UNIVERSIDAD AUTONOMA DE CHIAPAS FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA Cuerpo Académico Sistemas de Producción de Pequeños Rumiantes en Chiapas
“Parasitosis en ovinos” M.V.Z.MPA. MARIA ERENDIRA REYES GARCÍA
2° FESTIVAL CULTURAL PROVINCIA ZOQUE
OCTUBRE 2012
Enfermedades bacterianas, virales , parasitarias
La ocurrencia de enfermedades •Área geográfica •Clima •Condiciones de manejo • Nivel de consumo de nutrientes • Raza, edad de los animales • “Susceptibilidad genética”
ENDOPARASITOS H铆gado: Fasciola
Abomaso: Haemonchus Trichostrongylus Teladorsagia
Pulmones: Dictyocaulus
Intestino delgado: Trichostrongylus Nematodirus Cooperia Bunostomum Strongyloides
Ciego y colon: Trichuris Skrjabinema Oesophagostomum Chabertia
Localizaci贸n anat贸mica
GASTROINTESTINALES Genero y especie
Ciclo de vida
Condiciones ideales para el desarrollo
caluroso, húmedo
Haemonchus contortus
Directo
18 a 21 días
Teladorsargia circumcincta
Directo
20 días
frío, húmedo
Trichostrongylus colubriformis
Directo
< 21 días
caluroso, húmedo
Strongyloides papillosus
Directo
7-9 días
caluroso, húmedo
Cooperia curticei
Directo
20 días
frío, invierno húmedo y lluvioso
Nematodirus batus
Directo
20 días
frío, húmedo
verano lluvioso
Genero y especie
Ciclo de vida
Condiciones ideales para el desarrollo
Trichuris ovis Directo
6-12 semanas
Bunostomum phlebotomum
Directo
1-2 meses
Oesophagostomum colombianum
Directo
5 semanas
Seco
caluroso , humedo
frĂo, hĂşmedo invierno lluvioso
Ciclo de vida y condiciones ambientales Fase exógena de los nematodos gastroentéricos de rumiantes (Haemonchus contortus)
Huevo
Larva 1
Larva 2
Larva 3
20 a 24 horas a 26 C 4 a 8 días
REFUGIO Cuellar, 2007
Migraci贸n en el piso de las larvas infestantes de NGE
Hidrotropismo positivo Geotropismo negativo Fototropismo positivo (luz tenue) L3
Esporulaci贸n de hongos Pisoteo de animales Artr贸podos copr贸fagos Agua y viento Cuellar, 2007
Fase endógena de los nematodos gastroentéricos de los pequeños rumiantes Haemonchus Mecistocirrus Teladorsagia Marshallagia Mucosa o submucosa abomasal Ingestión de L-3
L-3
L-4
Luz abomasal
L-4
L-5
Adultos maduros
15 - 21 días
CUELLAR O. 2006
Genero y especie
Signos clínicos
Haemonchus contortus
Perdida de sangre (Anemia) •Edema (“ mandíbula de botella") •Pérdida de peso •Pelo hirsuto o lana quebradiza •Muerte súbita.
Teladorsargia circumcincta
•Perdida de producción •Perdida de apetito •Diarrea •Perdida de peso •Disminución de producción de lana
Trichostrongylus axei,
•Apetito reducido •Pérdida de producción •Ocasionalmente muerte
Strongyloides papillosus
•Perdida de peso •Diarrea •Inflamación entre “tobillos”
Cooperia spp.
•Perdida de apetito •Diarrea •Pérdida de peso •Disminución del crecimiento de lana
Nematodirus spp.
•Usualmente sub-clínica •Diarrea •Pérdida de apetito •Pérdida de peso
Genero y especie
Signos clínicos
Trichuris ovis
•Generalmente asintomática •Diarrea
Bunostomum phlebotomum
•Anemia •Ocasionalmente diarrea •Perdida de peso
Oesophagostomum colombianum
•Anemia •Pérdida de producción
Efectos patogénicos mecánicos: • •
Estructuras especializadas: Cápsula bucal, Dientes, Lanceta Presencia: Enrollarse alrededor de vellosidades (efecto abrasivo)
Efectos patogénicos químicos • Producción de substancias: a) Proteinasas: Enzimas proteolíticas (degradan fibrinógeno, hemoglobina, plasminógeno, albúmina) Relacionadas con la nutrición e invasión. b) Acetilcolinesterasa Relacionada con: Inhibición del peristaltismo Actividad anticoagulante, Inhibición en la secreción de moco Modulación de la respuesta inflamatoria. c) Superóxido dismutasa Relacionada con: Eludir la respuesta inmune del hospedador
Efectos patogénicos inmunopatógenos: •La respuesta inflamatoria o inmune del hospedador contra los •parásitos resulta nociva.
CAMPO PERDIDA DE APETITO PERDIDA DE PESO EDEMA DIARREA
Signos Clínicos
CAMPO PALIDEZ DE MUCOSAS
Sistema FAMACHAâ. Es la identificación clínica del desarrollo de anemia ocasionada por la presencia de H. contortus
CAMPO Hallazgos a la Necropsia
LABORATORIO FLOTACIÓN
Mc MASTER
Estimaci贸n de n煤mero de lombrices
Conteo de huevos (hgh)
Estimaci贸n de perdida de sangre/d铆a
100
20
1ml
500
100
5ml
1000
200
10ml
2000
400
20ml
3000
600
30ml
5000
1000
50ml
http://www.wormboss.com.au/LivePage.aspx?pageId=521
CULTIVO LARVARIO
Hematocrito (volumen de paquete celular)
60% 70% 85%
+ 40% 30% 15%
Tratamiento Dosificación comparativa de los bencimidazoles empleados en rumiantes Dosis (mg/kg)
Principio activo
Eliminación en carne (días)
Eliminación en leche (días)
Bovinos
Ovinos
Caprinos
Vía de administración
Tiabendazol
0
4
66-110
50
100
O
Albendazol
14
NA
10
5
7.6
O, IR
Mebendazol
8
NA
12.5
15
30
O
Fenbendazol
14
0
7.5
5
10
O, IR
Oxfendazol
14
5
5
4.5
10
O, IR
3
7.5
Ricobendazol
IM, SC
Febantel
8
4
7.5
5
10
O, IR
Netobimín
10
3
7.5
7.5
15
O
Dosificación comparativa de los imidazotiazoles empleados en rumiantes Dosis (mg/kg)
Principio activo
Eliminación en carne (días)
Eliminación en leche (días)
Bovinos
Ovinos
Caprinos
Vía de administración
Levamisol
8
3
8
7.5
12
O, SC
Morantel
0
0
10
6
10
O
Dosificación comparativa de las lactonas macrocíclicas empleadas en rumiantes Dosis (mg/kg)
Principio activo
Eliminación en carne (días)
Eliminación en leche (días)
Bovinos
Ovinos
Caprinos
Vía de administración
Ivermectina
21
NA
0.2
0.2
0.3
O, SC, T
Doramectina
21
NA
0.2
0.2
0.2
SC
Doramectina
21
NA
0.5
Moxidectina
21
NA
0.2
Moxidectina
21
NA
0.5
0
0.5
Esprinomectina
T 0.2
0.2
O, SC T
0.5
0.5
T
Control integral: Q Mejorar el estado nutricional Q Ovejas vac铆as y gestantes pastoreo Q Lactaci贸n en confinamiento Q Corderos creep feeding (en corral) Q Machos engorda en corral Q Primerizas inician en corral, terminan en pradera (FAMACHA)
Control integral:
• Muestreos frecuentes • Desparasitación controlada • “Rotación de antiparasitarios”
Alternativas no convencionales de control
• Agujas de cobre
Reducción del Nº de huevos eliminados en heces, Haemonchus contortus
Reducción en el número de hembras de Haemonchus contortus en abomaso
Taninos condensados, Herbolaria
Control integral:
Control biológico Hongos nematofagos Duddingtonia flagrans , 11 millones de clamidosporas reducen en 92% población de larvas en las heces.. (Mendoza de Gives, 2008).
Nematodos come nematodos (caníbales) Butlerius sp. 86% reducción de larvas en cultivos (Mendoza de Gives, 2009).
Ácaros come nematodos Lasioseius penicilliger, reducción 66% larvas in vitro. (Mendoza de Gives, 2012).
Evaluación de genotipos resistentes, Utilización de razas resistentes Antecedentes de resistencia a nematodos gastroentéricos en ovinos (Efecto racial)
• • • • • • • • • •
Blackbelly (Yazwinski y col., 1980) Saint Croix (Parker y col., 1993) Katahdin (Parker y col., 1993) Florida (Torres y col., 1994) Red Maasai (Mugambi y col., 1996) Nali (Singh y col., 1997) Polaca de lana larga (Bouix y col., 1998) Nativa de Louisiana (Miller y col., 1998) Florida y sus cruzas (Amarante y col., 1999) Castellana (Gómez y col., 1999)
Desarrollo de vacunas Se obtuvo una proteína a partir de antígenos recombinantes, que permitirá fabricar una vacuna contra nematodos, con actividad inmuno protectora. Los resultados experimentales demostraron una protección de entre el 80 y 100 % de efectividad, dependiendo de la vía y modo de inmunización empleados. experimentos para evaluar la viabilidad de estos resultados, en ratones y corderos con prometedores resultados.