov Summary. Sharp the inflammation of uterus is the widespread postnatal pathology caused pathogenic microflora. Disease now is problematic to cure, using traditional methods, in connection with stability of microorganisms to the majority of antimicrobic means. In this connection there is a necessity of research of a new antimicrobic preparation with a wide spectrum of action. Keywords: sharp endometritis, stability of microorganisms, antimicrobic properties, strains of microorganisms. Острый эндометрит является распространенной акушерско-гинекологической патологией вызываемой патогенной микрофлорой [2, 3]. Заболевание в настоящее время проблематично излечить, используя традиционные методы, в связи с устойчивостью микроорганизмов к большинству антимикробных средств [1]. В связи с этим возникает необходимость изыскания нового противомикробного препарата с

широким спектром действия, каковым является «СПЛ». МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ Бактериологическому исследованию подвергали пробы маточно-цервикального секрета коров черно-пестрой породы с клиническими признаками острого эндометрита в ранний послеродовой период, принадлежащих молочному комплексу «Октябрьский» Чердаклинского

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

АКУШЕРСТВО И ГИНЕКОЛОГИЯ

района Ульяновской области. При изучении видового состава микрофлоры использовали общеизвестные методики, согласно «Методическим указаниям по бактериологическому исследованию молока и секрета вымени» (1983). Видовую принадлежность бактерий устанавливали с помощью определителя микробов (Берджи, 1997). Для определения чувствительности выделенных штаммов микроорганизмов к антибиотикам использовали диско-диффузионный метод согласно «Методическим указаниям по определению чувствительности к антибиотикам возбудителей инфекционных болезней сельскохозяйственных животных» (1981). Кроме того, испытывали антимикробные свойства нового препарата «СПЛ» (свечи пенообразующие с лещинником), представляющего собой готовую лекарственную форму с активнодействующим компонентом на пенообразую-

щей основе. В состав свечей входят: высушенная густая фракция 280 продукта, полученного путем сухой возгонки лещины; карбахолин и пенообразующая основа. «СПЛ» применяли в разведении 1:25, 1:50, 1:75 и 1:100. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ Данные по сравнительной характеристике влияния антибиотиков и «СПЛ» на выделенные микроорганизмы представлены в таблице. Изучив данную таблицу, можно сказать, что штаммы E. Coli были наиболее чувствительны к бициллину (100 %), цефаклору (100 %), цефотоксиму (100 %), ципрофлоксацину (100 %), цефтриаксону (100 %) и цификсиму (100 %), устойчивы к имипенему, тобрамицину, нетиллмицину, гентамицину, аминацину, карбенициллу и меропенему. Бактерии рода Proteus были наиболее чувствительны к бициллину (100 %), цефаклору (100 %), цефотоксиму Таблица

Сравнительная характеристика влияния антибиотиков и «СПЛ» на различные микроорганизмы

Препарат

чув., %

кол-во исслед. культур

чув., %

кол-во исслед. культур

чув., %

Streptococcus

кол-во исслед. культур

Candida

чув., %

Proteus

кол-во исслед. культур

E. coli

«СПЛ»

100

Оксациллин

—

100

Эритромицин

—

Клиндомицин

—

100

Левофлоксацин

—

83,3

Тетрациклин

—

Ванкомицин

—

Бициллин

100

—

Цефаклор

100

—

Цефотоксим

100

—

Ципрофлоксацин

100

—

Цефтриаксон

100

71,4

—

Имипенем

—

Тобрамицин

—

Нетиллмицин

—

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

АКУШЕРСТВО И ГИНЕКОЛОГИЯ

Окончание табл. 1

Гентамицин

—

Аминацин

—

33,3

—

Карбеницилл

—

Меропенем

—

33,3

—

Цификсим

100

66,6

—

Цефтазидим

—

100

—

Азтреонам

—

Фуразолидон

—

Нистатин

—

100

—

Флуконазол

—

Итраконазол

—

Кетоконазол

—

Клотримазол

—

33,3

—

Амфотерицин

—

(100 %), ципрофлоксацину (100 %), цефтриаксону (71,4 %), цификсиму (66,6 %) и цефтазидиму (100 %), устойчивы к тетрациклину, имипенему, тобрамицину, нетиллмицину, гентамицину, аминацину, меропенему и азтреонаму. Штаммы Streptococcus были наиболее чувствительны к оксациллину (100 %), эритромицину (80 %), клиндомицину (100 %), левофлоксацину (83,3 %), тетрациклину (50 %) и ванкомицину (50 %) и устойчивы к тетрациклину (50 %) и ванкомицину (50 %). Дрожжеподобные грибы рода Candida были чувствительны к нистатину (100 %) и флуконазолу (50 %) и устойчивы к флуконазолу (50 %), итраконазолу (60 %), кетоконазолу (80 %), клотримазолу (66,6 %) и амфотерицину (75 %). При определении чувствительности выделенных микроорганизмов к антибиотикам установили, что штаммы E. coli, бактерии рода Proteus, штаммы Streptococcus и дрожжеподобные грибы рода Candida были значительно устойчивы к широко применяемым антибиотикам. Также ни один антибиотик не дает нам 100 % результат на всех исследуемых микроорганизмах одновременно. В то же время все выделенные культуры в 100 % случаев были чувствительны к новому препарату «СПЛ».

ВЫВОДЫ Анализируя данные по исследованию чувствительности выделенных микроорганизмов к антибиотикам, можно сделать вывод, что практически ни один из широко применяемых антибиотиков не подавлял роста большей части выделенных штаммов микроорганизмов, также стоит отметить, что среди всех антибиотиков нет не одного, который одновременно подавляет рост и развитие всех четырех микроорганизмов. Применение «СПЛ» подавляет рост микроорганизмов при разведении до 1:50. Следовательно, включение данного препарата в схему лечения острого послеродового эндометрита приведет к лучшему результату и будет экономически целесообразнее. ЛИТЕРАТУРА 1. Баймишев М. Х., Григорьев В. С. Эффективность антибактериальных препаратов при патологии послеродового периода у коров // Ветеринария. – 2010. – № 6. – С. 39. 2. Косик Е. А., Баталин Ю. Е. Лечение и профилактика послеродовых осложнений у коров // Ветеринария. – 2010. – № 1. – С. 33. 3. Смирнов А. М. Достижения и актуальные проблемы ветеринарной фармакологии и токсикологии // Ветеринария. – 2010. – № 2. – С. 3.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

БОЛЕЗНИ МОЛОДНЯКА

КАРДИНАЛЬНОЕ РЕШЕНИЕ ПРОБЛЕМЫ РЕСПИРАТОРНЫХ И ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ ЖИВОТНЫХ О. Котылев, д-р вет. наук, проф., Ю. Шиляева, канд. вет. наук, А. Карелов, канд. хим. наук, В. Иванов, канд. хим. наук, А. Савельчев, канд. экон. наук По официальным данным «Россвинопрома», за 2004 год в крупнейших свинокомплексах процент падежа к обороту стада в среднем составил до 23 %. При этом падеж свиней исчисляется тысячами: до 9 тыс. голов в комплексах на 54 тыс. гол.; до 25 тыс. голов в комплексах на 108 тыс. голов; до 86 тыс. голов в комплексах на 216 тыс. гол. В более мелких комплексах процент падежа выше. Если взять стоимость одной головы, ориентировочно, от 500 рублей, потери от падежа составляют 300 000–43 050 000 рублей на один комплекс – колоссальная сумма, которую можно сберечь. Общеизвестно, что основной причиной падежа являются желудочно-кишечные и распираторные заболевания. К сожалению, большинство существующих в настоящее время препаратов не эффективно, к тому же их многолетнее использование существенно снижает эффективность их применения из-за появления устойчивой микрофлоры. В настоящее время есть кардинальный способ решения этой актуальной проблемы, позволяющий многократно снизить или свести падеж к минимуму, что подтверждается многолетним опытом работы во многих регионах РФ. Таким способом является использование препарата Этасульфон. Этасульфон – уникальный в своем роде, не имеющий аналогов, отечественный ветеринарный препарат последнего поколения. Он обладает бактерицидным, противовирусным, противохламидийным и иммуномодулирующими свойствами, к нему

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

не возникает привыкания у микрофлоры. Механизм действия заключается как в блокировании включения аминокислоты фенилаланина в синтез белка микробной клетки, так и в активизации иммунной системы организма. Лечение любого заболевания должно быть комплексным и обязательно направленным на повышение резистентности организма. Не секрет, что при пониженной резистентности организма очень трудно получить ожидаемый эффект, даже применяя самые современные и дорогие аппараты. Поэтому применяя препарат, действующий на этиологию заболевания, необходимо применять дополнительно препараты, повышающие иммунитет животного, что ведет к удорожанию курса лечения и не всегда удобно. Препарат Этасульфон включает в себя характеристики, необходимые при комплексном лечении животных, т. е. обладает противомикробным действием и, одновременно, выраженным иммуномодулирующим действием. Таким образом, применение Этасульфона полностью соответствует принципу комплексного лечения – один препарат несет в себе свойства нескольких! Необходимо отметить, что препарат высокоэффективен не только терапевтически, но и обладает высокой экономической эффективностью – до 300 рублей прибыли на 1 рубль затрат. Высокая терапевтическая и экономическая эффективность, а также широкий спектр действия препарата привлекли внимание специалистов ведущих НИИ России (ВНИВИ г. Казань, ВНИИ экспериментальной ветеринарии г. Мо-

БОЛЕЗНИ МОЛОДНЯКА

Таблица

Стоимость курса лечения, руб.

Количество животных, которых можно вылечить 1 кг Этасульфона

Внутрь

Расход препарата при курсе лечения 3–5 дней, г

Внутримышечно

Вид животного

Суточная доза 5 % раствора, мл

Способ введения

Доза препарата

Эффективность применения Этасульфона

Поросята (живая масса 10 кг)

0,2 мл/кг

0,6–1,0

2,4–4,0

1000–1666

Телята (живая масса 40 кг)

0,2 мл/кг

2,4–4,0

9,6–16,0

250–416

Поросята

5 мл

1,5–2,5

6,0–10,0

400–666

Телята

20 мл

6,0–10,0

24,0–40,0

100–166

сква, ГАВМ г. Санкт-Петербург) с целью дальнейшего расширения сферы его применения. Примечание. Применение препарата в различных регионах России на большом поголовье

животных показало, что препарат одинаково высокоэффективен как при внутримышечном, так и при применении внутрь, независимо от формы заболевания.

Ветаптека ДОКСИЦИКЛИН 40% ДОКСИЦИКЛИН 40 % – антибиотик тетрациклинового ряда в форме порошка. Фармакологические свойства ДОКСИЦИКЛИН является бактериостатическим антибиотиком с широким спектром действия, активным в отношении грамположительных и некоторых грамотрицательных бактерий, микоплазм, хламидий и некоторых простейших. ДОКСИЦИКЛИН ингибирует синтез белка в бактериальной клетке на рибосомальном уровне. ДОКСИЦИКЛИН обладает высокой биодоступностью (до 95 %) после орального применения. Препарат быстро всасывается, благодаря липотропности легко проникает через клеточные мембраны и обладает очень большим объемом распределения. Очень высокие концентрации создаются в желчи. В тканях препарат содержится в больших концентрациях, чем в сыворотке крови, благодаря энтерогепатической циркуляции. ДОКСИЦИКЛИН имеет более низкую токсичность, по сравнению с другими тетрациклинами, так как выделяется, главным образом, с фекалиями (до 80 %), а не с мочой. Период полувыведения составляет до 24 часов. Дозировка и применение ДОКСИЦИКЛИН 40 % назначают крупному рогатому скоту, телятам, овцам, свиньям, козам для лечения инфекций, вызванных микроорганизмами, чувствительными к тетрациклинам, в частности, при лептоспирозе, энзоотической пневмонии, геморрагической септицемии, некробациллезе, анаплазмозе, энзоотическом аборте, синдроме ММА (мастит-метрит-агалактия) и других инфекциях, а также в качестве ростостимулятора. ДОКСИЦИКЛИН 40 % вводят с кормом в дозе 250 г на тонну в течение 5–21 дней. Период ожидания составляет: для мяса КРС – 14, свиней – 8, птицы – 7 дней.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ФАРМАКОЛОГИЯ И ТОКСИКОЛОГИЯ

ТОКСИКОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА СОЧЕТАННОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ ДЕЦИСА И Т-2 ТОКСИНА НА ОРГАНИЗМ ЖИВОТНЫХ И ИЗЫСКАНИЕ ПРОФИЛАКТИЧЕСКИХ СРЕДСТВ В. Егоров В редакции Демидчик Л. Г. В настоящее время, в связи с возрастающим антропогенным воздействием на окружающую среду, все чаще в кормах обнаруживаются токсиканты как природного, так и техногенного происхождения. К природным экотоксикантам относят микотоксины, вырабатываемые микроскопическими грибами. Среди микотоксинов наиболее опасным для животных является Т-2 токсин, который вырабатывается грибами рода Fusarium. Одним из факторов, увеличивающих опасность загрязненных кормов микотоксинами, является возможное сочетание их с пестицидами. В последние годы все более широкое применение в сельском хозяйстве находят инсектициды, относящиеся к группе синтетических пиретроидов. Причем потенциальную опасность пиретроидов сегодня явно недооценивают. Общепризнано мнение, что это малотоксичные и быстро разлагающиеся в объектах окружающей среды, организме животных и человека соединения. Однако, по мнению В. В. Заря (2001), как для животного мира, так и для человека безопасных пестицидов не существует. Одним из наиболее распространенных и используемых ядохимикатов из группы пиретроидов является децис. В результате сочетанного действия микотоксинов и пиретроидов выявлены случаи массового падежа племенного крупного рогатого скота. В растительных объектах и патматериале было установлено наличие пиретроида, в то же время в образцах корма был обнаружен микотоксин (М. Я. Тремасов и др., 2005).

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

В настоящее время назрела необходимость разработки усовершенствованной системы токсикологического контроля безопасности кормов и разработка лечебно-профилактических мероприятий при сочетанном их загрязнении микотоксинами и пиретроидами. Целью данных исследований было изучение токсичности дециса и Т-2 токсина при совместном поступлении, влияния их на организм животных, а также разработка профилактических средств при отравлении этими токсикантами. Работа выполнена в отделе токсикологии ФГУ «ЦТРБТЭНИВИ» (г. Казань). Для экспериментальных исследований использовали кристаллический децис, содержащий 98,2 % активного действующего вещества – дельтаметрина, представленный д-ром хим. наук, проф. Р. Д. Гареевым, и кристаллический Т-2 токсин, полученный в лаборатории микотоксинов ФГУ «ФЦТРБ-ВНИВИ» ст. науч. сотр. А. И. Сергейчевым В качестве продуцентов микотоксина использовали гриб Fusartum sporotrichiella, штамм 2 м  15, предоставленный д-ром вет. наук А. Н. Котиком. В экспериментах использовано 452 белые крысы, 112 кроликов, 44 овцы. Кормление осуществлялось по рационам, принятым в виварии ФГУ «ФЦТРБ-ВНИВИ», и соответствовало зоотехническим требованиям. Токсиканты вводили перорально: децис в виде масляного, Т-2 токсин –5 % водноспиртового растворов. Расчет токсических доз проводили по методу Кербера (1931). Кумулятивные свойства опреде-

ФАРМАКОЛОГИЯ И ТОКСИКОЛОГИЯ

ляли по методу Лима и др. (1961), с выявлением коэффициента кумуляции по формуле Ю. С. Кагана, В. В. Станкевича (1964). Установлено, что среднесмертельная доза дециса для крыс при раздельном поступлении составила 45,8 мг/кг, Т-2 токсина – 3,0 мг/кг, при сочетанном воздействии – 38,3 и 1,8 мг/кг соответственно. Аналогичные исследования были проведены на кроликах. Среднесмертельная доза дециса для кроликов составила 356,7 мг/кг, Т-2 токсина – 0,54 мг/кг, а при сочетанном воздействии – 290,0 и 0,46 мг/кг соответственно. Проведенные опыты свидетельствуют о том, что децис и Т-2 токсин при сочетанном воздействии на животных вызывают смертельный исход при меньших дозах, чем при их раздельном введении. В эксперименте использовали белых крыс, которым в течение 19 сут. перорально вводили децис и Т-2 токсин в дозах 1/10 ЛД50, увеличивая ее через каждые 4 сут. в 1,5 раза. Гибель крыс начиналась на 15 сут. с момента введения токсинов, а на 19 сут. погибло 50 % животных. При многократном введении дециса и Т-2 токсина, дозы, вызывающие гибель 50 % животных, составили 219,3 и 14,3 мг/кг соответственно, что значительно ниже, чем при раздельном поступлении каждого из токсинов. Коэффициент кумуляции дециса и Т-2 токсина при сочетанном воздействии для крыс составил 4,8. Согласно принятой классификации (Л. И. Медведь, 1964), децис и Т-2 токсин при сочетанном воздействии обладают умеренной кумуляцией. Опыты проведены на 48 самках белых крыс, разделенных на 4 группы по 12 крыс в каждой. Первая группа служила биологическим контролем, вторая получала децис, третья – Т-2 токсин, четвертая – одновременно оба токсиканта. Животным токсины задавали с 1 по 17 сут. беременности, в дозах на уровне ПДК каждого из них. Результаты представлены в таблице. Из таблицы видно, что предимплантационная гибель плодов в группах, получавших децис и Т-2 токсин раздельно, по сравнению с контрольной, увеличилась на 7,9 и 34,8 % (Р < 0,01) соответственно, а при сочетанном воздействии – на 40,5 % (Р < 0,001).

Постимплантационная гибель плодов во второй группе, по сравнению с контролем, увеличилась на 8,2 %, в третьей – на 18,8 %, в четвертой – на 47,1 % (Р < 0,001). Наименьшее увеличение эмбриональной смертности, по сравнению с контролем, наблюдалось у плодов, получавших раздельно децис – 7,8 %, при поступлении Т-2 токсина она увеличилась на 25,4 % (Р < 0,01), а при введении дециса и Т-2 токсина совместно – на 40,6 % (Р < 0,01). ТОКСИЧНОСТЬ ДЕЦИСА И Т-2 ТОКСИНА ПРИ МНОГОКРАТНОМ ВОЗДЕЙСТВИИ НА КРЫС Исследования проводились на белых крысах массой тела 170–180 г. Для этого были сформированы 4 группы животных по 12 гол. в каждой. Крысам первой группы внутрижелудочно задавали растворители в аналогичном объеме, второй группе – децис в дозе 1/10 ЛД50, третьей группе – Т-2 токсин в дозе 1/10 ЛД50, животные четвертой группы получали одновременно оба токсиканта. Клинические признаки отравления в более ранние сроки начали проявляться в группе крыс, получавших совместно оба токсиканта, и характеризовались взъерошенностью шерстного покрова, шаткостью походки, диареей, также отмечались эрозии и некрозы кожи губ и слизистых оболочек ротовой полости. Клинические признаки отравления раньше всех начали проявляться и у овец, получавших сочетанно децис и Т-2 токсин. К 18 сут. эксперимента у животных этой группы наблюдалось угнетение, взъерошенность шерстного покрова, снижение аппетита, к 22 сут. отмечались диарея, эрозии и некрозы кожи губ и слизистых оболочек ротовой полости. В группах, получавших токсины раздельно, клиническая картина интоксикации проявлялась в более поздние сроки и была менее выражена. У овец, получавших только децис, количество эритроцитов к 30 сут. снизилось на 10,2 %; у овец, затравленных Т-2 токсином, количество эритроцитов снизилось незначительно. При сочетанном воздействии дециса и Т-2 токсина количество эритроцитов к 30 сут. снизилось на 1 1,1 %. В первой группе в течение всего времени исследования крови количество лейкоцитов повышалось и к 30 сут. было выше исходных данных

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ФАРМАКОЛОГИЯ И ТОКСИКОЛОГИЯ

Таблица Эмбриотоксические свойства дециса и Т-2 токсина при их раздельном и сочетанном воздействии на крыс (n = 6) Группа животных

Показатель 1-я

2-я

3-я

4-я

Количество желтых тел

12,5 ± 0,35

12,35 ± 0,4

12,06 ± 0,15

11,95 ± 0,1

Количество мест имплантаций

11,31 ± 0,2

11,08 ± 0,25

10,52* ± 0,4

10,35 ± 0,36*

Количество живых плодов

0,35 ± 0,6

10,06 ± 0,24

9,46 ± 0,18

9,06 ± 0,39

Количество мертвых плодов

0,96 ± 0,5

1,02 ± 0,41

1,06* ± 0,61

1,29 ± 0,35

Доимплантационная гибель, %

9,5 ± 0,56

10,25 ± 0,68

12,81* ± 0,51**

13,35* ± 0,5***

Постимплантационная гибель, %

8,5 ± 0,61

9,2 ± 0,7

10,1 ± 0,4

12,5 ± 0,25***

Общая эмбриональная смертность, %

17,2 ± 0,8

18,54 ± 0,91

21,56* ± 0,75**

24,18* ± 0,78***

Выживаемость, %

82,8 ± 0,9

81,5 ± 1,0

78,4* ± 0,9*

75,8 ± 1,0**

Краниокаудальный размер плода, см

3,05 ± 0,06

2,98 ± 0,05

2,91 ± 0,07

2,85* ± 0,04*

Масса плода, г

2,95 ± 0,08

2,89 ± 0,07

2,82 ± 0,07

2,76 ± 0,08

*Р < 0,05; **Р < 0,01; ***Р < 0,001. на 10,3 %. Во второй и третьей группах к 30 сут. наблюдалось снижение этого показателя на 37,2 (Р < 0,05) и 34,0 % (Р < 0,05) соответственно. Наблюдалось достоверное снижение уровня гемоглобина во всех группах овец к 30 сут. эксперимента: в первой группе – на 15,1 % (Р < 0,05), во второй группе – на 16,6 % (Р < 0,05), в третьей – на 19,5 % (Р < 0,05). СОЭ в первой группе к 30 сут. достоверно увеличилась на 50,0 % (Р < 0,001), во второй – на 25,0 % (Р < 0,01), в третьей – на 13,0 % (Р < 0,05). При проведении патоморфологических исследований овец, получавших раздельно децис, видимых отклонений от нормы не наблюдалось. Миокард светло-красного цвета. Легкие среднего размера, бледно-розового цвета, плотной консистенции, края заостренные. Печень темновишневого цвета, упругая, в объеме не увеличена, плотной консистенции. Головной мозг без видимых изменений. У овец, при введении Т-2 токсина, наблюдалось истощение, шерстный покров был взъерошен. Миокард сероватого цвета,

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

дряблый, сосуды эпикарда заполнены кровью. Печень темно-красного цвета, дряблая. Головной мозг отечный, плотной консистенции, сосуды кровенаполнены. При сочетанном введении овцам дециса и Т-2 токсина наблюдали следующие изменения: миокард светло-красного цвета, дрябловатый, сосуды эпикарда заполнены кровью. Печень темнокрасного цвета, упругая, в объеме не увеличена. Головной мозг отечный, плотной консистенции, сосуды кровенаполнены. После проведения убоя из каждой группы животных были отобраны пробы мышц и внутренних органов для определения в них остаточных количеств дециса и Т-2 токсина. В органах и тканях овец, получавших Т-2 токсин раздельно и совместно с децисом, этот токсикант был обнаружен в следовых количествах. Концентрация дециса в органах и тканях была выше при его совместном поступлении с Т-2 токсином. Наибольшее количество дециса обнаружено в почках: при совместном посту-

ФАРМАКОЛОГИЯ И ТОКСИКОЛОГИЯ

плении с Т-2 токсином – 4,0 мкг/кг; при раздельном – 1,23 мкг/кг; в мозге – 4,0 и 0,836 мкг/кг соответственно. В остальных органах концентрация дециса была значительно ниже. Исходя из полученных результатов, можно сделать предположение, что Т-2 токсин при совместном поступлении с децисом способствует более медленному выведению последнего из органов и тканей животных. ПРОФИЛАКТИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ БЕНТОНИТА ПРИ СОЧЕТАННОМ ВОЗДЕЙСТВИИ ДЕЦИСА И Т-2 ТОКСИНА Опыты проводились на овцах породы прекос массой тела 30–40 кг. Для этого было сформировано две опытные группы по 3 гол. в каждой. Животным первой группы в течение 2-х недель вводили децис и Т-2 токсин в дозе 1/10 ЛД50 каждого из них, без применения профилактического средства, животным второй группы также в течение 2-х недель вводили оба токсиканта в дозе 1/10 ЛД50 каждого из них, с добавлением в корм в качестве профилактического средства бентонита в дозе 2 % от рациона. Изменения клинического состояния у животных первой группы возникли на 8 сут. эксперимента и характеризовались общим угнетением, снижением аппетита, саливацией, взъерошенностью шерстного покрова, диареей, тремором отдельных мышц конечностей, некротическим поражением слизистой ротовой полости. Во второй группе клинические признаки отравления у животных возникли к 12 сут. эксперимента и характеризовались лишь снижением аппетита, угнетением, взъерошенностью шерстного покрова. БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ ОВЕЦ ПРИ СОЧЕТАННОМ ВОЗДЕЙСТВИИ ДЕЦИСА И Т-2 ТОКСИНА В ДОЗАХ 1/10 ЛД50 НА ФОНЕ ПРИМЕНЕНИЯ БЕНТОНИТА В ходе эксперимента количество общего белка в крови подопытных овец постоянно снижалось. Однако в первой группе эти изменения были более существенными, и уменьшение этого показателя на 15 сут. составило 19,1 % (Р < 0,05), во второй группе – 11,3 %. Активность холинэстеразы крови овец, получавших токсиканты без добавления бентонита,

к 5 сут. снизилась на 6,7 %, к 10-м – на 17,3 % (Р < 0,05), к 15 сут. – на 32,0 % (Р < 0,01). В группе овец, получавших вместе с токсикантами бентонит, в качестве профилактического средства, активность холинэстеразы к 5 сут. уменьшилась всего на 2,6 %, к 10 – на 5,1 %, к 15 – на 15,4 %. Активность щелочной фосфатазы у овец первой группы через 5 сут. увеличилась на 43,5 % (Р < 0,05), к 10 сут. – на 66,9 % (Р < 0,01), к 15 – на 104,3 % (Р < 0,001). Во второй группе активность этого фермента, относительно исходных показателей, к 5 сут. увеличилась на 13,0 %, к 10 – на 26,9 % (Р < 0,05), к 15 – на 53,6 % (Р < 0,01). Уровень АЛТ в крови у овец первой группы в течение всего времени исследования был статистически достоверно выше, относительно исходных показателей. Так, на 5 сут. опыта ее активность увеличилась на 33,1 % (Р < 0,05), к 10 – на 54,5 % (Р < 0,01), к 15 – на 103,8 % (Р < 0,001). Во второй группе также отмечались существенные изменения активности этого показателя. Так, к 5 сут. увеличение АЛТ составило 14,6 %, к 10 – 25,8 % (Р < 0,05), к 15 – 54,2 % (Р < 0,01). Активность ACT в крови овец первой группы к 5 сут. эксперимента была выше исходных показателей на 20,4 %, к 10 – на 28,9 % (Р < 0,05), к 15 – на 38,0 % (Р < 0,05). У овец второй группы активность ACT была незначительно выше исходных показателей. Значительные изменения активности креатинкиназы в крови животных наблюдались лишь в первой группе, к 5 сут. увеличилась на 11,3 %, к 10 – на 16,7 %, к 15 – на 31,0 % (Р < 0,05); во второй группе овец существенных изменений этого показателя не отмечалось. Активность ЛДГ существенно изменялась лишь у овец в первой группе. Так, повышение ЛДГ на 5 сут. эксперимента составило 9,5 %, к 10 – 16,3 %, к 15–19,6 % (Р < 0,05). Во второй группе активность фермента была незначительно выше уровня исходных показателей. Содержание SH-группы в крови значительно уменьшилось у овец, получавших только токсиканты. К 5 сут. эксперимента снижение составило 9,8 %, к 10 – 40,7 % (Р < 0,01), к 15 – 60,4 % (Р < 0,01). У овец, получавших вместе с токсикантами бентонит, содержание этого показателя к 5 сут. снизилось на 5,5 %, к 10 – на 19,2 %, к 15 – на 30,9 % (Р < 0,05).

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ФАРМАКОЛОГИЯ И ТОКСИКОЛОГИЯ

Концентрация глюкозы в крови у овец в течение всего времени исследования постоянно снижалась. Причем более значительно у овец в непрофилактированной группе. Так, к 5 сут. исследования крови содержание глюкозы уменьшилось на 8,0 %, к 10 – на 12,2 %, к 15 – на 16,0 % (Р < 0,05). В группе овец, где применялся бентонит, концентрация глюкозы в крови уменьшилась соотвественно на 5,0 %, на 7,8 %, на 11,2 %. Содержание ПВК у овец в первой группе к 5 сут. снизилось на 20,7 %, к 10 – на 42,7 % (Р < 0,05), к 15 – на 62,3 % (Р < 0,01); во второй группе – на 15,0, 20,6 и 30,1 % соответственно. ОСТАТОЧНЫЕ КОЛИЧЕСТВА ДЕЦИСА И Т-2 ТОКСИНА В ОРГАНАХ И ТКАНЯХ ОВЕЦ В органах и тканях овец, получавших децис и Т-2 токсин без бентонита, микотоксин был обнаружен лишь в печени в количестве 12,4 мкг/кг. В профилактированной группе овец Т-2 токсина в органах и тканях обнаружено не было. Концентрация дециса в органах и тканях была выше, где профилактика не проводилась. Наибольшее количество дециса обнаружено в почках: без профилактики – 18,6 мкг/кг, с профилактикой – 5,3 мкг/кг; в мозге – 19,3 и 6,2 мкг/кг соответственно. В остальных органах концентрация дециса была значительно ниже: в печени – 4,2 и 2,3 мкг/кг, в селезенке – 3,6 и 1,7 мкг/кг, в легких – 1,9 и 1,1 мкг/кг соответственно. В сердце и мышцах обнаружено лишь незначительное количество дециса. Исходя из полученных результатов, можно заключить, что применение бентонита в качестве профилактического средства способствует меньшему накоплению дециса и Т-2 токсина в органах и тканях животных. ВЫВОДЫ 1. Среднесмертельная доза дециса и Т-2 токсина для белых крыс при раздельном воздействии составляет: 45,8 и 3,0 мг/кг соответственно, при сочетанном – 38,3 и 1,8 мг/кг; для кроликов при раздельном: 356,7 и 0,54 мг/кг, при сочетанном – 290,0 и 0,46 мг/кг, что свидетельствует о взаимоусиливающем действии токсикантов; коэффициент кумуляции равен 4,8, что характерно для веществ с умеренной кумуляцией.

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

2. Сочетанное воздействие дециса и Т-2 токсина на уровне существующих ПДК для каждого токсина (децис – 0,01 мг/кг; Т-2 токсин – 0,1 мг/кг) оказывает эмбриотоксическое и тератогенное действие на организм белых крыс: предимплантационная гибель плодов увеличивается относительно контроля на 40,5 %, постимплантационная гибель – на 47,1 %, общая эмбриональная смертность – на 40,6 %. 3. Сочетанное воздействие дециса и Т-2 токсина при однократном и многократном введениях характеризуется более тяжелыми клиническими, гематологическими, биохимическими и патоморфологическими изменениями, чем при раздельном воздействии токсикантов. Сопровождается уменьшением количества лейкоцитов, эритроцитов и гемоглобина на 34,0, 27,8 и 33,6 % соответственно, снижением общего белка на 19,9 %, повышением активности щелочной фосфатазы на 116,9 %. 4. Результаты гистологических исследований свидетельствуют о том, что сочетанное воздействие дециса и Т-2 токсина приводит к более выраженным изменениям во всех органах и тканях организма животных по сравнению с раздельным поступлением токсикантов. 5. Установлено замедление выведения дециса из организма животных на фоне Т-2 токсина. 6. Включение в рацион овец бентонита (2 %) оказывает профилактическое действие при сочетанном субхроническом отравлении децисом и Т-2 токсином, способствует нормализации клинических, гематологических и биохимических показателей животных.

ВЕТСАНЭКСПЕРТИЗА, ЗООГИГИЕНА, ВЕТЕРИНАРНАЯ САНИТАРИЯ

УДК 619:579.62:636.3

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ КОЗЬЕГО СЫРОГО МОЛОКА П. Степаненко, проф., Р. Корнелаева, проф., Е. Павлова, доц., Е. Быкова, вет.-сан. врач, Московский государственный университет прикладной биотехнологии е-mail: article2005@mail.ru Аннотация. Изучена микрофлора и санитарное состояние сырого рыночного козьего молока, для чего определена степень обсеменения исследуемого молока различными группами микроорганизмов, установлена микробиологическая безвредность и спрогнозированы возможные виды порчи исследуемого молока. Ключевые слова: бактериальная обсемененность, концентрация гнилостных и пептонизирующих микроорганизмов, микроскопические дрожжи, колонии плесеней.

MICROBIOLOGICAL CONDITION OF THE GOAT CRUDE MILK P. Stepanenko, R. Kornelaeva, E. Pavlova, E. Bykova Summary. The microflora and sanitary condition of crude market goat milk is studied for what determined the degree of investigated milk is defined by various groups of microorganisms, microbiological harmlessness is established and possible kinds of damage of investigated milk are predicted. Keywords: bacterial content, concentration of putrefactive and peptonizing microorganisms, microscopic yeast, colonies of moulds. Козье молоко, по сравнению с коровьим, является более калорийным, содержащим повышенное количество сухого вещества, жира, белков и минеральных солей. Аминокислотный состав козьего молока близок к женскому (материнскому). Молоко первых дней после козления (молозиво) имеет желтый цвет и тягучую консистенцию. Молозиво отличается от молока значительно большим содержанием белка и жира. В нем имеются имунные тела, ферменты и витамины В12, В2, А и С, Д, которых в десять раз больше, чем в молоке. В связи с тем, что козье молоко богато солями кальция и фосфора, альбумином и казеином, кобальтом, который входит в состав витамина В12, оно полезно для растущего организма

и рекомендуется для лечения детей, больных рахитом, дистрофией, а также в период выздоровления после тяжелых заболеваний [3]. Определенный эффект при употреблении козьего молока отмечают при таких заболеваниях, как экзема, бронхиальная астма, колиты, сенная лихорадка, язва желудка, болезни печени и желчного пузыря, а также при симптомах, вызываемых стрессовой ситуацией, таких как бессонница. Повышенное содержание кальция в козьем молоке полезно для больных, страдающих артритом. Все взрослые и дети, испытывающие аллергию к коровьему молоку, хорошо переносят козье молоко. Козы, практически, не болеют туберкулезом, поэтому их молоко можно употреблять в свежем виде, что важно

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ВЕТСАНЭКСПЕРТИЗА, ЗООГИГИЕНА, ВЕТЕРИНАРНАЯ САНИТАРИЯ

для сохранения в нем биологически ценных веществ. Козье молоко обладает рядом ценных физических особенностей – жировые шарики в нем в десять раз мельче, чем в коровьем, благодаря чему жир легче усваивается. Белки козьего молока из-за повышенного содержания в них альбуминов свертываются в мелкие хлопья и легко усваиваются [3]. Козье молоко в чистом виде или в смеси с овечьим и коровьим перерабатывают в большой ассортимент сыров: брынзу, тушинский, осетинский, чанах, сулугуни, рокфор и др. Из него делают сливки, масло, разнообразные кисломолочные продукты: творог, айран, каймак, мацони, катык, простоквашу. Козье масло имеет белый цвет, сладковатый вкус, от коровьего оно отличается пониженной температурой плавления [4]. До недавнего времени требования при закупках козьего молока были теми же, что и для коровьего. В настоящее время утверждены технические условия, согласно которым сырое козье молоко разделяют на три сорта – высший, первый и второй. Зимой и весной допускается слабый кормовой запах и привкус для молока всех трех сортов. Бактериальная обсемененность для высшего сорта составляет до трехсот тысяч клеток в 1 см 3, для первого и второго сортов – 300–500 тыс/см3. Содержание соматических клеток в молоке высшего и первого сортов не должно превышать один миллион в 1 см 3, в молоке второго сорта – полтора миллиона в 1 см3. Степень чистоты по эталону для высшего, первого и второго сортов должна быть не ниже первой. Для производства пастеризованного козьего молока должно использоваться сырое молоко не ниже второго сорта [6]. Кислотность козьего молока составляет 14 °Т, что несколько ниже, чем коровьего – 16 °Т. Остальные параметры сырого козьего молока практически такие же, как и коровьего [1, 6]. Важнейшим звеном в системе профилактических мероприятий по предупреждению заражения людей через потребляемое молоко и молочные продукты является микробиологический контроль сырья, поступающего на переработку. В связи с тем, что козье молоко часто употребляют в пищу в сыром виде, мы поставили задачу изучить микрофлору и санитарное

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

состояние сырого рыночного козьего молока. Для решения этой задачи необходимо было определить степень обсеменения исследуемого молока различными группами микроорганизмов, установить микробиологическую безвредность и спрогнозировать возможные виды порчи исследуемого молока [2, 5]. Материалом для исследований служили три образца сырого рыночного козьего молока. Определяли следующие микробиологические показатели: общую микробную обсемененность (КМАНФАнМ), количество протеолитических, пептонизирующих и молочнокислых бактерий, а также дрожжей и спор плесеней; наличие солетолерантных стафилококков, бактерий рода протеус, маслянокислых бацилл и бактерий рода сальмонелла. Определяли также титр колиформных бактерий (БГКП) [6, 7]. Результаты изучения микрофлоры козьего молока представлены в таблице. Как следует из таблицы, в молоке пробы № 1 общая бактериальная обсемененность составила 6,8 × 107 lg КОЕ в 1 см3. Этот показатель превышает требования технического регламента к сырому молоку. Он не должен превышать 4 × 106 КОЕ в 1 см3, исходя из этого молоко должно быть отнесено к несортовому. Общая бактериальная обсемененность молока пробы № 2 составила 7,3 × 107 lg КОЕ в 1 см3, что значительно превышает требования, установленные Техническими условиями. В молоке пробы № 3 общая бактериальная обсемененность составила 1,3 × 108 lg КОЕ в 1 см3. Этот показатель значительно превышает требования технического регламента к сырому молоку. СОДЕРЖАНИЕ МИКРООРГАНИЗМОВ (lg КОЕ/ см3) В СЫРОМ КОЗЬЕМ МОЛОКЕ Количество протеолитических и пептонизирующих микроорганизмов в молоке пробы № 1 составило 5,7 × 107 lg КОЕ в 1 см3 и 2,0 × 108 lg КОЕ в 1 см3 соответственно. Эти показатели не гостируются, но присутствие таких концентраций гнилостных и пептонизирующих микроорганизмов может вызвать порчу продукта – горький и прогорклый вкус, которые обусловлены появлением пептонов и горьких пептидов, образующихся в результате распада белков и жиров [2, 5]. При исследовании моло-

ВЕТСАНЭКСПЕРТИЗА, ЗООГИГИЕНА, ВЕТЕРИНАРНАЯ САНИТАРИЯ

Таблица 2 Состояние бройлеров после применения препарата (1 л/1000 л воды) №№ проб

1-я

2-я

3-я

Общее количество микроорганизмов (КМАФАнМ)

6,8 × 107

7,3 × 107

1,3 × 108

Количество протеолитических бактерий

5,7 × 107

7,0 × 107

5,0 × 107

Количество пептонизирующих микробов

2,0 × 108

7,0 × 108

1,75 × 108

Количество дрожжей

3,7 × 102

7,3 × 103

3,0 × 102

1,0 × 102

1,0 × 101

1,0 × 104

1,0 × 105

2,1 × 105

Наличие солетолерантных стафилококков

Наличие бактерий рода протеус

Наличие маслянокислых бацилл

Наличие бактерий рода сальмонелла

Титр колиформных бактерий (БГКП)

10–5

10–4

Определяемые показатели

Количество спор плесеней Количество молочнокислых бактерий

ка в пробах № 2 и № 3 количество протеолитических и пептонизирующих микроорганизмов увеличилось, при этом содержание указанных бактерий в пробе № 2 составило 7 × 107 lg КОЕ в 1 см3 и 7 × 108 lg КОЕ в 1 см3 соответственно. В пробе № 3 содержание протеолитических и пептонизирующих микробов достигло значения 5,0 × 107 lg КОЕ в 1 см3 и 1,75 × 108 lg КОЕ в 1 см3 соответственно. Количество дрожжей в исследуемом молоке пробы № 1 составило 3,7 × 102 lg КОЕ в 1 см3, в пробе № 2 клетки дрожжей обнаружены в объеме 7,3 × 103 lg КОЕ в 1 см3, а в пробе № 3 – 3,0 × 102 lg КОЕ в 1 см3. Наличие микроскопических дрожжей в продукте не желательно, так как они могут вызывать пороки молочных продуктов – брожение и спиртовый запах. Плесневых грибов в исследуемом молоке пробы № 1 не обнаружено. В пробе № 2 выявлено 100 клеток в 1 см3, а в пробе № 3 количество спор плесеней составило 10 клеток в 1 см3. Выросшие колонии плесеней на агаре Сабуро по своей морфологии подразделяли на два типа. К первому относили плесени, колонии которых вырастали в виде паутинного пушистого налета серовато-дымчатого цвета. Такие плесени относят к семейству мукоровых (головчатые плесени).

К другому типу причисляли плесени, колонии которых формировали пушистый налет серовато-белого цвета, а затем, по мере образования спор, цвет плесеней становился голубовато-зеленоватым. Эти плесени относятся к роду пенициллиум. Все плесени обладают хорошо выраженной протеолитической и липолитической активностью и могут вызывать порчу – горький и прогорклый вкус продукта [2, 5]. Количество молочнокислых бактерий в пробе № 1 составляло 1,0 × 104 lg КОЕ в 1 см3, в пробе № 2 – 1,0 × 105 lg КОЕ в 1 см3, а в пробе № 3 – 2,1 × 105 lg КОЕ в 1 см3. Указанное количество лактобактерий находится на границе риска, так как они могут обусловливать пороки – излишняя кислотность и преждевременное свертывание молока [2, 5]. Солетолерантные стафилококки, бактерии рода протеус, маслянокислые бактерии и сальмонеллы в исследованных пробах молока не обнаружены. Титр бактерий группы кишечных палочек в козьем молоке пробы № 1 составил 1 × 10 –5, то есть количество колиформных бактерий составляло сто тысяч в 1 см3. В пробе № 2 титр кишечных палочек находилось тоже на уровне 1 × 10 –5, а в пробе № 3 он составил 1 × 10 –4, то есть

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ВЕТСАНЭКСПЕРТИЗА, ЗООГИГИЕНА, ВЕТЕРИНАРНАЯ САНИТАРИЯ

количество колиформных бактерий составляло десять тысяч клеток в 1 см3 молока. Колиформные бактерии в сыром молоке не гостируются, но при высоком содержании они могут обусловливать порок – «бродящее молоко» [2, 5]. Данные микробиологических исследований позволяют сделать следующие выводы. 1. Возбудители пищевых токсикоинфекций и токсикозов в исследуемых пробах козьего сырого молока обнаружены не были. 2. Отмечено повышенное содержание мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов, в результате которого исследуемое молоко необходимо отнести к категории несортового. 3. Санитарно-показательные микроорганизмы бактерий группы кишечных палочек выявлены в титрах 10 –4, 10 –5, то есть количество колиформных бактерий составляло от 10 тыс. до 100 тыс. микробных клеток в 1 см3молока. Такая масса кишечных палочек может вызвать порок «бродящее молоко». 4. Степень обсеменения исследуемых проб молока протеолитическими и пептонизирующими микроорганизмами составляла десятки и сотни миллионов клеток в 1 см3, что может обусловливать возникновение пороков продукта – горький и прогорклый вкус.

5. Уровень обсеменения молока молочнокислыми бактериями отвечал требованиям Технических условий. ЛИТЕРАТУРA 1. Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы. СанПиН 2.3.2.1078–01. – Москва: ФГУП «ИнтерСЭН», 2002. – 168 с. 2. Корнелаева Р. П., Степаненко П. П., Павлова Е. В. Санитарная микробиология сырья и продуктов животного происхождения. – ООО «Полиграфсервис», 2006. – 410 с. 3. Крусь Г. Н., Храмцов А. Г., Волокитина З. В. Технология молока и молочных продуктов. – М.: КолосС, 2006. – 246 с. 4. Серегин И. Г. Производственный ветеринарно-санитарный контроль молока и молочных продуктов. – М.: ДеЛиПринт, 2009. – С. 57–64. 5. Степаненко П. П. Микробиология молока и молочных продуктов. – Воскресенск: Лира, 2006. – 415 с. 6. ТУ 9837-001-00495220-98 «Молоко козье. Требования при закупках». 7. ГОСТ 9225–84 «Молоко и молочные продукты. Методы микробиологического анализа».

Ветаптека ТИЛМИКОЗИН 20% ТИЛМИКОЗИН 20 % – антибиотик из группы макролидов, в форме премикса, содержащего 20 г тилмикозина фосфата в 100 г. Фармакологические свойства. ТИЛМИКОЗИН является бактериостатическим антибиотиком с широким спектром действия, активным в отношении большинства грамположительных, некоторых грамотрицательных бактерий (в том числе пастерелл) и микоплазм. ТИЛМИКОЗИН обладает липотропными свойствами, благодаря чему легко проникает во многие органы и ткани, достигая высоких внутриклеточных концентраций. Это его качество позволяет эффективно бороться с внутриклеточными паразитами, такими как возбудители энзоотической пневмонии свиней, других респираторных заболеваний мелкого и крупного рогатого скота и свиней. ТИЛМИКОЗИН действует на рибосомальном уровне (50S субъединица), нарушая синтез бактерией белков. Дозировка и применение. ТИЛМИКОЗИН 20 % назначают для профилактики и лечения заболеваний свиней, вызванных актинобациллами, гемофильными палочками, микоплазмами, и других патологий, вызванных чувствительными микроорганизмами. ТИЛМИКОЗИН 20 % вводят с кормом в следующих дозах: 40–120 мг / 1 кг ЖВ или 1–2 кг премикса на 1 т корма в течение 15 дней. Период ожидания составляет 14 дней.

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

КОРМА И КОРМОВЫЕ ДОБАВКИ

УДК636.5.084:636.087.7

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ЖИРНОГО КИЗЕЛЬГУРА В КОМБИКОРМАХ ДЛЯ ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ Д. Осепчук, А. Белобров, А. Чиков, ГНУ «Северо-Кавказский научно-исследовательский институт животноводства Россельхозакадемии» Кубанский государственный аграрный университет е-mail: selhozizdat@mail.ru Аннотация. Данные, полученные в эксперименте, свидетельствуют, что жировую добавку из отходов экстрагирования масла можно использовать в промышленном производстве комбикормов и кормлении цыплят-бройлеров в качестве заменителя растительного масла. Ключевые слова: липиды, кизельгур, обменная энергия, комбикорм, энерго-протеиновое отношение, фосфатиды.

USE OF FAT KIZELGUR IN MIXED FEEDS FOR CHICKENS-BROILERS D. Osepchuk, A. Belobrov, A. Chikov Summary. The data, obtained in the experiment, testify that a fatty additive from the withdrawals of extracting oil can be used in the industrial production of mixed feeds and feeding of chicken- broilers as the substitute of vegetable oil. Keywords: lipids, kieselguhr, metabolic energy, mixed feed, energy-protein relation, phosphatides. Жиры (липиды) играют важную роль в кормлении сельскохозяйственных животных и птицы. Они должны быть обязательным компонентом рационов, и их необходимо нормировать, как и все остальные питательные и биологически активные вещества. Для обеспечения животных липидами в комбикорма, чаще всего, вводят животные и растительные жиры. Преимущественно в рационы вводят подсолнечное масло, однако оно является важным компонентом питания человека. Поэтому актуальным является вопрос использования для этих целей отходов маслоэкстракционной промышленности (соапсток, жирные отбельные глины, погоны дезодорации, фосфатиды, концентрат кальциевых солей жирных кислот,

перлиты, диатомиты и др.). К сожалению, статистика по ним практически не ведется. Но в настоящее время каждый маслоэкстракционный завод использует для очистки и рафинации масла тот или иной сорбент природного происхождения (отбельная глина, кизельгур, перлит, трепел), содержащий в конце производственного цикла от 15 до 70 % жира. В своих исследованиях мы изучили возможность обогащения полнорационных комбикормов для цыплят-бройлеров жирным кизельгуром – отходом рафинации растительных масел. Кизельгур (диатомитовая земля) – это природный адсорбент, состоящий из микроскопических мелких окаменелых водорослей. Содержание адсорбированного на кизельгуре жира варьирует от 40 до 70 %. Количество обменной

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

КОРМА И КОРМОВЫЕ ДОБАВКИ

энергии при 70 %-ной жирности составляет 26,91 МДж на 1 кг добавки. Основная цель в данной работе исследования – проведение производственной проверки результатов предыдущих научно-хозяйственных опытов по изучению эффективности использования добавки жирный кизельгур в рационах мясных цыплят. Опыт был проведен на цыплятах-бройлерах кросса СК-Русь –4 в виварии физиологического двора СКНИИЖ. Из одного вывода цыплят методом выборки было сформировано две группы по 110 голов в каждой. Цыплята первой – контрольной группы – получали полнорационный комбикорм (ПК), а во второй – опытной группе – ПК с 5 % жирного кизельгура. Основу комбикормов во все периоды выращивания составляли корма растительного происхождения; для лучшей переваримости и усвояемости питательных веществ были введены ферментные препараты, а с целью профилактики желудочно-кишечных заболеваний – пробиотик. Ввод жирного кизельгура способствовал повышению на 4–5 % концентрации в комбикормах обменной энергии, при незначительном снижении уровня сырого протеина и клетчатки. Включение в рацион изучаемой липидной добавки привел к изменению энерго-протеинового отношения, но в пределах принятых детализированных норм кормления птицы. Ветеринарно-профилактические мероприятия во всех группах проводились независимо от условий опыта по схеме, принятой в пти-

цеводческих хозяйствах. Условия содержания, фронт кормления и поения соответствовали рекомендуемым технологическим параметрам. Использование кормовой добавки жирный кизельгур в составе кормосмесей для цыплятбройлеров оказало положительное влияние на основные зоотехнические показатели их выращивания (табл. 1). Традиционные тайские здания строили при использовании растительных материалов, таких как древесина, солома и листья, которые обладают низкой теплопроводностью [3]. В начале XIX века в США стали использовать в качестве строительных материалов спрессованную и увязанную в брикеты солому для строительства домов [1]. В Чехословакии, после Второй мировой войны, производили из кукурузных початков фанеру. Сохранность птицы в опытной группе была на 10,4 % выше, чем в контрольной. Технология производства и переработки сельскохозяйственной продукции и зоотехния Оценка результатов контрольного убоя подопытной птицы, проведенного в конце производственной проверки, не обнаружила негативного влияния кормовой добавки жирный кизельгур на величину убойного выхода и морфологический состав тушек (табл. 2). По величине выхода потрошеной тушки опытный молодняк превосходил контроль. Но необходимо отметить, что удельный выход костей в этой группе был на 4 ,1 % ниже контрольТаблица 1

Основные результаты эксперимента Группа

Показатель 1-я

2-я

2017,6 ± 55,90

2255,9 ± 47,24

Валовой прирост живой массы за опыт, г

1975,6

2213,9

Среднесуточный прирост живой массы за опыт, г

47,04

52,71

То же, %

100

112,1

Затраты корма на 1 кг прироста живой массы, кг

1,75

1,60

То же, %

100

91,4

Сохранность, %

82,9

93,3

Выход потрошеной тушки, %

66,5

69,7

Живая масса в конце опыта, г

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

КОРМА И КОРМОВЫЕ ДОБАВКИ

Таблица 2 Результаты контрольного убоя цыплят-бройлеров Группа

Показатель 1-я

2-я

Живая масса, г

1900,0 ± 90,18

2270,0 ± 103,92*

Масса потрошеной тушки, г

1263,3 ± 122,55

1581,7 ± 92,48*

Убойный выход потрошеной тушки, %

66,5

69,7

Масса мышц, г

785,3

897,0

в % к убойной массе потрошеной тушки

62,2

56,7

296,7 ± 8,82

306,7 ± 4,37

23,5

19,4

16,7 ± 4,41

44,7 ± 3,71

1,32

2,83

Масса костей, г в % к убойной массе потрошеной тушки Масса внутреннего жира, г в % к убойной массе потрошеной тушки

*Р < 0,05. ной группы, а выход жира превосходил контроль на 1,5 %. По массе мышц лучшие результаты отмечены у птицы контрольной группы. После проведения анатомической обвалки тушек цыплят-бройлеров было установлено соотношение мышц в тушке. Результаты обвалки тушек показали, что кормовая добавка не оказала влияния на соотношение мышц у птицы опытной группы. Что касается себестоимости кормов, то в расчете на

1 ц живой массы она составила в контрольной группе 2200,9 руб., в опытной – 2145,0 руб., или на 55,95 руб. (2,5 %) ниже контрольного показателя. То есть, применение жирного кизельгура экономически более выгодно. Полученные данные свидетельствуют о том, что жировую добавку из отходов маслоэкстракционной промышленности можно использовать в кормлении цыплят-бройлеров в качестве замены растительного масла.

Коротко о важном В ИТАЛИИ ПЕТУХ НАЧАЛ НЕСТИ И ВЫСИЖИВАТЬ ЯЙЦА Удивительный случай произошел на одной из ферм в итальянской Тоскане. Живущий там петух самостоятельно поменял пол, сообщает Lenta.ru со ссылкой на Orange News. Смена пола произошла после того, как курятник разорила лисица. Через несколько дней после лисьего рейда «он» стал откладывать яйца и пытается их высиживать, ведя в курятнике совершенно новую для себя жизнь. Этот случай заинтересовал биологов и зоологов. В настоящее время в Тоскану выехала целая группа специалистов. Они должны взять у петуха анализ ДНК и определить, что именно заставило его превратиться в курицу. Эксперты предполагают, что петух сменил пол, чтобы продолжить размножение без самок. Интересно, что подобный феномен в природе довольно распространен. Известны несколько видов животных, способных самопроизвольно менять свой пол. К их числу относятся креветки, морские огурцы, рыбы-клоуны, рыбы-попугаи и другие обитатели коралловых рифов. Это явление называется последовательным гермафродитизмом. Однако среди птиц такое происходит крайне редко. Агентство «АгроФакт»

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ПРАВОТЕКА

ПРИКАЗ МИНСЕЛЬХОЗА РФ от 16 ноября 2006 г. № 422 «ОБ УТВЕРЖДЕНИИ ПРАВИЛ ОРГАНИЗАЦИИ РАБОТЫ ПО ВЫДАЧЕ ВЕТЕРИНАРНЫХ СОПРОВОДИТЕЛЬНЫХ ДОКУМЕНТОВ» (с изм. от 14 августа 2007 г., 19 марта, 4 декабря 2008 г., 5 мая 2009 г.) (Продолжение. Начало см. №2, 5, 6, 7/2010) Форма № 5c РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА ПО ВЕТЕРИНАРНОМУ И ФИТОСАНИТАРНОМУ НАДЗОРУ (РОССЕЛЬХОЗНАДЗОР) КОРЕШОК ВЕТЕРИНАРНОГО СЕРТИФИКАТА № ______________ на экспортируемый из Российской Федерации племенной материал (сперму производителей, эмбрионы, инкубационное яйцо, икру и др.) Подразделение Россельхознадзора ________________________________________________ __________________________________________________________________________ Наименование материала ______________________________________________________ Дата взятия материала _________________________________________________________ Количество _________________________________________________________________ Упаковка ___________________________________________________________________ Маркировка ________________________________________________________________ Условия хранения и перевозки ___________________________________________________ 1. Происхождение материала Наименование и адрес экспортера ________________________________________________ __________________________________________________________________________ 2. Сведения о производителе (доноре) Вид _______________________________________________________________________ Порода ____________________________________________________________________ Кличка ____________________________________________________________________ Дата и место рождения ________________________________________________________ Дата допуска производителя (донора) для производственных целей _______________________ __________________________________________________________________________ 3. Направление материала Страна назначения ___________________________________________________________ Страна транзита _____________________________________________________________ Пункт пересечения границы ____________________________________________________ Наименование и адрес получателя ________________________________________________

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ПРАВОТЕКА

Транспорт __________________________________________________________________ (указать № вагона, автомашины, рейс самолета, название

__________________________________________________________________________ судна)

4. Я, нижеподписавшийся государственный ветеринарный врач Российской Федерации (должностное лицо Россельхознадзора), удостоверяю, что: – предъявленный к осмотру указанный племенной материал получен при соблюдении установленных ветеринарно-санитарных правил от производителя (донора), который в день взятия материала не имел клинических признаков болезней; – племенной материал получен на предприятии, находящемся под постоянным контролем государственной ветеринарной службы; – производитель (донор) находился на предприятии не менее 6 месяцев до получения племенного материала и не использовался для естественного осеменения; – производитель (донор) исследован с отрицательным результатом в государственной ветеринарной лаборатории, имеющей разрешение на такие исследования, методами, принятыми в Российской Федерации, на: ________________________________________________________________ __________________________________________________________________________ – племенной материал вывозится из местности, благополучной по ящуру, везикулярному стоматиту, везикулярной болезни свиней, чуме крупного рогатого скота, чуме мелких жвачных, контагиозной плевропневмонии КРС, заразного узелкового дерматита КРС, лихорадки долины Рифт, катаральной лихорадки овец, оспе овец и коз, африканской чуме лошадей, африканской чуме свиней, классической чуме свиней, высокопатогенному гриппу птиц, болезни Ньюкасла, а также другим болезням данного вида животных. __________________________________________________________________________ __________________________________________________________________________ Составлено «__» _____________ 20__ г.___ Ветеринарный сертификат выдал __________________________________________________________________________ (полное название должности, фамилия, и., о. ветеринарного врача, выдавшего ветеринарный сертификат)

Подпись: _____________________________________ Печать Приложение № 8 к Правилам организации работы по выдаче ветеринарных сопроводительных документов Форма № 5d РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА ПО ВЕТЕРИНАРНОМУ И ФИТОСАНИТАРНОМУ НАДЗОРУ (РОССЕЛЬХОЗНАДЗОР) ВЕТЕРИНАРНЫЙ СЕРТИФИКАТ N ______________ на экспортируемое из Российской Федерации молоко и молочные продукты Подразделение Россельхознадзора ________________________________________________ __________________________________________________________________________

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ПРАВОТЕКА

Наименование продукции ______________________________________________________ Число мест _________________________________________________________________ Упаковка ___________________________________________________________________ Маркировка ________________________________________________________________ Вес нетто __________________________________________________________________ 1. Происхождение продукции Наименование и адрес экспортера ________________________________________________ __________________________________________________________________________ (адрес и № молочного завода)

2. Направление продукции Страна назначения ___________________________________________________________ Страна транзита _____________________________________________________________ Пункт пересечения границы ____________________________________________________ Наименование и адрес получателя ________________________________________________ __________________________________________________________________________ Транспорт __________________________________________________________________ (указать № вагона, автомашины, рейс самолета, название

__________________________________________________________________________ судна)

Время погрузки ______________________________________________________________ Условия транспортировки ______________________________________________________ 3. Я, нижеподписавшийся государственный ветеринарный врач Российской Федерации (должностное лицо Россельхознадзора), удостоверяю, что предъявленные к осмотру молочные продукты (молоко): – получены от здоровых животных; – признаны пригодными для употребления в пищу по результатам ветеринарно-санитарной экспертизы; – произведены на предприятиях, находящихся под постоянным контролем государственной ветеринарной службы, имеющих разрешения на экспорт и отвечающих ветеринарным требованиям Российской Федерации; – выходят из местности, благополучной по ящуру, везикулярному стоматиту, везикулярной болезни свиней, чуме крупного рогатого скота, чуме мелких жвачных, контагиозной плевропневмонии КРС, заразного узелкового дерматита КРС, лихорадки долины Рифт, катаральной лихорадки овец, оспе овец и коз, африканской чуме лошадей, африканской чуме свиней, классической чуме свиней, высокопатогенному гриппу птиц, болезни Ньюкасла в течение последних ____ месяцев, а также: __________________________________________________________________________ По требованию страны-импортера молочные продукты перед отправкой «__» ________ 20__ г. исследованы на радиоактивное загрязнение в государственной ветеринарной лаборатории, имеющей разрешение на такие исследования; уровень радиоактивного загрязнения при исследовании не превышает ____ беккерель/кг. Транспортные средства очищены и продезинфицированы принятыми в Российской Федерации методами и средствами. Составлено «__» _____________ 20__ г. Ветеринарный сертификат выдал __________________________________________________________________________ (полное название должности, фамилия, и., о. ветеринарного врача, выдавшего ветеринарный сертификат)

Подпись: _____________________________________ Печать

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ПРАВОТЕКА

Форма № 5d РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА ПО ВЕТЕРИНАРНОМУ И ФИТОСАНИТАРНОМУ НАДЗОРУ (РОССЕЛЬХОЗНАДЗОР) КОРЕШОК ВЕТЕРИНАРНОГО СЕРТИФИКАТА N ______________ на экспортируемое из Российской Федерации молоко и молочные продукты Подразделение Россельхознадзора ________________________________________________ __________________________________________________________________________ Наименование продукции ______________________________________________________ Число мест _________________________________________________________________ Упаковка ___________________________________________________________________ Маркировка ________________________________________________________________ Вес нетто __________________________________________________________________ 1. Происхождение продукции Наименование и адрес экспортера ________________________________________________ __________________________________________________________________________ (адрес и № молочного завода)

__________________________________________________________________________ судна)

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

ПРАВОТЕКА

высокопатогенному гриппу птиц, болезни Ньюкасла в течение последних ____ месяцев, а также: __________________________________________________________________________ По требованию страны-импортера молочные продукты перед отправкой «__» ________ 20__ г. исследованы на радиоактивное загрязнение в государственной ветеринарной лаборатории, имеющей разрешение на такие исследования; уровень радиоактивного загрязнения при исследовании не превышает ____ беккерель/кг. Транспортные средства очищены и продезинфицированы принятыми в Российской Федерации методами и средствами. Составлено «__» _____________ 20__ г. Ветеринарный сертификат выдал __________________________________________________________________________ (полное название должности, фамилия, и., о. ветеринарного врача, выдавшего ветеринарный сертификат)

Подпись: _____________________________________ Печать Приложение № 9 к Правилам организации работы по выдаче ветеринарных сопроводительных документов Форма № 5e РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА ПО ВЕТЕРИНАРНОМУ И ФИТОСАНИТАРНОМУ НАДЗОРУ (РОССЕЛЬХОЗНАДЗОР) ВЕТЕРИНАРНЫЙ СЕРТИФИКАТ N ______________ на экспортируемые из Российской Федерации мясо и мясопродукты домашних и диких животных Подразделение Россельхознадзора ________________________________________________ __________________________________________________________________________ Наименование продукции ______________________________________________________ Число мест _________________________________________________________________ Упаковка ___________________________________________________________________ Маркировка ________________________________________________________________ Вес нетто __________________________________________________________________ 1. Происхождение продукции Наименование и адрес экспортера ________________________________________________ __________________________________________________________________________ (адрес и № мясоперерабатывающего предприятия)

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

ПРАВОТЕКА

Транспорт __________________________________________________________________ (указать № вагона, автомашины, рейс самолета, название

__________________________________________________________________________ судна)

Условия транспортировки ______________________________________________________ 3. Я, нижеподписавшийся государственный ветеринарный врач Российской Федерации (должностное лицо Россельхознадзора), удостоверяю, что предъявленные к осмотру указанные мясопродукты (мясо): – получены от убоя здоровых животных; – признаны пригодными для употребления в пищу; – произведены на предприятиях, находящихся под постоянным контролем государственной ветеринарной службы, имеющих разрешение на экспорт и отвечающих ветеринарным требованиям Российской Федерации; – выходят из местности, благополучной по ящуру, везикулярному стоматиту, везикулярной болезни свиней, чуме крупного рогатого скота, чуме мелких жвачных, контагиозной плевропневмонии КРС, заразного узелкового дерматита КРС, лихорадки долины Рифт, катаральной лихорадки овец, оспе овец и коз, африканской чуме лошадей, африканской чуме свиней, классической чуме свиней, высокопатогенному гриппу птиц, болезни Ньюкасла в течение последних ____ месяцев, а также: __________________________________________________________________________ __________________________________________________________________________ При проведении ветеринарно-санитарной экспертизы мяса не обнаружено изменений, характерных для: __________________________________________________________________________ __________________________________________________________________________ По требованию страны-импортера мясопродукты перед отправкой «__» ________ 20__ г. исследованы на радиоактивное загрязнение в государственной ветеринарной лаборатории, имеющей разрешение на такие исследования; уровень радиоактивного загрязнения при исследовании не превышает ____ беккерель/кг. Транспортные средства очищены и продезинфицированы принятыми в Российской Федерации методами и средствами. Составлено «__» _____________ 20__ г. Ветеринарный сертификат выдал __________________________________________________________________________ (полное название должности, фамилия, и., о. ветеринарного врача, выдавшего ветеринарный сертификат)

Подпись: _____________________________________ Продолжение следует

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

О БРАТЬЯХ НАШИХ МЕНЬШИХ

ДЕГЕЛЬМИНТИЗАЦИЯ КОШЕК Л. Бардахчиева, А. Исакова, ФГОУ ВПО «Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия» Как известно, заболевания животных, возбудителями которых являются животные организмы (например, черви, арахниды или насекомые), называются паразитарными. Повсеместная их распространенность заставляет производителей ветеринарных препаратов разрабатывать все новые и более совершенные лекарственные вещества, способные удовлетворить высокий спрос на данную категорию препаратов, а также наиболее доступные и простые пути введения препаратов в организм животного с наименьшим стрессом для него. Не менее известно, что гельминтозы наносят достаточно большой вред хозяину-животному, например, поглощая в огромных количествах микроэлементы из пищи, поступающей в организм животного, тем самым, нарушая минеральный обмен, что, в свою очередь, клинически выражается в поверхностных дерматитах, себорее и различных других клинических признаках, характерных как для микроэлементозов, так и глистных инвазий. Именно поэтому тема исследования является достаточно актуальной в настоящий момент. ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ Целью нашего исследования явилась разработка наиболее оптимальной схемы дегельминтизации животных в домашних условиях. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ Материалом для исследования послужили кошки возрастом от 2,5 месяцев до 8 лет, обоего пола, антгельминтные препараты широкого спектра действия Тронцил-К, Фебтал, Профендер, а также микроэлементная пищевая добавка «Гемовит». Параллельно проводили изучение условий содержания животных (пользуется ли свободным выгулом, есть ли в доме животные других видов, качество ухода за кошкой ее владельцем (профилактическая дегельминтизация, дезинсекция, уход за шерстью и т. д.). В резуль-

09 • 2011 • ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

тате были отобраны 30 кошек с клиническими (сухость кожи, себорея, у некоторых зуд в анусе, угнетенное состояние, плохой аппетит, истощение, в некоторых случаях нервные явления) и лабораторно подтвержденными признаками глистной инвазии. Животных разделили на 3 опытные группы, сформированные по принципу аналогов. Лечение проводили по стандартной схеме дегельминтизации (согласно инструкциям препаратов Тронцил-К и Фебтал в первой и второй группах), а в третьей группе использовали разработанную нами схему дегельминтизации, которая включала в себя использование препарата Профендер в установленных дозировках, дополнительного введения пищевой добавки «Гемовит», препаратов, содержащих пробиотики (Бифитрилак) антигистаминного препарата Телфаст (по ½ таблетки на животное весом 3–5 кг, по ¼ таблетки на животное весом до 3 кг). В результате нами были получены следующие данные. РЕЗУЛЬТАТЫ У всех животных опытных групп были установлены микстинвазии несколькими видами гельминтов, в частности, круглыми и плоскими. Далее им была проведена дегельминтизация с последующим анализом выделяемого из кишечника на наличие яиц и члеников гельминтов. Первой и второй группе животных проводили дегельминтизацию препаратами Тронцил-К и Фебтал – двукратно через 10 дней, а третьей группе перед дегельминтизацией за 5 дней начинали давать микроэлементную добавку и антигистаминный препарат, дача добавки продолжалась в течение двух недель после первичной дегельминтизации, а дача антигистаминных препаратов прекращалась после 15 дней с начала эксперимента. Повторную дегельминтизацию препаратом Профендер проводили тоже через 10 дней после первичной. В результате было установлено, что

О БРАТЬЯХ НАШИХ МЕНЬШИХ

в первой и второй опытных группах произошло отхождение круглых червей и стробилы плоского червя, головка плоского червя не отошла и не была обнаружена в фекалиях животных, ее обнаружили только после повторной дегельминтизации. Клинические признаки (проблемы с аппетитом и шерстью) пропадали, в среднем, на 15 сутки с момента начала опытов в первой и второй опытных группах. В третьей группе отхождение головки плоского червя, а также выведение круглых гельминтов наблюдали в течение двух суток после первой дегельминтизации, и восстановление работы кишечника, улучшение аппетита и качества шерстного покрова устанавливали менее чем за 10 дней с момента начала эксперимента (в среднем за 7 суток). ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ Оптимальная дегельминтизация до сих пор остается проблемой для владельцев животных, проблемой также остаются различные пути введения препаратов в организм животного. Достаточно часто владельцами за неимением другого выбора используются таблетированные формы антгельминтиков. Однако с появлением новых

средств у владельцев появилась возможность использовать более современные формы препаратов против гельминтов, такие как капли на холку, что снижает стресс у животного, который появляется при даче таблетированных форма препаратов. Одновременная дача микроэлементных и антигистаминных добавок при дегельминтизации может позволить снизить риск остаточных микроэлементозов и патологий шерстного покрова и кожи у животных (выражающихся себореей, зудом и тусклостью шерсти, а также гастритных проявлений у животных с гельминтной патологией ЖКТ). ВЫВОДЫ 1. Дегельминтизация с использованием капель на холку, а не перорально, дает меньший стресс для животного и более удобна для самостоятельной дегельминтизации владельцами, без привлечения ветеринарного персонала. 2. Дополнительное использование в процессе дегельминтизации пробиотиков, антигистаминных препаратов и микроэлементных добавок позволяет в более короткие сроки восстановить сниженные функции различных тканей.

Ветаптека ВЕТОМ Препарат является иммобилизованной высушенной споровой биомассой бактерий Bacillus subtilis штамм ВКПМ В-7038 и наполнителя. Порошок белого цвета, сладкого вкуса, без запаха, легко растворим в воде. После растворения в воде допускается наличие незначительного осадка белого цвета. Ветом 4 обладает высокой антагонистической активностью к широкому спектру патогенных и условно патогенных микроорганизмов за счет свойств Bacillus subtilis. Препарат предупреждает развитие дисбактериоза, повышает неспецифическую резистентность организма и нормализует обмен веществ. Применяется для профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний с синдромом диареи и иммунодефицитных состояний у телят, поросят и собак. Для стимуляции роста и развития молодняка сельскохозяйственных животных. Препарат вводят животным внутрь индивидуально или групповым методом с кормом, молоком, молозивом, кипяченой остуженной водой, а также можно вводить ректально после очистительной клизмы. Растворы готовят непосредственно перед применением. С лечебной целью препарат применяют 3–4 раза в сутки в дозе 50 мг на 1 кг веса животного ежедневно до выздоровления. Для коррекции иммунодефицитных состояний Ветом 4 дают животным в дозе 50 мг на 1 кг веса животного 1–2 раза в сутки в течение 5–10 дней. Для профилактики болезней органов пищеварения Ветом 4 назначают животным сразу после рождения 1 раз в двое суток по 50 мг на 1 кг веса животного в течение 10 дней. Молоко и мясо при применении Ветом 4 можно использовать без ограничений.

ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ • 09 • 2011

Профессиональные праздники и памятные даты 1 октября

Международный день музыки. Праздник

учрежден 1 октября 1975 г. по решению ЮНЕСКО. День отмечается ежегодно во всем мире большими концертными программами, с участием лучших артистов и художественных коллективов.

Международный день пожилых людей. Провозглашен Генеральной Ассамблеей ООН 14 декабря 1990 г. В России день отмечается на основании Постановления Президиума Верховного Совета РФ от 1 июня 1992 г. «О проблемах пожилых людей». В центре внимания — интересы пожилых граждан и инвалидов пожилого возраста.

День сухопутных войск РФ. 1 октября 1550 г. царь всея Руси Иван IV (Грозный) издал Приговор «Об испомещении в Московском и окружающих уездах избранной тысячи служилых людей», заложивший основы регулярной армии. День отмечается по Указу Президента России от 31 мая 2006 г.

3 октября

День ОМОНа. Отряды милиции особого назначения органов внутренних дел впервые были созданы в соответствии с Приказом МВД СССР от 3 октября 1988 г. День ОМОНа отмечается в соответствии с Приказом министра внутренних дел РФ Бориса Грызлова от 1 марта 2002 г.

4 октября

Всемирный день животных. 4 октября — день памяти католического святого, покровителя животных Франциска Ассизского. Решение отмечать World Animal Day было принято на Международном конгрессе сторонников защиты природы, проходившем во Флоренции в 1931 г.

День космических войск России. 4 октября 1957 г. в СССР был произведен запуск первого искусственного спутника Земли, который открыл космическую эру в истории человечества. Это праздничный день для тех, кто посвятил себя работе над созданием космических аппаратов оборонного назначения.

День гражданской обороны МЧС России. 4 октября 1932 г. постановлением правительства была создана общесоюзная система местной противовоздушной обороны СССР. Позднее она преобразовалась в гражданскую оборону, а в 1987 г. на ГО были возложены задачи борьбы с природными и техногенными катастрофами.

5 октября

День учителя. ЮНЕСКО утвердил этот междуна-

09 • 2011 •

родный праздник в 1994 г., а у нас в стране его отмечают уже 45 лет. Cогласно Указу Президента России от 3 октября 1994 г. День учителя отмечается 5 октября. ВЕТЕРИНАРИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

День работников уголовного розыска. В октябре 1918 г., согласно Положению Наркомата внутренних дел РСФСР, было организовано Центральное управление уголовного розыска. С тех пор при органах милиции стали действовать специальные подразделения для охраны порядка путем негласного расследования преступлений.

6 октября

День российского страховщика. 6 октября 1921 г. Совнарком РСФСР принял декрет «О государственном имущественном страховании», в результате которого начал деятельность Госстрах. Эта дата считается днем зарождения отечественной страховой деятельности.

9 октября

Всемирный день почты. 9 октября 1874 г. в Швейцарии представителями 22 стран, в том числе России, был подписан договор, учредивший Генеральный почтовый союз. Всемирным днем почты эта дата провозглашена в 1969 г., на Конгрессе Всемирного союза почтовиков в Токио.

10 октября

День работников сельского хозяйства и перерабатывающей промышленности. Праздник установлен Указом Президента РФ от 31 мая 1999 г. и отмечается каждое второе воскресенье октября. В этот день поздравляют всех тех, кто трудится на земле, перерабатывает и поставляет продукты питания.

12 октября

День кадрового работника. В этот день в 1918 г. решением Народного комиссариата юстиции была принята Инструкция «Об организации советской рабоче-крестьянской милиции», предписывающая создание кадровых аппаратов. Традиция отмечать профессиональный праздник кадровиков зародилась именно в органах внутренних дел.

14 октября

Международный день стандартизации. В этот день в 1946 г. делегации от 25 стран собрались в Лондоне и приняли решение о координации работы национальных комитетов по стандартам. 14 октября 1970 г. по решению Международной организации по стандартизации (ISO) дата получила статус праздника.

16 октября

День Шефа (День Босса). Поддержанный во многих странах праздник зародился в 1958 г. по инициативе американской секретарши Патриции Хароски. В этот день полагается выразить уважение к шефу и вспомнить, что руководитель — это ответственность за каждый шаг и за каждое слово.

Поздравим друзей и нужных людей! 17 октября

День работников пищевой промышленности. Профессиональный праздник берет свое на-

чало с 1966 г., с Постановления Президиума Верховного Совета СССР. С тех пор отечественные пищевики отмечают его каждое третье воскресенье октября.

День работников дорожного хозяйства. Это праздник тех, кто строит автомагистрали и мосты, обеспечивает надежное автомобильное сообщение. Он появился на основании Указа Президента РФ от 7 ноября 1996 г. и поначалу отмечался в последнее воскресенье октября. Указом от 23 марта 2000 г. праздник получил новую дату — третье воскресенье месяца.

20 октября

День рождения Российского военноморского флота. 20 октября 1696 г. Боярская Дума по настоянию Петра I приняла решение о создании регулярного военно-морского флота России: «Морским судам быть». Этот день и принято считать днем рождения Российского военно-морского флота.

День военного связиста. 20 октября 1919 г. приказом Реввоенсовета Советской Республики было сформировано управление связи. Тем самым была заложена структура современных войск связи.

22 октября

Праздник Белых Журавлей. День учрежден

народным поэтом Дагестана Расулом Гамзатовым как праздник поэзии и как память о павших на полях сражений во всех войнах. Литературный праздник способствует укреплению многовековых традиций дружбы народов и культур многонациональной России.

23 октября

25 октября

День таможенника Российской Федерации. 25 октября 1653 г. согласно повелению

царя Алексея Михайловича в стране появился Единый таможенный устав, регламентирующий взимание таможенной пошлины. А 25 октября 1991 г. Указом Президента РФ был образован Государственный таможенный комитет.

28 октября

День армейской авиации. В этот день

в 1948 г. в подмосковном Серпухове была сформирована первая авиационная эскадрилья, оснащенная вертолетами. Она положила начало армейской авиации как отдельному роду войск. С 2003 г. данные подразделения находятся в ведении Военновоздушных сил.

29 октября

День работников службы вневедомственной охраны МВД. История праздника

ведет отсчет с 29 октября 1952 г., когда Совет Министров СССР принял постановление, касающееся охраны объектов народного хозяйства. Охрана объектов вне зависимости от их ведомственной принадлежности — вот определяющий момент в названии службы.

30 октября

День инженера-механика. Отсчет в данной профессии принято вести с 1854 г., когда на Российском флоте был образован корпус инженеровмехаников. А начало празднованию положил приказ Главкома ВМФ от 1996 г. Сегодня данной специальностью овладевают сотни тысяч российских студентов.

День работников рекламы. Профессиональ-

День памяти жертв политических репрессий. День памяти установлен Постановлени-

ный праздник рекламистов (reclamare — выкрикивать) отмечается в России с 1994 г. 23 октября — это день творческих людей, которые вносят неоценимый вклад в развитие торговли и экономики страны.

ем Верховного Совета РСФСР от 18 октября 1991 г. В число восьмисот тысяч пострадавших от политических репрессий входят и оставшиеся без опеки дети репрессированных.

24 октября

Международный день ООН. В этот день в 1945 г. вступил в силу Устав Организации Объединенных Наций. В 1971 г. на 26-й сессии Генеральная Ассамблея провозгласила этот день международным праздником.

День подразделений специального назначения. История спецназа в России берет начало с создания в 1918 г. частей особого назначения — ЧОН, предназначенных для борьбы с басмачеством. С 1950 г. спецназ призван пресекать террористические действия, ликвидировать преступные группы и проводить другие сложные операции.

31 октября

День автомобилиста. Праздник отмечается

на основании Указа Президента России от 7 ноября 1996 г. «Об установлении Дня работников автомобильного транспорта и дорожного хозяйства». Позднее дорожникам была выделена своя дата, а автомобилисты получили собственный почетный день — последнее воскресенье октября.

День работников СИЗО и тюрем. Учрежден приказом директора ФСИН и является новым праздником для России. Некоторые тюрьмы в этот день открывают замки и тайны своих учреждений.

ИНФОРМАЦИЯ О ПОДПИСКЕ НА ЖУРНАЛЫ ИД «ПАНОРАМА»

Издательский Дом «ПАНОРАМА» – крупнейшее в России издательство деловых журналов. Десять издательств, входящих в ИД «ПАНОРАМА», выпускают более 100 журналов. Свидетельством высокого авторитета и признания изданий ИД «Панорама» является то, что 27 журналов включены в Перечень ведущих рецензируемых журналов и изданий, утвержденный ВАК, в которых публикуются основные научные результаты диссертаций на соискание ученой степени доктора и кандидата наук. Среди главных редакторов наших журналов, председателей и членов редсоветов и редколлегий – 200 ученых: академиков, членов-корреспондентов академий наук, профессоров и более 500 практиков – опытных хозяйственных руководителей и специалистов.

Индексы по каталогу «Роспечать» «Почта и «Пресса России» России»

НАИМЕНОВАНИЕ

Стоимость Стоимость подписки подписки по через каталогам редакцию

АФИНА

Индексы по каталогу «Роспечать» «Почта и «Пресса России» России»

www.afina-press.ru, www.бухучет.рф

36776

99481

Автономные учреждения: экономиканалогообложениебухгалтерский учет Бухгалтерский учет и налогообложение в бюджетных организациях Бухучет в здравоохранении Бухучет в сельском хозяйстве Бухучет в строительных организациях

20285

61866

80753

99654

82767

16609

82773

16615

82723

16585 Лизинг

32907

и налоговое 12559 Налоги планирование

4602

НАИМЕНОВАНИЕ

Стоимость Стоимость подписки подписки по через каталогам редакцию

ВНЕШТОРГИЗДАТ

www.vnestorg.ru, www.внешторгиздат.рф

4374

82738

Валютное 16600 регулирование. Валютный контроль

12 492

11 868

46021

11825 Весь мир – наш дом!

1800

1710

84832

12450 Гостиничное дело

8130

7722

2640

2508

3498

3324

3366

3198

4392

4170

4392

4170

20236

4392

4170

84826

4392

4170

84866

61874 Дипломатическая служба 12383 Международная экономика бизнес 12322 Общепит: и искусство

4698

4464

79272

99651 Современная торговля

8130

7722

18 984

18 036

84867

12323 Современный ресторан

6072

5766

ИНФОРМАЦИЯ О ПОДПИСКЕ НА ЖУРНАЛЫ ИД «ПАНОРАМА» Индексы по каталогу «Роспечать» «Почта и «Пресса России» России»

82737 85181

НАИМЕНОВАНИЕ

Таможенное 16599 регулирование. Таможенный контроль Товаровед 12320 продовольственных товаров

Стоимость Стоимость подписки подписки по через каталогам редакцию

12 492

11 868

3912

3714

МЕДИЗДАТ

Индексы по каталогу «Роспечать» «Почта и «Пресса России» России»

36395

99291 Мир марок

1236

1176

84794

12303 Музей

3366

3198

46313

24217 Ректор вуза

5352

5082

47392

45144

1305

1239

46311

24218 Ученый Совет

4740

4506

2124

2016

2220

2112

www.medizdat.com, www.медиздат.рф

46543

Вестник неврологии, 79525 психиатрии и нейрохирургии здорового 10274 Вопросы и диетического питания 24216 Врач скорой помощи

80755 46105

47492

НАИМЕНОВАНИЕ

Русская галерея – ХХI век

3708

3522

71294

79901 Хороший секретарь

1683

1599

46030

11830

4014

3816

99650 Главврач

4326

4110

3366

3198

46106

44028 Медсестра Охрана труда техника безопасности 15022 ив учреждениях здравоохранения Санаторно-курортные организации: менеджмент, 25072 маркетинг, экономика, финансы. Проблемы восстановительной медицины 16631 Санитарный врач врача 24209 Справочник общей практики 12369 Справочник педиатра Стоматолог. Вопросы челюстно-лицевой, хирургии, 16629 пластической имплантологии и клинической стоматологии 12366 Терапевт

84881 84811

22954

23140

36668

82789 46312 84809

37196

36273

3636

1920

3456

3816

3366

3198

3468

3294

ПОЛИТЭКОНОМИЗДАТ

84787

Глава местной 12310 администрации

3366

3198

84790

12307 ЗАГС

3120

2964

84786

12382 Коммунальщик

3894

3702

84788

журнал 12309 Парламентский Народный депутат

4668

4434

84789

12308 Служба занятости

3228

3066

20283

Социальная политика 61864 и социальное партнерство

4392

4170

ПРОМИЗДАТ

www.promizdat.com, www.промиздат.рф

84822 82714

3540

3366 82715

3708

3522

12524 Физиотерапевт

3840

3648

12371 Хирург лечебного 99369 Экономист учреждения

3840

3648

3708

3522

НАУКА и КУЛЬТУРА

www.n-cult.ru, www.наука-и-культура.рф

46310

24192 Вопросы культурологии

2370

2250

36365

99281 Главный редактор

1647

1566

20238

61868 Дом культуры

3120

2964

Школа. Гимназия. Лицей: наши новые горизонты

www.politeconom.ru, www.политэкономиздат.рф

1824

4014

Стоимость Стоимость подписки подписки по через каталогам редакцию

82716 82717 84815 36390 84818 36684 36391 37199

12537 Водоочистка Генеральный Управление 16576 директор: промышленным предприятием Главный инженер. 16577 Управление промышленным производством 16578 Главный механик 16579 Главный энергетик по маркетингу 12530 Директор и сбыту 12424 Инновационный менеджмент и автоматика: 12533 КИП обслуживание и ремонт 25415 Консервное производство 99296 Конструкторское бюро Молоко и молочные 23732 продукты. Производство и реализация

3606

3426

8856

8412

5256

4992

4464

4242

4464

4242

8820

8382

8016

7614

4392

4170

8784

8346

4326

4110

8784

8346

82720

18256

82721

НАИМЕНОВАНИЕ

Стоимость Стоимость подписки подписки по через каталогам редакцию

Нормирование 16582 и оплата труда в промышленности Оперативное управление электроэнергетике. 12774 вПодготовка персонала и поддержание его квалификации Охрана труда и техника 16583 безопасности на промышленных предприятиях

4326

1857

3714 41763

16580 Управление качеством

3948

3750

84859

12399 Хлебопекарное производство Электрооборудование: 12532 эксплуатация, обслуживание и ремонт

8784

8346

4392

4170

12531 Электроцех

3774

3588

84816

СЕЛЬХОЗИЗДАТ

www.selhozizdat.ru, www.сельхозиздат.рф

37020 84834

Агробизнес: экономика12562 оборудованиетехнологии Ветеринария 12396 сельскохозяйственных животных

82782

16606 Главный зоотехник

3192

3030

3156

3000

82766

16608

37191

12393

82765

16607

37194

22307

37195 84836

82776

3426

82764

4464

4242

3636

3456

4086

3882

44174 Прораб

3774

3588

4464

4242

3912

3714

Сметно-договорная 12378 работа в строительстве Строительство: новые 16611 технологии – новое оборудование

ТРАНСИЗДАТ

3606

3030

и оплата 16614 Нормирование труда в строительстве Охрана труда и техника 16612 безопасности в строительстве Проектные 99635 и изыскательские работы в строительстве

www.transizdat.com, www.трансиздат.рф

79438

3192

61870

82769

9030

16605 Главный агроном

37065

84782

9504

82763

Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство Нормирование и оплата труда в сельском хозяйстве Овощеводство и тепличное хозяйство Охрана труда и техника безопасности в сельском хозяйстве Рыбоводство и рыбное хозяйство

82770 36986

3912

82781 36393

Автотранспорт: 16618 эксплуатация, обслуживание, ремонт Грузовое и 99652 пассажирское автохозяйство Нормирование и оплата 16624 труда на автомобильном транспорте Охрана труда и техника безопасности 16623 на автотранспортных предприятиях и в транспортных цехах машины 12479 Самоходные и механизмы äàòåëüñòâî èç

3636

ÞÐ

3456 3066

3708

3522

3228

3066

24215 Свиноферма

1614

1533

Сельскохозяйственная 12394 техника: обслуживание и ремонт

3228

3066

ÈÇÄÀÒ

4326

4110

4740

4506

4392

4170

3708

3522

4326

4110

ЮРИЗДАТ

www.jurizdat.su, www.юриздат.рф

трудового 24191 Вопросы права Землеустройство, 12306 кадастр и мониторинг земель

3432

3258

3912

3714

80757

99656 Кадровик

5148

4890

36394

99295 Участковый

750

714

82771

16613 Юрисконсульт в строительстве

5256

4992

46103

12298 Юрист вуза

3606

3426

46308 3228

Стоимость Стоимость подписки подписки по через каталогам редакцию

www.stroyizdat.com, www.стройиздат.com

82772 1956

НАИМЕНОВАНИЕ

СТРОЙИЗДАТ

4110

82718

84817

Индексы по каталогу «Роспечать» и «Пресса «Почта России» России»

84791

ПОДРОБНАЯ ИНФОРМАЦИЯ О ПОДПИСКЕ: телефоны: (495) 211-5418, 749-2164, 749-4273, факс: (499) 346-2073, (495) 664-2761. E-mail: podpiska@panor.ru www.panor.ru

2012 ПОДПИСКА

МЫ ИЗДАЕМ ЖУРНАЛЫ БОЛЕЕ 20 ЛЕТ. НАС ЧИТАЮТ МИЛЛИОНЫ! ОФОРМИТЕ ГОДОВУЮ ПОДПИСКУ И ЕЖЕМЕСЯЧНО ПОЛУЧАЙТЕ СВЕЖИЙ НОМЕР ЖУРНАЛА!

ДОРОГИЕ ДРУЗЬЯ! МЫ ПРЕДЛАГАЕМ ВАМ РАЗЛИЧНЫЕ ВАРИАНТЫ ОФОРМЛЕНИЯ ПОДПИСКИ НА ЖУРНАЛЫ ИЗДАТЕЛЬСКОГО ДОМА «ПАНОРАМА»

ПОДПИСКА НА САЙТЕ

ПОДПИСКА НА САЙТЕ www.panor.ru На все вопросы, связанные с подпиской, вам с удовольствием ответят по телефонам (495) 211-5418, 749-2164, 749-4273.

3 1

ПОДПИСКА НА ПОЧТЕ

ин . Бос ик А н ж о Худ

ОФОРМЛЯЕТСЯ В ЛЮБОМ ПОЧТОВОМ ОТДЕЛЕНИИ РОССИИ

Для этого нужно правильно и внимательно заполнить бланк абонемента (бланк прилагается). Бланки абонементов находятся также в любом почтовом отделении России или на сайте ИД «Панорама» – www.panor.ru. Подписные индексы и цены наших изданий для заполнения абонемента на подписку есть в каталогах: «Газеты и журналы» Агентства «Роспечать», «Почта России» и «Пресса России». Образец платежного поручения XXXXXXX

Поступ. в банк плат.

Списано со сч. плат.

ПЛАТЕЖНОЕ ПОРУЧЕНИЕ № Сумма прописью ИНН

электронно Вид платежа

Дата

Три тысячи четыреста двадцать шесть рублей 00 копеек КПП

Сумма 3426-00 Сч. №

Плательщик Банк плательщика ОАО «Сбербанк России», г. Москва Банк получателя ИНН 7709843589 КПП 770901001 ООО Издательство «Кругозор» Московский банк Сбербанка России ОАО, г. Москва Получатель

БИК Сч. № БИК 044525225 Сч. № 30101810400000000225 Сч. №

40702810538180002439

Вид оп. 01 Наз. пл. Код

Срок плат. Очер. плат. 6 Рез. поле

Подписи

Отметки банка

ПОДПИСКА ЧЕРЕЗ АЛЬТЕРНАТИВНЫЕ АГЕНТСТВА

Подписаться на журналы Издательского Дома «ПАНОРАМА» можно также с помощью альтернативных подписных агентств, о координатах которых вам сообщат по телефонам: (495) 211-5418, 749-2164, 749-4273. РЕКВИЗИТЫ ДЛЯ ОПЛАТЫ ПОДПИСКИ Получатель: ООО Издательство «Кругозор» Московский банк Сбербанка России ОАО, г. Москва ИНН 7709843589 / КПП 770901001, р/cч. № 40702810538180002439

Счет № 1 на под ЖК2012 писку

ȠȓȞȡ ș Ȏ ȑ ȣ ȏȡ șȎȠȓ Ș Ȝȝ ȘȠȜȞ

ǲȖȞȓ

Банк получателя: ОАО «Сбербанк России», г. Москва БИК 044525225, к/сч. № 30101810400000000225

н оси А. Б

Назначение платежа

Подписаться на журнал можно непосредственно в Издательстве с любого номера и на любой срок, доставка – за счет Издательства. Для оформления подписки необходимо получить счет на оплату, прислав заявку по электронному адресу podpiska@panor.ru или по факсу: (499) 346-2073, (495) 664-2761, а также позвонив по телефонам: (495) 211-5418, 749-2164, 749-4273. Внимательно ознакомьтесь с образцом заполнения платежного поручения и заполните все необходимые данные (в платежном поручении, в графе «Назначение платежа», обязательно укажите: «За подписку на журнал» (название журнала), период подписки, а также точный почтовый адрес (с индексом), по которому мы должны отправить журнал). Оплата должна быть произведена до 15-го числа предподписного месяца.

ник ож Худ

Оплата за подписку на журнал Ветеринария сельскохозяйственных животных (6 экз.) на 6 месяцев, в том числе НДС (0%)______________ Адрес доставки: индекс_________, город__________________________, ул._______________________________________, дом_____, корп._____, офис_____ телефон_________________

ПОДПИСКА В РЕДАКЦИИ

М.П.

На правах рекламы

Ветеринария сельскохозяйственных животных

полугодие

2012

Выгодное предложение! Подписка на 1-е полугодие 2012 года по льготной цене – 3426 руб. (подписка по каталогам – 3606 руб.) Оплатив этот счет, вы сэкономите на подписке около 20% ваших средств. Почтовый адрес: 125040, Москва, а/я 1 По всем вопросам, связанным с подпиской, обращайтесь по тел.: (495) 211-5418, 749-2164, 749-4273, тел./факс: (499) 346-2073, (495) 664-2761 или по e-mail: podpiska@panor.ru ПОЛУЧАТЕЛЬ:

ООО Издательство «Кругозор» ИНН 7709843589 КПП 770901001 р/cч. № 40702810538180002439 Московский банк Сбербанка России ОАО, г. Москва БАНК ПОЛУЧАТЕЛЯ: БИК 044525225

к/сч. № 30101810400000000225

ОАО «Сбербанк России», г. Москва

СЧЕТ № 1ЖК2012 от «____»_____________ 201__ Покупатель: Расчетный счет №: Адрес: №№ п/п 1

Предмет счета (наименование издания) Ветеринария сельскохозяйственных животных (подписка на 1-е полугодие 2012 года)

Кол-во Цена экз. за 1 экз. 6

571

Сумма

НДС 0%

Всего

3426

Не обл.

3426

2 3 ИТОГО: ВСЕГО К ОПЛАТЕ:

Генеральный директор

К.А. Москаленко

Главный бухгалтер

Л.В. Москаленко М.П. ȼɇɂɆȺɇɂɘ ȻɍɏȽȺɅɌȿɊɂɂ!

ȼ ȽɊȺɎȿ «ɇȺɁɇȺɑȿɇɂȿ ɉɅȺɌȿɀȺ» ɈȻəɁȺɌȿɅɖɇɈ ɍɄȺɁɕȼȺɌɖ ɌɈɑɇɕɃ ȺȾɊȿɋ ȾɈɋɌȺȼɄɂ ɅɂɌȿɊȺɌɍɊɕ (ɋ ɂɇȾȿɄɋɈɆ) ɂ ɉȿɊȿɑȿɇɖ ɁȺɄȺɁɕȼȺȿɆɕɏ ɀɍɊɇȺɅɈȼ. ɇȾɋ ɇȿ ȼɁɂɆȺȿɌɋə (ɍɉɊɈɓȿɇɇȺə ɋɂɋɌȿɆȺ ɇȺɅɈȽɈɈȻɅɈɀȿɇɂə). ɈɉɅȺɌȺ ȾɈɋɌȺȼɄɂ ɀɍɊɇȺɅɈȼ ɈɋɍɓȿɋɌȼɅəȿɌɋə ɂɁȾȺɌȿɅɖɋɌȼɈɆ. ȾɈɋɌȺȼɄȺ ɂɁȾȺɇɂɃ ɈɋɍɓȿɋɌȼɅəȿɌɋə ɉɈ ɉɈɑɌȿ ɐȿɇɇɕɆɂ ȻȺɇȾȿɊɈɅəɆɂ ɁȺ ɋɑȿɌ ɊȿȾȺɄɐɂɂ. ȼ ɋɅɍɑȺȿ ȼɈɁȼɊȺɌȺ ɀɍɊɇȺɅɈȼ ɈɌɉɊȺȼɂɌȿɅɘ, ɉɈɅɍɑȺɌȿɅɖ ɈɉɅȺɑɂȼȺȿɌ ɋɌɈɂɆɈɋɌɖ ɉɈɑɌɈȼɈɃ ɍɋɅɍȽɂ ɉɈ ȼɈɁȼɊȺɌɍ ɂ ȾɈɋɕɅɍ ɂɁȾȺɇɂɃ ɉɈ ɂɋɌȿɑȿɇɂɂ 15 ȾɇȿɃ. ȾȺɇɇɕɃ ɋɑȿɌ əȼɅəȿɌɋə ɈɋɇɈȼȺɇɂȿɆ ȾɅə ɈɉɅȺɌɕ ɉɈȾɉɂɋɄɂ ɇȺ ɂɁȾȺɇɂə ɑȿɊȿɁ ɊȿȾȺɄɐɂɘ ɂ ɁȺɉɈɅɇəȿɌɋə ɉɈȾɉɂɋɑɂɄɈɆ. ɋɑȿɌ ɇȿ ɈɌɉɊȺȼɅəɌɖ ȼ ȺȾɊȿɋ ɂɁȾȺɌȿɅɖɋɌȼȺ. ɈɉɅȺɌȺ ȾȺɇɇɈȽɈ ɋɑȿɌȺ-ɈɎȿɊɌɕ (ɋɌ. 432 ȽɄ ɊɎ) ɋȼɂȾȿɌȿɅɖɋɌȼɍȿɌ Ɉ ɁȺɄɅɘɑȿɇɂɂ ɋȾȿɅɄɂ ɄɍɉɅɂ-ɉɊɈȾȺɀɂ ȼ ɉɂɋɖɆȿɇɇɈɃ ɎɈɊɆȿ (ɉ. 3 ɋɌ. 434 ɂ ɉ. 3 ɋɌ. 438 ȽɄ ɊɎ).

ОБРАЗЕЦ ЗАПОЛНЕНИЯ ПЛАТЕЖНОГО ПОРУЧЕНИЯ

Списано со сч. плат.

Поступ. в банк плат.

ПЛАТЕЖНОЕ ПОРУЧЕНИЕ № Дата

Вид платежа

Сумма прописью

ИНН

КПП

Сумма

Сч.№ Плательщик

БИК Сч.№ Банк Плательщика

ОАО «Сбербанк России», г. Москва

БИК Сч.№

044525225 30101810400000000225

ИНН 7709843589 КПП 770901001 ООО Издательство «Кругозор» Московский банк Сбербанка России ОАО, г. Москва

Сч.№

40702810538180002439

Получатель

Банк Получателя

Вид оп.

Срок плат.

Наз.пл.

Очер. плат.

Код

Рез. поле

Оплата за подписку на журнал Ветеринария сельскохозяйственных животных (___ экз.) на 6 месяцев, без НДС (0%). ФИО получателя____________________________________________________ Адрес доставки: индекс_____________, город____________________________________________________, ул.________________________________________________________, дом_______, корп._____, офис_______ телефон_________________, e-mail:________________________________ Назначение платежа Подписи

Отметки банка

М.П.

При оплате данного счета в платежном поручении в графе «Назначение платежа» обязательно укажите: X Название издания и номер данного счета Y Точный адрес доставки (с индексом) Z ФИО получателя [ Телефон (с кодом города)

По всем вопросам, связанным с подпиской, обращайтесь по тел.: (495) 211-5418, 749-2164, 749-4273 тел./факс: (499) 346-2073, (495) 664-2761 или по e-mail: podpiska@panor.ru

✁

Ʉɨɦɭ

Ʉɭɞɚ

ɮ. ɋɉ-1

(ɩɨɱɬɨɜɵɣ ɢɧɞɟɤɫ)

(ɢɧɞɟɤɫ ɢɡɞɚɧɢɹ)

84834

ɧɚ 20

ɧɚ

ɝɚɡɟɬɭ ɠɭɪɧɚɥ (ɢɧɞɟɤɫ ɢɡɞɚɧɢɹ)

84834

ɧɚ 20

(ɮɚɦɢɥɢɹ, ɢɧɢɰɢɚɥɵ)

(ɚɞɪɟɫ)

12 ɝɨɞ ɩɨ ɦɟɫɹɰɚɦ: 9

ɩɨɞɩɢɫɤɢ ____________ɪɭɛ. ___ɤɨɩ. Ʉɨɥɢɱɟɫɬɜɨ ɋɬɨɢɦɨɫɬɶ ɩɟɪɟɚɞɪɟɫɨɜɤɢ ____________ ɪɭɛ. ___ɤɨɩ. ɤɨɦɩɥɟɤɬɨɜ

ȾɈɋɌȺȼɈɑɇȺə ɄȺɊɌɈɑɄȺ

(ɚɞɪɟɫ)

Ʉɭɞɚ (ɩɨɱɬɨɜɵɣ ɢɧɞɟɤɫ)

ɉȼ

Ʉɨɦɭ

Ʉɭɞɚ

12396 (ɢɧɞɟɤɫ ɢɡɞɚɧɢɹ)

ɧɚ 20

ɦɟɫɬɨ

ɥɢɬɟɪ

12 ɝɨɞ ɩɨ ɦɟɫɹɰɚɦ: 10

ɧɚ

ɝɚɡɟɬɭ ɠɭɪɧɚɥ

(ɢɧɞɟɤɫ ɢɡɞɚɧɢɹ)

12396

ȾɈɋɌȺȼɈɑɇȺə ɄȺɊɌɈɑɄȺ

(ɚɞɪɟɫ)

Ʉɨɥɢɱɟɫɬɜɨ ɤɨɦɩɥɟɤɬɨɜ:

(ɮɚɦɢɥɢɹ, ɢɧɢɰɢɚɥɵ)

(ɩɨɱɬɨɜɵɣ ɢɧɞɟɤɫ)

(ɧɚɢɦɟɧɨɜɚɧɢɟ ɢɡɞɚɧɢɹ)

Ʉɨɦɭ

ɧɚ 20

(ɮɚɦɢɥɢɹ, ɢɧɢɰɢɚɥɵ)

(ɚɞɪɟɫ)

12 ɝɨɞ ɩɨ ɦɟɫɹɰɚɦ: 9

ɩɨɞɩɢɫɤɢ ____________ɪɭɛ. ___ɤɨɩ. Ʉɨɥɢɱɟɫɬɜɨ ɋɬɨɢɦɨɫɬɶ ɩɟɪɟɚɞɪɟɫɨɜɤɢ ____________ ɪɭɛ. ___ɤɨɩ. ɤɨɦɩɥɟɤɬɨɜ

(ɧɚɢɦɟɧɨɜɚɧɢɟ ɢɡɞɚɧɢɹ)

ɥɢɬɟɪ

ɝɚɡɟɬɭ ɠɭɪɧɚɥ

ȼɟɬɟɪɢɧɚɪɢɹ ɫɟɥɶɫɤɨɯɨɡɹɣɫɬɜɟɧɧɵɯ ɠɢɜɨɬɧɵɯ

ɧɚ

ȼɟɬɟɪɢɧɚɪɢɹ ɫɟɥɶɫɤɨɯɨɡɹɣɫɬɜɟɧɧɵɯ ɠɢɜɨɬɧɵɯ

ɦɟɫɬɨ

12 ɝɨɞ ɩɨ ɦɟɫɹɰɚɦ:

(ɮɚɦɢɥɢɹ, ɢɧɢɰɢɚɥɵ)

(ɩɨɱɬɨɜɵɣ ɢɧɞɟɤɫ)

Ʉɨɥɢɱɟɫɬɜɨ ɤɨɦɩɥɟɤɬɨɜ:

ȺȻɈɇȿɆȿɇɌ

(ɧɚɢɦɟɧɨɜɚɧɢɟ ɢɡɞɚɧɢɹ)

ɮ. ɋɉ-1

ɋɬɨɢɦɨɫɬɶ ɩɨɞɩɢɫɤɢ ɧɚ ɠɭɪɧɚɥ ɭɤɚɡɚɧɚ ɜ ɤɚɬɚɥɨɝɟ «ɉɨɱɬɚ Ɋɨɫɫɢɢ»

ȼɟɬɟɪɢɧɚɪɢɹ ɫɟɥɶɫɤɨɯɨɡɹɣɫɬɜɟɧɧɵɯ ɠɢɜɨɬɧɵɯ

ɉȼ

Ʉɨɦɭ

Ʉɭɞɚ

ɝɚɡɟɬɭ ɠɭɪɧɚɥ

ȼɟɬɟɪɢɧɚɪɢɹ ɫɟɥɶɫɤɨɯɨɡɹɣɫɬɜɟɧɧɵɯ ɠɢɜɨɬɧɵɯ

ȺȻɈɇȿɆȿɇɌ ɧɚ

ɋɬɨɢɦɨɫɬɶ ɩɨɞɩɢɫɤɢ ɧɚ ɠɭɪɧɚɥ ɭɤɚɡɚɧɚ ɜ ɤɚɬɚɥɨɝɚɯ Ⱥɝɟɧɬɫɬɜɚ «Ɋɨɫɩɟɱɚɬɶ» ɢ «ɉɪɟɫɫɚ Ɋɨɫɫɢɢ»

✁

ɉɊɈȼȿɊɖɌȿ ɉɊȺȼɂɅɖɇɈɋɌɖ ɈɎɈɊɆɅȿɇɂə ȺȻɈɇȿɆȿɇɌȺ! ɇɚ ɚɛɨɧɟɦɟɧɬɟ ɞɨɥɠɟɧ ɛɵɬɶ ɩɪɨɫɬɚɜɥɟɧ ɨɬɬɢɫɤ ɤɚɫɫɨɜɨɣ ɦɚɲɢɧɵ. ɉɪɢ ɨɮɨɪɦɥɟɧɢɢ ɩɨɞɩɢɫɤɢ (ɩɟɪɟɚɞɪɟɫɨɜɤɢ) ɛɟɡ ɤɚɫɫɨɜɨɣ ɦɚɲɢɧɵ ɧɚ ɚɛɨɧɟɦɟɧɬɟ ɩɪɨɫɬɚɜɥɹɟɬɫɹ ɨɬɬɢɫɤ ɤɚɥɟɧɞɚɪɧɨɝɨ ɲɬɟɦɩɟɥɹ ɨɬɞɟɥɟɧɢɹ ɫɜɹɡɢ. ȼ ɷɬɨɦ ɫɥɭɱɚɟ ɚɛɨɧɟɦɟɧɬ ɜɵɞɚɟɬɫɹ ɩɨɞɩɢɫɱɢɤɭ ɫ ɤɜɢɬɚɧɰɢɟɣ ɨɛ ɨɩɥɚɬɟ ɫɬɨɢɦɨɫɬɢ ɩɨɞɩɢɫɤɢ (ɩɟɪɟɚɞɪɟɫɨɜɤɢ).

Ⱦɥɹ ɨɮɨɪɦɥɟɧɢɹ ɩɨɞɩɢɫɤɢ ɧɚ ɝɚɡɟɬɭ ɢɥɢ ɠɭɪɧɚɥ, ɚ ɬɚɤɠɟ ɞɥɹ ɩɟɪɟɚɞɪɟɫɨɜɚɧɢɹ ɢɡɞɚɧɢɹ ɛɥɚɧɤ ɚɛɨɧɟɦɟɧɬɚ ɫ ɞɨɫɬɚɜɨɱɧɨɣ ɤɚɪɬɨɱɤɨɣ ɡɚɩɨɥɧɹɟɬɫɹ ɩɨɞɩɢɫɱɢɤɨɦ ɱɟɪɧɢɥɚɦɢ, ɪɚɡɛɨɪɱɢɜɨ, ɛɟɡ ɫɨɤɪɚɳɟɧɢɣ, ɜ ɫɨɨɬɜɟɬɫɬɜɢɢ ɫ ɭɫɥɨɜɢɹɦɢ, ɢɡɥɨɠɟɧɧɵɦɢ ɜ ɩɨɞɩɢɫɧɵɯ ɤɚɬɚɥɨɝɚɯ. Ɂɚɩɨɥɧɟɧɢɟ ɦɟɫɹɱɧɵɯ ɤɥɟɬɨɤ ɩɪɢ ɩɟɪɟɚɞɪɟɫɨɜɚɧɢɢ ɢɡɞɚɧɢɹ, ɚ ɬɚɤɠɟ ɤɥɟɬɤɢ «ɉȼ-ɆȿɋɌɈ» ɩɪɨɢɡɜɨɞɢɬɫɹ ɪɚɛɨɬɧɢɤɚɦɢ ɩɪɟɞɩɪɢɹɬɢɣ ɫɜɹɡɢ ɢ ɩɨɞɩɢɫɧɵɯ ɚɝɟɧɬɫɬɜ.

✁

ɉɊɈȼȿɊɖɌȿ ɉɊȺȼɂɅɖɇɈɋɌɖ ɈɎɈɊɆɅȿɇɂə ȺȻɈɇȿɆȿɇɌȺ!

ɇɚ ɚɛɨɧɟɦɟɧɬɟ ɞɨɥɠɟɧ ɛɵɬɶ ɩɪɨɫɬɚɜɥɟɧ ɨɬɬɢɫɤ ɤɚɫɫɨɜɨɣ ɦɚɲɢɧɵ. ɉɪɢ ɨɮɨɪɦɥɟɧɢɢ ɩɨɞɩɢɫɤɢ (ɩɟɪɟɚɞɪɟɫɨɜɤɢ) ɛɟɡ ɤɚɫɫɨɜɨɣ ɦɚɲɢɧɵ ɧɚ ɚɛɨɧɟɦɟɧɬɟ ɩɪɨɫɬɚɜɥɹɟɬɫɹ ɨɬɬɢɫɤ ɤɚɥɟɧɞɚɪɧɨɝɨ ɲɬɟɦɩɟɥɹ ɨɬɞɟɥɟɧɢɹ ɫɜɹɡɢ. ȼ ɷɬɨɦ ɫɥɭɱɚɟ ɚɛɨɧɟɦɟɧɬ ɜɵɞɚɟɬɫɹ ɩɨɞɩɢɫɱɢɤɭ ɫ ɤɜɢɬɚɧɰɢɟɣ ɨɛ ɨɩɥɚɬɟ ɫɬɨɢɦɨɫɬɢ ɩɨɞɩɢɫɤɢ (ɩɟɪɟɚɞɪɟɫɨɜɤɢ).

Ɂɚɩɨɥɧɟɧɢɟ ɦɟɫɹɱɧɵɯ ɤɥɟɬɨɤ ɩɪɢ ɩɟɪɟɚɞɪɟɫɨɜɚɧɢɢ ɢɡɞɚɧɢɹ, ɚ ɬɚɤɠɟ ɤɥɟɬɤɢ «ɉȼ-ɆȿɋɌɈ» ɩɪɨɢɡɜɨɞɢɬɫɹ ɪɚɛɨɬɧɢɤɚɦɢ ɩɪɟɞɩɪɢɹɬɢɣ ɫɜɹɡɢ ɢ ɩɨɞɩɢɫɧɵɯ ɚɝɟɧɬɫɬɜ.

Издательский Дом «ПАНОРАМА» – это: АФИНА www.Бухучет.РФ, www.afina-press.ru

ВНЕШТОРГИЗДАТ

www.Внешторгиздат.РФ, www.vnestorg.ru

МЕДИЗДАТ

www.Медиздат.РФ, www.medizdat.com

НАУКА и КУЛЬТУРА

www.Наука-и-культура.РФ, www.n-cult.ru

ПОЛИТЭКОНОМИЗДАТ

www.Политэкономиздат.РФ, www.politeconom.ru

ПРОМИЗДАТ

www.Промиздат.РФ, www.promizdat.com

СЕЛЬХОЗИЗДАТ

www.Сельхозиздат.РФ, www.selhozizdat.ru

СТРОЙИЗДАТ

www.Стройпресса.РФ, www.stroyizdat.com

Д А

А Н

Т Т Р

ТРАНСИЗДАТ

www.Трансиздат.РФ, www.transizdat.com

С И З

ЮРИЗДАТ

www.Юриздат.РФ, www.jurizdat.ru

www.ИДПАНОРАМА.pф, www.panor.ru

На правах рекламы

Телефоны для справок: (495) 211-5418, 749-4273, 749-2164 Факс: (499) 346-2073

На правах рекламы

индексы: на полугодие – 11825, на год – 11832

индексы: на полугодие – 46021, на год – 46032

09/2011

ЖУРНАЛ «ВЕСЬ МИР – НАШ ДОМ!»

Ветеринария сельскохозяйственных животных

НОВЫЙ ПРОЕКТ ИЗДАТЕЛЬСКОГО ДОМА «ПАНОРАМА»

На правах рекламы

09/2011